郭樹(shù)奇,焦子悅,費(fèi)強(qiáng),2
(1 西安交通大學(xué)化學(xué)工程與技術(shù)學(xué)院,陜西 西安 710049;2 陜西省能源化工過(guò)程強(qiáng)化重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,陜西 西安710049)
作為一種無(wú)色、無(wú)味、無(wú)毒的可燃性氣體,甲烷(CH4)是目前發(fā)現(xiàn)的最簡(jiǎn)單、能量密度最大的烷烴(熱值為55 MJ/kg)[1],也是僅次于二氧化碳(CO2)的第二大溫室氣體源頭[2-3]。近期,F(xiàn)eldman等[4]通過(guò)實(shí)驗(yàn)和觀測(cè)首次證實(shí)了甲烷排放增長(zhǎng)與全球變暖加速之間的正向關(guān)系。當(dāng)前大部分甲烷排放來(lái)自于能源開(kāi)采(天然氣和石油)、牲畜飼養(yǎng)、垃圾填埋場(chǎng)等人類活動(dòng)[5-6]。隨著人口增長(zhǎng)導(dǎo)致的肉類食品和能源需求的不斷提高,甲烷的排放量還將持續(xù)上漲,這將對(duì)節(jié)能減排和“碳中和”等國(guó)家戰(zhàn)略造成一定沖擊。而作為天然氣和沼氣的主要組成部分,甲烷也具有儲(chǔ)量豐富、價(jià)格低廉、碳原子還原性強(qiáng)、微生物可利用等優(yōu)勢(shì),是一種極具潛力的碳源[7]。嗜甲烷菌是一種能夠以甲烷作為唯一碳源和能源進(jìn)行生長(zhǎng)和代謝的微生物,這類菌群在緩解大氣中甲烷排放方面發(fā)揮著重要作用[8]。近年來(lái),圍繞嗜甲烷菌開(kāi)展甲烷生物轉(zhuǎn)化利用的研究得到了國(guó)內(nèi)外廣泛的關(guān)注[9-18]。
由于抗污染能力強(qiáng),且可在溫和生長(zhǎng)條件下實(shí)現(xiàn)甲烷的快速氧化和同化代謝,嗜甲烷菌已成為理想的甲烷生物利用工程菌改造宿主,研究證實(shí)開(kāi)發(fā)和構(gòu)建嗜甲烷菌細(xì)胞工廠具有重要的科學(xué)價(jià)值和研究意義[1,13,19-21]。到目前為止,用于化學(xué)品和生物燃料合成的微生物多以糖類作為發(fā)酵底物,考慮到其原料價(jià)格不穩(wěn)定,開(kāi)發(fā)廉價(jià)、非食品的碳源已成為生物制造領(lǐng)域中亟待解決的重要課題之一[22]。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)甲烷被用作底物生產(chǎn)還原性化學(xué)品時(shí),能夠提供更多的電子,可有效促進(jìn)目標(biāo)產(chǎn)物得率和產(chǎn)量[23-24]。利用前沿合成生物技術(shù)對(duì)嗜甲烷菌的代謝網(wǎng)絡(luò)進(jìn)行理性設(shè)計(jì)和改造,已實(shí)現(xiàn)生物轉(zhuǎn)化甲烷合成多種平臺(tái)化合物。由此可見(jiàn),通過(guò)開(kāi)發(fā)甲烷生物轉(zhuǎn)化技術(shù),不但可以促進(jìn)甲烷有效利用和減少溫室氣體排放量,還能夠?yàn)榻⒀h(huán)經(jīng)濟(jì)模式提供一種全新的研發(fā)策略和實(shí)踐方向[13]。
本文主要介紹了嗜甲烷菌人工細(xì)胞構(gòu)建的相關(guān)研究進(jìn)展,重點(diǎn)分析了嗜甲烷菌代謝工程改造策略和化學(xué)品合成相關(guān)研究成果。最后結(jié)合在生物制造領(lǐng)域的應(yīng)用前景,探討了嗜甲烷菌人工細(xì)胞構(gòu)建和改造等方面所面臨的挑戰(zhàn)和機(jī)遇。
分離自富含甲烷環(huán)境中的嗜甲烷菌是一種天然的甲烷利用菌株。雖然研究發(fā)現(xiàn)嗜甲烷菌可在厭氧條件下利用甲烷生長(zhǎng),但是絕大多數(shù)可人工培養(yǎng)的嗜甲烷菌均需在好氧環(huán)境中完成甲烷的氧化過(guò)程[25-26]。因此本文主要圍繞好氧性嗜甲烷菌的相關(guān)研究展開(kāi)一系列討論和分析。如圖1所示,嗜甲烷菌體內(nèi)獨(dú)有的甲烷單加氧酶(methane monooxygenases, MMO)可在胞內(nèi)將甲烷轉(zhuǎn)換為甲醇,隨后通過(guò)內(nèi)源代謝途徑完成碳同化[28]。目前,根據(jù)甲烷同化途徑的不同,好氧性嗜甲烷菌主要被分為 Group Ⅰ、Group Ⅱ和 Group Ⅲ[29],其分別通過(guò)單磷酸核酮糖(ribulose monophosphate,RuMP)循環(huán)、絲氨酸循環(huán)(serine cycle)和卡爾文循環(huán)(Calvin-Benson-Bassham cycle, CBB)實(shí)現(xiàn)甲烷的生物轉(zhuǎn)化。上述3種同化過(guò)程已在前期文章中進(jìn)行了詳細(xì)的介紹[1,9,18,25,30],本文不再贅述。
圖1 嗜甲烷菌中甲烷的代謝途徑[8,27]Fig.1 The pathways of methane metabolism in methanotrophs[8,27]
遺傳改造工具在嗜甲烷菌人工細(xì)胞構(gòu)建研究中發(fā)揮著重要作用。目前基于嗜甲烷菌報(bào)道的基因操作工具主要包括質(zhì)粒載體和基因轉(zhuǎn)移方法。質(zhì)粒載體主要用于基因復(fù)制、基因表達(dá)和基因敲除的相關(guān)工作,而基因轉(zhuǎn)移方法多用于將質(zhì)?;蛲庠椿蜣D(zhuǎn)入嗜甲烷菌體內(nèi),包括接合轉(zhuǎn)移和電穿孔?,F(xiàn)階段通過(guò)優(yōu)化的接合轉(zhuǎn)移和電穿孔方法,研究人員在嗜甲烷菌體內(nèi)已成功實(shí)現(xiàn)了基因缺失、整合和位點(diǎn)特異性重組等多種遺傳操作[20]。此外,研究人員基于嗜甲烷菌體系還成功開(kāi)發(fā)了人工誘變技術(shù)[31]、適應(yīng)性進(jìn)化[32]、基因表達(dá)模塊和元件優(yōu)化(啟動(dòng)子和其他調(diào)節(jié)元件)[33]以及前沿基因編輯[10]等人工細(xì)胞構(gòu)建方法[34-35]。在探索鑭系元素開(kāi)關(guān)對(duì)甲醇脫氫酶mxaF 調(diào)節(jié)功能的研究中,Groom 等[31]通過(guò)化學(xué)誘變(亞硝基胍)方法,基于Methylotuvimicrobium buryatense5GB1C 菌株成功篩選出鑭元素?zé)o法抑制mxaF 啟動(dòng)子的突變體。Lee 等[32]基于Methylomonassp.DH-1 通過(guò)適應(yīng)性進(jìn)化篩選出一株耐乳酸菌株JHM80,用于提高工程菌株的乳酸耐受性和產(chǎn)量。Puri[34]等報(bào)道了M. buryatense5GB1S 中不同表達(dá)強(qiáng)度的啟動(dòng)子元件。Garg 等[33]通過(guò)模塊化組裝策略,進(jìn)一步優(yōu)化了利用甲烷合成乳酸的M.buryatense5GB1 人工細(xì)胞。表1列出了嗜甲烷菌遺傳改造工具。
表1 嗜甲烷菌遺傳改造工具Tab.1 The genetic tool used for metabolic engineering of methanotrophs
近期,CRISPR/Cas9 基因編輯系統(tǒng)也被證實(shí)可在嗜甲烷菌體系中應(yīng)用。Tapscott 等[42]在M. capsulatusBath 體內(nèi) 利用 CRISPR/Cas9 實(shí) 現(xiàn) 了sMMO的敲除及GFP蛋白的修飾。此外,Liu等[10]利用苯丙氨酰tRNA 合酶編碼基因phzSAG,在M. buryatense5GB1C 體系中開(kāi)發(fā)了一種基因無(wú)痕敲除方法,有效提升了基因敲除效率。以上這些基因操作方法的建立進(jìn)一步拓寬了嗜甲烷菌在甲烷轉(zhuǎn)化中的應(yīng)用,使嗜甲烷菌成為具有工業(yè)應(yīng)用前景的模式菌株[14],也為實(shí)現(xiàn)甲烷基化學(xué)品的高效生物合成打通了路徑(表2)。
表2 嗜甲烷菌人工細(xì)胞轉(zhuǎn)化甲烷合成化學(xué)品和生物燃料Tab.2 Biosynthesis of various chemicals and biofuels from methane by methanotrophic cell factories
當(dāng)前,基于化學(xué)品生物合成的嗜甲烷菌人工細(xì)胞的改造工作主要圍繞關(guān)鍵代謝節(jié)點(diǎn)(丙酮酸和乙酰輔酶A)累積和甲烷同化過(guò)程(RuMP 循環(huán)、絲氨酸循環(huán))理性改造開(kāi)展,通過(guò)有效地調(diào)控甲烷碳通量走向,實(shí)現(xiàn)碳轉(zhuǎn)化效率的提高和目標(biāo)產(chǎn)物的高效合成。如圖2 所示,RuMP 循環(huán)主要通過(guò)核酮糖-5-磷酸(ribulose-5-phosphate, Ru5P)利用甲醛以實(shí)現(xiàn)甲烷的同化[13]。其中,磷酸轉(zhuǎn)酮酶(phosphoketolase, PKT)途徑產(chǎn)生的赤蘚糖4-磷酸(E4P)或甘油-3-磷酸(GAP)重新排列,能夠?qū)崿F(xiàn)Ru5P的再生,從而促進(jìn)Ru5P對(duì)甲烷的同化效率[20,61]。通過(guò)磷酸轉(zhuǎn)酮途徑增加甲烷代謝的碳通量被認(rèn)為是一種十分有效的代謝工程改造方法,這一途徑的重構(gòu)已使得多種微生物人工細(xì)胞中的乙酰輔酶A 積累量顯著提高,為乙酰輔酶A衍生化學(xué)品的生物合成提供了可行的工程改造策略[62-65]。 以M. buryatense5G 為例 , Henard 等[61]研究發(fā)現(xiàn)該菌株通過(guò)RuMP 途徑可將6 分子甲醛轉(zhuǎn)化為2 分子的乙酰輔酶A,而利用RuMP-PKT途徑可將6 分子甲醛轉(zhuǎn)化為3 分子的乙酰輔酶A。同時(shí),RuMP-PKT 途徑能夠避免源于糖酵解(Embden-Meyerhof-Parnas, EMP)途徑中丙酮酸脫羧造成的ATP 消耗,從而在不損失碳和能量的情況下實(shí)現(xiàn)乙酰輔酶A 的合成[20]。此外,嗜甲烷菌中絲氨酸循環(huán)與乙基丙二酰輔酶(Ethylmalonyl-CoA,EMC)途徑及三羧酸循環(huán)緊密相連,絲氨酸循環(huán)產(chǎn)生的乙酰輔酶A 可被整合到乙基丙二酰輔酶通路中用于乙醛酸的再生和細(xì)胞產(chǎn)物PHB(poly-β-hydroxybutyrate)的生物合成[23]。作為關(guān)鍵中間代謝物和乙酰輔酶A 合成前體,丙酮酸合成效率也是甲烷基化學(xué)品合成的關(guān)鍵瓶頸。目前敲除其競(jìng)爭(zhēng)途徑是提高丙酮酸累積濃度的最有效、最簡(jiǎn)單的方式之一[20]。有研究發(fā)現(xiàn),嗜甲烷菌中的丙酮酸和GAP 的產(chǎn)量分別是乙酰輔酶A 的150 倍和30 倍,而在大腸桿菌中乙酰輔酶 A 的產(chǎn)量遠(yuǎn)高于丙酮酸和 GAP[20,66-67]。這可能是由于嗜甲烷菌中內(nèi)源MEP 途徑代謝通量較強(qiáng)導(dǎo)致丙酮酸和GAP 傾向于縮合形成脫氧-D-木酮糖5-磷酸(deoxy-D-xylulose 5-phosphate, DXP),從而減少了丙酮酸向乙酰輔酶A 合成過(guò)程的碳流。
圖2 嗜甲烷菌轉(zhuǎn)化甲烷合成化學(xué)品和燃料的代謝途徑[27]Fig.2 Metabolic pathways for the production of chemicals and fuels by methanotrophs using methane[27]
有機(jī)酸類化學(xué)品作為天然產(chǎn)物,在食品、制藥和生物基材料工業(yè)中應(yīng)用廣泛[68-72]。研究人員基于丙酮酸、乙酰輔酶A 以及磷酸烯醇式丙酮酸(phosphoenolpyruvic acid, PEP)等甲烷代謝中間產(chǎn)物構(gòu)建的嗜甲烷菌人工細(xì)胞已成功將甲烷轉(zhuǎn)化為C3~C18不同鏈長(zhǎng)的有機(jī)酸類化學(xué)品(表2)。乳酸(lactic acid)在嗜甲烷菌中的生物合成已在途徑構(gòu)建、模塊篩選以及培養(yǎng)優(yōu)化等方面均取得了重要進(jìn)展[33],這主要是得益于應(yīng)用合成生物學(xué)模塊化思路完成了嗜甲烷菌合成乳酸模塊的代謝路徑和表達(dá)水平的優(yōu)化。近期,Lee 等[32]基于適應(yīng)性進(jìn)化策略獲得乳酸耐受菌株Methylomonassp.DH-1 JHM80,通過(guò)基因組測(cè)序發(fā)現(xiàn)該菌株啟動(dòng)子區(qū)域突變引發(fā)了弱酸耐受調(diào)節(jié)子(weak acid tolerance regulator,WatR)表達(dá)的上調(diào)。隨后,該研究通過(guò)定向精準(zhǔn)調(diào)控watR基因的表達(dá)水平,使乳酸產(chǎn)量提高到1.19 g/L。嗜甲烷菌M.trichosporiumOB3b 中具有獨(dú)特的乙基丙二酰輔酶途徑,能夠利用 3 分子乙酰輔酶 A 同化 1 分子 CO2和 1 分子HCO3-,從而積累 2 分子蘋(píng)果酸[73-74]。Nguyen等[15]基于該菌株中特有的絲氨酸循環(huán),通過(guò)引入非產(chǎn)氧光合菌Chloroflexus aurantiacus中的還原酶(malonyl-CoA reductase,MCR),構(gòu)建了3-羥基丙酸(3-hydroxypropionic acid,3HP)合成模塊,并通過(guò)過(guò)表達(dá)蘋(píng)果酸酶(malic enzyme,ME)轉(zhuǎn)化蘋(píng)果酸實(shí)現(xiàn)了NADPH再生,為MCR催化過(guò)程提供了充足的還原力,進(jìn)而有效提高了3HP的產(chǎn)量。同時(shí),為了避免乙酰輔酶A羧化成丙二酰輔酶A的限速步驟,該研究將來(lái)源于費(fèi)氏丙酸桿菌(Propionibacterium freudenreichii) 中的甲基丙二酰羧基轉(zhuǎn)移酶(methylmalonyl-CoA carboxyltransferase,MMC)和磷酸烯醇式丙酮酸羧激酶(phosphoenolpyruvate carboxylase, PEPC)共表達(dá)用以構(gòu)建乙酰輔酶A羧化旁路[15,74-75]。此外,Garg 等[44]利用反向β-氧化途徑成功在M. buryatense5GB1C 內(nèi)構(gòu)建了異源丁烯酸(crotonic acid)合成途徑,并在此基礎(chǔ)上進(jìn)一步優(yōu)化了異源基因表達(dá)的核糖體結(jié)合位點(diǎn)和啟動(dòng)子、敲除磷酸轉(zhuǎn)乙酰酶基因pta以及過(guò)表達(dá)乙酰輔酶A合成酶將乙酸再循環(huán)為乙酰輔酶A,這些改造策略使該嗜甲烷菌人工細(xì)胞可以同時(shí)積累丁烯酸(70 mg/L)和丁酸(40 mg/L)[44,76-77],為甲烷基C4羧酸的合成提供了有效的策略。同樣,為了提高琥珀酸(succinic acid)產(chǎn)量,Nguyen等[56]通過(guò)引入異源異檸檬酸裂合酶(isocitrate lyase,Il)和蘋(píng)果酸合酶(malate synthase, Ms)用以分流乙醛酸并補(bǔ)充TCA循環(huán)中的蘋(píng)果酸鹽,從而成功將嗜甲烷菌絲氨酸代謝途徑中產(chǎn)生的草酸乙酸和乙酰輔酶A用于合成琥珀酸(圖2)。
近期,Henard 等[45]圍繞莽草酸途徑,利用13C代謝分析建立的基因尺度模型(genome-scale metabolic models, GSMs) 預(yù) 測(cè) 了M. alcaliphilum20Z 合成黏糠酸的競(jìng)爭(zhēng)途徑。雖然基于模型分析結(jié)果敲除了丙酮酸脫氫酶(pyruvate dehydrogenase,Pdh)和莽草酸脫氫酶(shikimate dehydrogenase,Skd)編碼基因AroE,但黏糠酸的產(chǎn)量?jī)H1.5 mg/g DCW,為預(yù)測(cè)產(chǎn)量值的6.5%。這可能是由于M.alcaliphilum20Z 中存在莽草酸合成的替代途徑或Skd 的同工酶,敲除競(jìng)爭(zhēng)途徑并未能充分地將碳流轉(zhuǎn)向黏糠酸。值得一提的是,基因測(cè)序技術(shù)及組學(xué)(基因組學(xué)、轉(zhuǎn)錄組學(xué)、蛋白質(zhì)組、代謝組)技術(shù)也為深入理解嗜甲烷菌的生理學(xué)基礎(chǔ)、細(xì)胞代謝和反應(yīng)過(guò)程提供了新的方法[46,51,67,77-83]。在嗜甲烷菌中,由于中心代謝途徑與細(xì)胞內(nèi)膜合成相關(guān)聯(lián),因而能夠積累大量的長(zhǎng)鏈脂肪酸(fatty acids)。Demidenko 等[46]利用轉(zhuǎn)錄組分析發(fā)現(xiàn)M.buryatense5GB1 菌株中脂肪酸降解、乙酰輔酶A和丙二酰輔酶A供給水平是提高脂肪酸產(chǎn)量的瓶頸,在敲除醋酸激酶和過(guò)表達(dá)乙酰輔酶A 羧化酶后,脂肪酸的積累量較原始菌株提高了20%。而Fei 等[84]則在上述研究的基礎(chǔ)上進(jìn)一步敲除糖原、蔗糖-6-磷酸等競(jìng)爭(zhēng)路徑基因,最終在高密度發(fā)酵條件下將長(zhǎng)鏈脂肪酸的產(chǎn)率提高了3倍。上述研究成果充分說(shuō)明利用組學(xué)數(shù)據(jù)進(jìn)而確立代謝改造靶點(diǎn),可在深入認(rèn)識(shí)嗜甲烷菌的代謝系統(tǒng)及生化反應(yīng)機(jī)制機(jī)理的同時(shí),有效提高目標(biāo)產(chǎn)物和合成效率。
雖然在嗜甲烷菌體內(nèi)有部分甲基赤蘚糖醇-4-磷酸(methylerythritol-4-phosphate, MEP)途徑或甲羥戊酸(mevalonate, MVA)途徑,但考慮到MEP 途徑擁有較高的IPP 的理論合成率,甲烷基萜類化學(xué)品主要通過(guò)改造和優(yōu)化MEP 途徑實(shí)現(xiàn)[11,20,67]。Leonard 等[52]為了 強(qiáng) 化 IspS 催 化 活性,將葛根(Pueraria montana)中的IspS 經(jīng)密碼子優(yōu)化后,利用MDH 強(qiáng)啟動(dòng)子在M. capsulatusBath 中表達(dá)并首次獲得了10 mg/L 異戊二烯。而Donaldson 等[85]試圖利用異源 IspS 以及異戊烯基焦 磷 酸 異 構(gòu) 酶 (isopentenyl diphosphate isomerase, IDI)雙基因提高異戊二烯合成效率,但遺憾的是異戊二烯的產(chǎn)量?jī)H為0.056 mg/L,這主要是由于雙基因表達(dá)效率及催化活性限制造成了該合成模塊較低的碳通量。整體來(lái)看,現(xiàn)階段嗜甲烷菌合成異戊二烯的研究主要集中于合成途徑構(gòu)建,節(jié)點(diǎn)累積和輔因子及能量供給平衡等代謝改造策略的研究相對(duì)較少。
除了異戊二烯,檸檬烯(limonene)和法尼烯(Farnesene)等萜類化合物也是重要的精細(xì)化學(xué)品、香料、藥品的合成前體[86]。DiCosimo 等[59]利用pR58 載體,將異源檸檬烯合成酶(limonene synthase)在Methylomonassp.16a 菌株中表達(dá),首次實(shí)現(xiàn)在嗜甲烷菌中累積0.5 mg/L 檸檬烯。而Nguyen 等[48]則 基 于M. alcaliphilum20Z 菌 株 中MEP 途徑的中間代謝物法尼焦磷酸(Farnesyl pyrophosphate, FPP),通過(guò)引入異源蛇麻烯合成酶(humulene synthase)Zssl[48,87],成功實(shí)現(xiàn)了蛇麻烯的從頭合成。圍繞過(guò)表達(dá)合成關(guān)鍵酶(IspA、IspG 及 Dxs)、重新定向 EMP 途徑、NADPH 輔因子再生、電子供應(yīng)強(qiáng)化、基因尺度模型等策略,該研究首次對(duì)萜類化學(xué)品的合成途徑進(jìn)行了系統(tǒng)的理性代謝工程改造和優(yōu)化,最終將蛇麻烯產(chǎn)量提高到0.75 mg/g DCW,達(dá)到出發(fā)菌株的18.8 倍[67,81](圖 2)。角黃素(canthaxanthin)、蝦青素(astaxanthin)和番茄紅素(lycopene)[88]等類胡蘿卜素產(chǎn)物也可在嗜甲烷菌中實(shí)現(xiàn)生物合成[88],但產(chǎn)量仍有待進(jìn)一步提高。
隨著可持續(xù)發(fā)展戰(zhàn)略的提出,生物醇類物質(zhì)作為生物能源的前體,近年來(lái)備受工業(yè)界和科學(xué)界的關(guān)注[54,89-90]。研究人員結(jié)合基因尺度模型i20ZR-BDO的分析數(shù)據(jù),預(yù)測(cè)了2,3-丁二醇(2,3-butanediol, BDO)合成過(guò)程的改造靶點(diǎn),在累計(jì)敲除競(jìng)爭(zhēng)途徑中的ldh、ack和mdh等基因后,將BDO 濃度提升到 86.2 mg/L[14]。為充分發(fā)揮基因尺度模型在嗜甲烷菌人工細(xì)胞設(shè)計(jì)、構(gòu)建及優(yōu)化中的重要作用,Nguyen 研究組又建立了基于尸胺(cadaverine)和腐胺(putrescine)生物合成的基因尺度模型,預(yù)測(cè)了關(guān)鍵代謝節(jié)點(diǎn)和終端產(chǎn)物的代謝工程改造靶點(diǎn)。通過(guò)過(guò)表達(dá)目的基因、敲除競(jìng)爭(zhēng)途徑或強(qiáng)化產(chǎn)物分泌效率,有效地提高了碳通量,并最終分別將尸胺和腐胺的產(chǎn)量提高到283.64 mg/L[14]和 98.08 mg/L[49]。此外,與大腸桿菌及釀酒酵母相比,嗜甲烷菌在RuMP途徑代謝中更具優(yōu)勢(shì)。研究人員通過(guò)將異源2-脫甲基4-脫氧葡萄糖醇合酶(2-demethyl 4-deoxygadusol synthase,DDGS)、氧甲基轉(zhuǎn)移酶(O-methyltransferase,OMT)、ATP-連接酶(ATP-grasp ligase)和丙氨酸連接酶(D-Ala-D-Ala ligase)整合到M.alcaliphilum20Z 中,成功設(shè)計(jì)并合成了具有防曬功能的類菌胞素氨基酸 Shinorine[91,92]。與此同時(shí),研究人員基于銅、鈣等微量元素對(duì)MMO 及MDH 活性的影響機(jī)理,在微生物培養(yǎng)過(guò)程添加上述微量元素并利用操縱子計(jì)算器(operon calculator) 進(jìn)一步優(yōu)化了Shinorine 合成模塊,將產(chǎn)量提高到31 mg/L[39,78,93](圖 2)。上述基于系統(tǒng)生物學(xué)及合成生物學(xué)的代謝工程策略已廣泛應(yīng)用于嗜甲烷菌人工細(xì)胞的構(gòu)建和優(yōu)化。
隨著全球甲烷供應(yīng)量的增加,特別是天然氣和沼氣產(chǎn)量的提高[94-96],人們對(duì)甲烷的生物轉(zhuǎn)化利用產(chǎn)生了更廣泛關(guān)注。近年來(lái),由于具有相對(duì)高效的甲烷固定途徑以及能夠?qū)崿F(xiàn)高密度發(fā)酵,嗜甲烷菌作為甲烷轉(zhuǎn)化人工細(xì)胞在化學(xué)品合成中表現(xiàn)出了良好的應(yīng)用前景[37,97]。利用其特有的甲烷氧化和同化系統(tǒng),結(jié)合前沿的基因編輯工具及代謝途徑調(diào)控策略,目前已開(kāi)發(fā)了不同類型和功能的嗜甲烷工程菌用于生物合成化學(xué)品,并展現(xiàn)出了獨(dú)特的優(yōu)勢(shì)[15,67,98-99]。雖然通過(guò)代謝工程改造已實(shí)現(xiàn)多種甲烷基化學(xué)品生物合成,但目前嗜甲烷菌人工細(xì)胞相關(guān)研究仍然處在關(guān)鍵共性基礎(chǔ)技術(shù)的研發(fā)階段,在設(shè)計(jì)、構(gòu)建和優(yōu)化等方面仍然面臨很多挑戰(zhàn)[67,82,98,100-101]。
盡管基于嗜甲烷菌工業(yè)菌株已開(kāi)發(fā)出多種基因操作工具,但相較于大腸桿菌和釀酒酵母等模式菌株,嗜甲烷菌中可用于人工細(xì)胞構(gòu)建的生物技術(shù)仍十分有限,而針對(duì)外源基因在嗜甲烷菌人工細(xì)胞內(nèi)穩(wěn)定表達(dá)的基因轉(zhuǎn)化方法也亟需進(jìn)行拓展。此外,嗜甲烷菌中電子傳遞系統(tǒng)、生物固氮/固硫機(jī)制、磷酸鹽代謝調(diào)控等關(guān)鍵科學(xué)問(wèn)題的研究也有待探究。未來(lái)相關(guān)工作需進(jìn)一步提高嗜甲烷菌基因尺度模型預(yù)測(cè)的準(zhǔn)確性,并基于對(duì)代謝機(jī)制機(jī)理的探索,有針對(duì)性地改造和優(yōu)化化學(xué)品合成路徑。同時(shí),結(jié)合各類組學(xué)分析數(shù)據(jù),從系統(tǒng)生物學(xué)角度加深對(duì)嗜甲烷菌細(xì)胞行為的認(rèn)識(shí),明確嗜甲烷菌特異性基因表達(dá)調(diào)控機(jī)制、甲烷代謝過(guò)程的酶活性以及代謝流分布,為高效關(guān)鍵基因元件挖掘和人工細(xì)胞構(gòu)建提供理論指導(dǎo),為甲烷的高效生物利用和化學(xué)品合成提供全新的研究思路和工業(yè)應(yīng)用。
符號(hào)說(shuō)明