沈衛(wèi)鋒,郭 琦,劉 莉,牛寶龍,翁宏飚,樓 寶
(浙江省農(nóng)業(yè)科學(xué)院 水生生物研究所,浙江 杭州 310021)
微孢子蟲(chóng)(microsporidia)是一種單細(xì)胞的真核內(nèi)寄生蟲(chóng),廣泛寄生于蝦、甲殼類(lèi)等動(dòng)物。蝦肝腸胞蟲(chóng)(Enterocytozoonhepatopenaei,EHP)是微孢子蟲(chóng)的一種,屬于腸胞蟲(chóng)科、腸胞蟲(chóng)屬,最早于2009年在泰國(guó)養(yǎng)殖的斑節(jié)對(duì)蝦(Penaeusmonodon)中發(fā)現(xiàn),隨后在亞洲各國(guó)的凡納濱對(duì)蝦、脊尾白蝦和中國(guó)對(duì)蝦養(yǎng)殖區(qū)陸續(xù)有EHP檢出[1]。研究表明,EHP的感染途徑較廣,可通過(guò)污染的養(yǎng)殖水體和病蝦進(jìn)行水平傳播,也可以通過(guò)受精卵和蝦苗進(jìn)行垂直傳播[2]。EHP感染的對(duì)蝦初期沒(méi)有明顯癥狀,但隨著病程的發(fā)展體色、胃、腸均表現(xiàn)出明顯異常,體色發(fā)白、腸道吸收功能下降,嚴(yán)重的出現(xiàn)肝胰腺萎縮,個(gè)別蝦體還會(huì)出現(xiàn)白便癥狀。由于該病在早期難以發(fā)現(xiàn),往往要養(yǎng)殖30~45 d以上才會(huì)表現(xiàn)出生長(zhǎng)緩慢,不長(zhǎng)個(gè)的現(xiàn)象,因此,極易造成飼料空耗,給養(yǎng)殖戶帶來(lái)巨大的經(jīng)濟(jì)損失[3-4]。近幾年,EHP在全世界范圍內(nèi)傳播,中國(guó)、馬來(lái)西亞、越南、印度尼西亞、泰國(guó)已經(jīng)成為了重災(zāi)區(qū),印度和墨西哥也有發(fā)現(xiàn),極大地打擊了蝦農(nóng)的養(yǎng)殖積極性。
常用的EHP檢測(cè)方法包括:組織病理學(xué)觀察、電子顯微鏡觀察、PCR、原位雜交等[5-10],其中PCR方法因其高特異性、高靈敏度的優(yōu)勢(shì)而被廣泛使用。目前,EHP的PCR檢測(cè)方法已有一定數(shù)量報(bào)道,且主要集中在以一個(gè)核糖體小亞基作為PCR的目的基因[7,10]。經(jīng)NCBI檢索,我們發(fā)現(xiàn)該擴(kuò)增的目標(biāo)區(qū)域與其他微孢子蟲(chóng)的核糖體序列具有較高同源性,因此,用這些方法進(jìn)行EHP檢測(cè)容易造成非特異性擴(kuò)增,從而增加假陽(yáng)性率。
本研究通過(guò)電子克隆方法擴(kuò)增到了EHP的一種孢壁蛋白基因(SWP2),該基因目前在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中還未登錄,同時(shí)也檢索不到與之匹配的其他物種核酸序列。因此,以該基因?yàn)閿U(kuò)增靶標(biāo)所設(shè)計(jì)引物的特異性強(qiáng),與病原EHP之間存在明確的對(duì)應(yīng)關(guān)系,適合用來(lái)開(kāi)展蝦類(lèi)EHP感染的定性檢測(cè)。
羅氏沼蝦(Macrobrachiumrosenbergii)檢測(cè)樣本由浙江海鹽紅寶石水產(chǎn)有限公司提供。
基因組提取試劑盒TIANamp Genomic DNA Kit購(gòu)于北京TIANGEN公司;PfuDNA聚合酶購(gòu)于北京全式金生物技術(shù)有限公司;PCR反應(yīng)試劑購(gòu)于上海翊圣生物科技有限公司;DNA膠回收試劑盒、質(zhì)粒提取試劑盒購(gòu)于生工生物工程(上海)股份有限公司;NdeⅠ和XhoⅠ限制性內(nèi)切酶、pET15b載體、T4 DNA連接酶、Top10和BL21(DE3)感受態(tài)細(xì)胞由生工生物工程(上海)股份有限公司提供。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
超聲波細(xì)胞破碎儀,天津津立儀器設(shè)備科技發(fā)展有限公司;全溫度振蕩培養(yǎng)箱,常州銳品精密儀器有限公司;高速冷凍離心機(jī),湖南湘儀離心機(jī)儀器有限公司;PCR儀,北京東勝創(chuàng)新生物科技有限公司。
取20只活蝦,解剖獲得每只蝦的肝胰腺,保存于-70 ℃。取其中一小塊肝胰腺組織均勻涂抹于潔凈的載玻片上,用蘇木精-伊紅染色,在光學(xué)顯微鏡下觀察每個(gè)樣品中EHP的存在。通過(guò)顯微鏡觀察確定感染EHP的樣品,并取這些樣品剩余的肝胰腺組織,每個(gè)樣品10 mg,利用基因組DNA提取試劑盒提取DNA,提取方法參照試劑盒操作手冊(cè)。
以蝗蟲(chóng)SWP2基因的蛋白序列(API85832.1)為模板,檢索NCBI的蛋白數(shù)據(jù)庫(kù),檢索到了一條來(lái)源于EHP且有228個(gè)氨基酸的同源蛋白(OQS53873.1),并根據(jù)該序列找到了EHP的全基因組數(shù)據(jù);定位SWP2蛋白在EHP全基因組序列上的相應(yīng)位置,整理獲得SWP2基因cDNA序列,命名為EHP-SWP2。以EHP-SWP2為靶基因設(shè)計(jì)PCR引物SWP2-F與SWP2-R,以EHP陽(yáng)性DNA為模板,進(jìn)行PCR反應(yīng)及產(chǎn)物克隆測(cè)序,驗(yàn)證通過(guò)電子克隆方法獲得的SWP2基因cDNA序列的正確性。
利用BLAST在線工具(http://blast.ncbi.nlm.nih.gov/Blast.cgi)進(jìn)行序列相似性分析;利用DNAMAN 6.0軟件進(jìn)行核苷酸和推定的氨基酸序列分析;利用ProtParam(http://www.pasy.org/tools/protparam.html)預(yù)測(cè)蛋白的相對(duì)分子質(zhì)量及等電點(diǎn);利用CLUSTAL Omega(http://www.ebi.ac.uk/Tools/msa/clustal)進(jìn)行氨基酸的多序列比對(duì); 利用 MEGA 7.0軟件中的鄰接法(neighbor-joining method)(bootstrap值為1 000次)構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)。
1.6.1 重組質(zhì)粒構(gòu)建
構(gòu)建 pET15b-EHPSWP2載體步驟如下:(1)將PCR產(chǎn)物和pET-15b載體進(jìn)行雙酶切。雙酶切體系:NdeⅠ(10 U·μL-1)與XhoⅠ(10 U·μL-1)各1 mL,10×FD Buffer 5 μL,目的片段20 mL,ddH2O補(bǔ)足50 μL。(2)連接酶切產(chǎn)物: PCR雙酶切產(chǎn)物與pET15b載體雙酶切產(chǎn)物比例為 7∶1,T4 DNA連接酶(5 U·μL-1)1 μL,10×T4 DNA連接酶Buffer 2 μL,ddH2O補(bǔ)足20 μL。(3)檢測(cè)陽(yáng)性克隆:挑取克隆,經(jīng)PCR與雙酶切驗(yàn)證正確的質(zhì)粒送至生工生物工程(上海)股份有限公司測(cè)序驗(yàn)證。
1.6.2 蛋白表達(dá)與純化
將測(cè)序正確的 pET15b(+)-SWP2重組質(zhì)粒轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞,熱激后涂布抗生素平板過(guò)夜;挑取單克隆到含有抗生素的液體培養(yǎng)基培養(yǎng)過(guò)夜,按1∶100的比例將菌液加至新的含有氨芐的LB液體培養(yǎng)基中,培養(yǎng)至D值0.6時(shí),添加0.5 mmol·L-1IPTG,20 ℃條件下過(guò)夜培養(yǎng)進(jìn)行大量表達(dá)。離心收集細(xì)胞菌體并破碎細(xì)胞,分別對(duì)上清和沉淀進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)。取上清粗蛋白與平衡后的柱填料孵育1 h,上柱收集流出,用Binding buffer清洗平衡柱子;用Washing buffer清洗柱子,并收集流出,然后用Elution buffer洗脫,收集流出。對(duì)粗蛋白、洗雜流出、洗脫流出分別進(jìn)行SDS-PAGE檢測(cè)和Western blot驗(yàn)證。將純度較好的3組分透析到緩沖液中,PEG20000濃縮,0.22 μm濾膜過(guò)濾后分裝,-80 ℃保存。
1.7.1 動(dòng)物免疫與小鼠效價(jià)測(cè)定
表達(dá)純化獲得的SWP2蛋白采用常規(guī)免疫方法對(duì)BALB/c小鼠進(jìn)行免疫。初免后每隔3周免疫一次,細(xì)胞融合前3 d將小鼠再?zèng)_擊免疫一次。使用間接ELISA方法檢測(cè)免疫小鼠血清的抗體效價(jià),選取免疫效價(jià)檢測(cè)值最高的小鼠追加免疫一次。
1.7.2 細(xì)胞融合與雜交瘤細(xì)胞株的篩選
取效價(jià)最高且加強(qiáng)免疫的小鼠脾細(xì)胞,與提前復(fù)蘇備用的骨髓瘤細(xì)胞進(jìn)行融合,加入用HAT的細(xì)胞培養(yǎng)液吹打成單細(xì)胞懸液,鋪入96孔細(xì)胞培養(yǎng)板。細(xì)胞融合后第7天,通過(guò)ELISA間接法對(duì)所有細(xì)胞孔進(jìn)行初次篩選,對(duì)初篩呈陽(yáng)性的各細(xì)胞孔進(jìn)行擴(kuò)大培養(yǎng)和克隆化。經(jīng)數(shù)次克隆化直至所有細(xì)胞孔檢測(cè)陽(yáng)性率為100%時(shí),即可確定已獲得分泌單克隆抗體的雜交瘤細(xì)胞株,將陽(yáng)性雜交瘤細(xì)胞擴(kuò)大培養(yǎng)并凍存。
1.7.3 單克隆抗體的制備與純化
取6周齡健康雌性小鼠,腹腔注射(1~2)×106個(gè)陽(yáng)性雜交瘤細(xì)胞,7~10 d后待小鼠腹腔明顯膨大后收集腹水,離心取上清液,并倒入純化柱。靜置,待beads全部沉淀后收集腹水流穿。重復(fù)上述操作,10倍柱體積的1×PBS沖洗純化柱,將洗脫液加入純化柱并封閉下端,待beads全部沉淀后流出液體,用1.5 mL離心管收集洗脫液,分光光度計(jì)測(cè)定濃度并檢測(cè)抗體效價(jià)。
1.8.1 PCR方法
將EHP-SWP2作為靶基因設(shè)計(jì)PCR引物SWP2-F/R,擴(kuò)增目標(biāo)片段長(zhǎng)度為568 bp,同時(shí)以EHP-18S作為靶基因設(shè)計(jì)引物18S-F/R,擴(kuò)增目標(biāo)片段長(zhǎng)度為801 bp(表1)。以確定攜帶EHP羅氏沼蝦DNA為模板,分別以SWP2-F/R和18S-F/R為引物對(duì)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,反應(yīng)體系:2×PCR Master Mix 10.0 μL,10 mmol·L-1引物各0.5 μL,模板DNA 2.0 μL,ddH2O 7.0 μL。PCR反應(yīng)程序:95 ℃預(yù)變性5 min;95 ℃變性30 s,55 ℃復(fù)性30 s,72 ℃延伸1 min,共40個(gè)循環(huán);最后72 ℃延伸5 min,反應(yīng)完畢后進(jìn)行瓊脂糖電泳分析。
1.8.2 Western blot方法
取約30 mg蝦的肝胰腺組織,于冰上邊加液氮邊將組織研磨成粉末狀,加蛋白裂解液RIPA、蛋白酶抑制劑和磷酸酶抑制劑,靜置于冰上30 min充分裂解,離心取上清液,BCA 法檢測(cè)蛋白質(zhì)濃度。取30 μg蛋白上清液,以10%聚丙烯酰胺凝膠進(jìn)行電泳分離和濕法轉(zhuǎn)膜,再以5%脫脂牛奶室溫封閉60 min,加入單抗(1∶5 000稀釋)于4 ℃孵育過(guò)夜。用TBST洗膜,加入羊抗鼠二抗(1∶10 000稀釋)室溫孵育40 min,再用TBST洗膜。用ECL化學(xué)發(fā)光液顯影和定影,檢測(cè)SWP2蛋白的存在。其中0號(hào)為EHP陰性的羅氏沼蝦樣品,1~5號(hào)為EHP陽(yáng)性的羅氏沼蝦樣品。
表1 引物序列
SWP2基因的cDNA全長(zhǎng)1 019 bp,包含一個(gè)名為MICSWaP的微孢子蟲(chóng)專(zhuān)屬的保守結(jié)構(gòu)域。開(kāi)放閱讀框(ORF)為687 bp,編碼一個(gè)含有229個(gè)氨基酸殘基的蛋白,5′非編碼區(qū)(UTR)為120 bp,3′非編碼區(qū)(UTR)為179 bp。Protparam在線軟件預(yù)測(cè)ORF編碼蛋白的相對(duì)分子質(zhì)量為26.32 ku,等電點(diǎn)為5.21,是親水酸性蛋白,無(wú)跨膜結(jié)構(gòu)(圖1)。以EHP陽(yáng)性的羅氏沼蝦DNA為模板,SWP2-F/R為引物,PCR擴(kuò)增獲得了長(zhǎng)度為568 bp的片段,測(cè)序結(jié)果顯示PCR產(chǎn)物序列與電子克隆獲得的EHP-SWP2 cDNA序列完全一致。
圖1 EHP-SWP2基因cDNA全長(zhǎng)序列及其編碼蛋白氨基酸序列Fig.1 Complete nucleotide sequences and deduced amino acid sequences of the EHP-SWP2 gene
將EHPSWP2蛋白與同源性較高的其他微孢子蟲(chóng)孢壁蛋白進(jìn)行比較,并構(gòu)建了系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)(圖2)。其中,Enterocytozoonbieneusi是一種能引起人類(lèi)腹瀉的微孢子蟲(chóng),Hepatosporaeriocheir是一種寄生于絨螯蟹的肝腸微孢子蟲(chóng),Vittaformacorneae是一種能引起人類(lèi)眼睛疾病的微孢子蟲(chóng),Tubulinosemaratisbonensis是一種寄生于黑腹果蠅的微孢子蟲(chóng)。系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)顯示Enterocytozoonbieneusi與Hepatosporaeriocheir處于同一分支,它們與EHP具有較近的親緣關(guān)系,Tubulinosemaratisbonensis與EHP遺傳距離最遠(yuǎn),表明親緣關(guān)系較遠(yuǎn)。
圖2 鄰接法構(gòu)建的基于蝦肝腸微孢子蟲(chóng)EHP-SWP2蛋白與其他微孢子蟲(chóng)孢壁蛋白氨基酸序列的系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù)Fig.2 Phylogenetic tree of EHP-SWP2 protein and SWP protein from other microsporidia based on amino acid sequences with neighbor-joining method
表達(dá)載體構(gòu)建過(guò)程中酶切電泳見(jiàn)圖3-A、B,其中圖3-A表示SWP2基因片段的PCR產(chǎn)物,圖3-B表示重組載體的單酶切產(chǎn)物,兩個(gè)片段大小與理論片段大小相一致,說(shuō)明表達(dá)載體構(gòu)建成功。利用鎳瓊脂糖親和層析方法對(duì)SWP2蛋白進(jìn)行分離純化,并用SDS-PAGE 蛋白電泳驗(yàn)證蛋白相對(duì)分子質(zhì)量大小(圖3-D)。通過(guò)His-tag 標(biāo)簽抗體檢測(cè)表達(dá)的重組蛋白,結(jié)果顯示,重組His-SWP2 蛋白在28 ku處有一條明顯條帶,大小和重組蛋白預(yù)測(cè)一致(圖3-C)。
A,SWP2基因片段PCR產(chǎn)物;B,重組質(zhì)粒酶切;C,重組蛋白的Western驗(yàn)證;D,SDS-PAGE 鑒定純化的His-SWP2重組蛋白。A,PCR fragment of SWP2 gens; B,Recombinant plasmid digestion; C,Western verification of recombinant protein; D,Verification of His-SWP2 protein with SDS-PAGE.圖3 EHP-SWP2基因克隆與重組表達(dá)Fig.3 Cloning and expression of EHP-SWP2 gene
共獲得3株能穩(wěn)定分泌單克隆抗體的單克隆細(xì)胞株,分別命名為2D11H7、3G3D4、3H3C8,經(jīng)純化后的抗體的效價(jià)和濃度檢測(cè)結(jié)果如表2,其中3H3C8菌株的效價(jià)最高,以此菌株制備高效的單克隆抗體為后續(xù)Western blot實(shí)驗(yàn)使用。
表2 不同細(xì)胞株分泌的單克隆抗體的效價(jià)和濃度檢測(cè)結(jié)果
從海鹽紅寶石水產(chǎn)有限公司提供的羅氏沼蝦送檢樣品中隨機(jī)抽取20個(gè),解剖獲得肝胰腺組織,用蘇木精-伊紅染色后在光學(xué)顯微鏡下觀察,發(fā)現(xiàn)其中的5個(gè)樣品有EHP感染。用這5個(gè)樣品剩余的肝胰腺組織提取DNA,分別用SWP2-F/R和18S-F/R引物對(duì)進(jìn)行PCR擴(kuò)增,電泳結(jié)果顯示:用SWP2-F/R引物對(duì)擴(kuò)增后的1~5號(hào)樣品均在550 bp左右位置出現(xiàn)明顯條帶,而用18S-F/R引物對(duì)擴(kuò)增后僅1號(hào)和4號(hào)樣品在800 bp左右位置出現(xiàn)明顯條帶(圖4)。
1~5號(hào)泳道,1-5號(hào)EHP陽(yáng)性樣品用SWP2-F/R引物的擴(kuò)增結(jié)果;7~11號(hào)泳道,1-5號(hào)EHP陽(yáng)性樣品用18S-F/R引物的擴(kuò)增結(jié)果;6號(hào)泳道為DL2000分子質(zhì)量標(biāo)記。Lane 1-5,PCR results to No. 1-5 positive samples with SWP2-F/R primer; Lane 7-11,PCR results to No. 1-5 positive samples with 18S-F/R primer; Lane 6,DNA marker (DL2000).圖4 兩種引物PCR檢測(cè)效果比較Fig.4 Comparison of PCR detection with two kinds of primers
對(duì)上述5個(gè)蝦的肝胰腺樣品提取蛋白進(jìn)行Western blot方法驗(yàn)證,蛋白雜交結(jié)果顯示:1~5號(hào)樣品均出現(xiàn)特異性條帶(陰性對(duì)照樣品無(wú)條帶),說(shuō)明1~5號(hào)樣品均感染了EHP(圖5)。
0號(hào)泳道,EHP陰性樣品的雜交結(jié)果;1~5號(hào)泳道,1~5號(hào)EHP陽(yáng)性樣品的雜交結(jié)果。Lane 0,Negative sample with Western blot; Lane 1-5,Results to No. 1-5 positive samples with Western blot.圖5 Western blot檢測(cè)結(jié)果Fig.5 Results of Western blot analysis
孢壁蛋白是微孢子蟲(chóng)的一種結(jié)構(gòu)蛋白,它在不同真核生物中的同源性很低,目前僅有少數(shù)孢壁蛋白被鑒定出來(lái),如:來(lái)源于Encephalitozoonintestinalis的SWP1、SWP2、EnP1[11-12],來(lái)源于E.cuniculi的EcSWP1、SWP3、EcCDA、EnP1、EnP2[13-16],來(lái)源于家蠶微孢子蟲(chóng)(Nosemabombycis)的SWP7、SWP9、SWP26、SWP30、SWP32等[17-19],來(lái)源于蝗蟲(chóng)微孢子蟲(chóng)的AlocSWP1、AlocSWP2等[20-21]。研究表明,微孢子蟲(chóng)的孢壁蛋白在孢子形成、寄主細(xì)胞識(shí)別與侵染等過(guò)程中發(fā)揮重要作用。本研究通過(guò)生物信息學(xué)方法從公布的EHP全基因組序列中克隆到了一個(gè)孢壁蛋白SWP2,該蛋白編碼229個(gè)氨基酸,預(yù)測(cè)分子量為26.32 ku,大腸埃希菌原核表達(dá)結(jié)果顯示SWP2實(shí)際大小與預(yù)測(cè)一致。
除了肝胰腺組織外,腸道是EHP感染蝦體的另一個(gè)重要組織,在養(yǎng)殖過(guò)程中,感染了EHP的蝦往往會(huì)出現(xiàn)“光吃飼料不長(zhǎng)個(gè)”的病癥,這就是營(yíng)養(yǎng)消化吸收障礙的典型癥狀。我們用EHP-SWP2蛋白序列在NCBI數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行同源比對(duì),發(fā)現(xiàn)SWP2蛋白與引起人類(lèi)腸道頑固性腹瀉的畢氏腸孢蟲(chóng)(E.bieneusi)的一個(gè)蛋白同源性高達(dá)52%,這或許從另一個(gè)側(cè)面說(shuō)明了EHP感染與蝦類(lèi)腸道疾病發(fā)生的相關(guān)性。
關(guān)于EHP的PCR檢測(cè)方法已有不少報(bào)道,但主要是以核糖體18S為靶基因。有研究人員設(shè)計(jì)了V1F/964R、510F/510R等不同引物對(duì)來(lái)檢測(cè)EHP的存在[6,22],但用這些引物擴(kuò)增得到的片段序列經(jīng)NCBI檢索,發(fā)現(xiàn)與其他微孢子蟲(chóng)核糖體18S序列具有較高同源性,因此,這些片段很有可能來(lái)源于其他種屬的微孢子蟲(chóng),而并非是引起蝦肝腸微孢子蟲(chóng)病的EHP。本研究以EHP-SWP2基因?yàn)榘袠?biāo),設(shè)計(jì)了特異性引物SWP2-F/R,并應(yīng)用在羅氏沼蝦EHP感染的檢測(cè)中,同時(shí)以18S-F/R引物作為對(duì)照。PCR結(jié)果顯示:5個(gè)確定的陽(yáng)性樣品用SWP2-F/R引物均能得到正確條帶,而用18S-F/R引物只有2個(gè)樣品出現(xiàn)條帶,說(shuō)明SWP2-F/R引物的檢測(cè)成功率明顯優(yōu)于18S-F/R引物。我們推測(cè),由于核糖體18S基因在不同種屬微孢子蟲(chóng)中具有較高保守性,一旦檢測(cè)樣品中除了EHP外存在其他種類(lèi)微孢子蟲(chóng),就容易造成引物在退火配對(duì)過(guò)程中與其他微孢子蟲(chóng)的18S基因形成非特異性結(jié)合,從而影響其與EHP-18S基因片段的結(jié)合能力。而SWP2-F/R引物針對(duì)SWP2基因,孢壁蛋白基因?yàn)榱诉m應(yīng)不同寄主的生理特點(diǎn)進(jìn)化出了更高的特異性,因此,比核糖體18S基因更適合于微孢子蟲(chóng)種屬的鑒定。本研究還通過(guò)蛋白原核表達(dá)、單克隆抗體制備、Western blot雜交等一系列實(shí)驗(yàn),證明了SWP2蛋白與序列分析的預(yù)測(cè)結(jié)果一致,同時(shí)利用單克隆抗體進(jìn)行蛋白雜交也可以作為蝦類(lèi)EHP病害的一種檢測(cè)方法。
目前EHP的SWP1、SWP2基因已克隆,但是否還有其他孢壁蛋白基因的存在還需要挖掘。孢壁蛋白在寄主識(shí)別與侵染過(guò)程中起著關(guān)鍵作用,因此進(jìn)一步研究該類(lèi)蛋白的功能及與寄主的互作方式對(duì)于蝦肝腸微孢子蟲(chóng)病的發(fā)生與防治具有重要指導(dǎo)意義。
參考文獻(xiàn)(References):
[1] TOURTIP S,WONGTRIPOP S,STENTIFORD G D,et al.Enterocytozoonhepatopenaei sp. nov. (Microsporida: Enterocytozoonidae),a parasite of the black tiger shrimpPenaeusmonodon(Decapoda: Penaeidae): fine structure and phylogenetic relationships[J].JournalofInvertebratePathology,2009,102(1): 21-29.
[2] SALACHAN P V,JAROENLAK P,THITAMADEE S,et al. Laboratory cohabitation challenge model for shrimp hepatopancreatic microsporidiosis (HPM) caused byEnterocytozoonhepatopenaei(EHP)[J].BMCVeterinaryResearch,2017,13(1): 1-7.
[3] 楊明,丁福江. 羅氏沼蝦產(chǎn)業(yè)健康發(fā)展措施初探[J]. 上海農(nóng)業(yè)科技,2014(3): 62.
YANG M,DING F J. Study on the healthy development ofMacrobrachiumrosenbergiiindustry[J].ShanghaiAgriculturalScienceandTechnology,2014(3): 62. (in Chinese)
[4] 許杰,鄧威,李軍,等. 蝦肝腸胞蟲(chóng)(EHP)流行病學(xué)與檢測(cè)技術(shù)研究進(jìn)展[J]. 中國(guó)動(dòng)物檢疫,2018,35(2): 64-68.
XU J,DENG W,LI J,et al. Research progress on epidemiology and detection technology ofEnterocytozoonhepatopenaei(EHP)[J].ChinaAnimalHealthInspection,2018,35(2): 64-68.(in Chinese with English abstract)
[5] WIREDU BOAKYE D,JAROENLAK P,PRACHUMWAT A,et al. Decay of the glycolytic pathway and adaptation to intranuclear parasitism within Enterocytozoonidae microsporidia[J].EnvironmentalMicrobiology,2017,19(5): 2077-2089.
[6] TANG K F J,PANTOJA C R,REDMAN R M,et al. Development ofinsituhybridization and PCR assays for the detection ofEnterocytozoonhepatopenaei(EHP),a microsporidian parasite infecting penaeid shrimp[J].JournalofInvertebratePathology,2015,130: 37-41.
[7] JAROENLAK P,SANGUANRUT P,WILLIAMS B A P,et al. A nested PCR assay to avoid false positive detection of the microsporidianEnterocytozoonhepatopenaei(EHP) in environmental samples in shrimp farms[J].PLoSOne,2016,11(11): e0166320.
[8] SANTHOSHKUMAR S,SIVAKUMAR S,VIMAL S,et al. Biochemical changes and tissue distribution ofEnterocytozoonhepatopenaei(EHP) in naturally and experimentally EHP-infected whiteleg shrimp,Litopenaeusvannamei(Boone,1931),in India[J].JournalofFishDiseases,2017,40(4): 529-539.
[9] 劉珍,張慶利,萬(wàn)曉媛,等. 蝦肝腸胞蟲(chóng)(Enterocytozoonhepatopenaei)實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測(cè)方法的建立及對(duì)蝦樣品的檢測(cè)[J]. 漁業(yè)科學(xué)進(jìn)展,2016,37(2): 119-126.
LIU Z,ZHANG Q L,WAN X Y,et al. Development of real-time PCR assay for detecting microsporidianEnterocytozoonhepatopenaeiand the application in shrimp samples with different growth rates[J].ProgressinFisherySciences,2016,37(2): 119-126.(in Chinese with English abstract)
[10] HAN J E,TANG K,PANTOJA C R,et al. Detection of a newMicrosporidiumPereziasp. in shrimpsPenaeusmonodonandP.indicusby histopathology,insituhybridization and PCR[J].DiseasesofAquaticOrganisms,2016,120(2): 165-171.
[11] HAYMAN J R,HAYES S F,AMON J,et al. Developmental expression of two spore wall proteins during maturation of the microsporidianEncephalitozoonintestinalis[J].InfectionandImmunity,2001,69(11): 7057-7066.
[12] SOUTHERN T R,JOLLY C E,LESTER M E,et al. EnP1,a microsporidian spore wall protein that enables spores to adhere to and infect host cellsinvitro[J].EukaryoticCell,2007,6(8): 1354-1362.
[13] BROSSON D,KUHN L,PRENSIER G,et al. The putative chitin deacetylase ofEncephalitozooncuniculi: a surface protein implicated in microsporidian spore-wall formation[J].FEMSMicrobiologyLetters,2005,247(1): 81-90.
[14] PEUVEL-FANGET I,POLONAIS V,BROSSON D,et al. EnP1 and EnP2,two proteins associated with theEncephalitozooncuniculiendospore,the chitin-rich inner layer of the microsporidian spore wall[J].InternationalJournalforParasitology,2006,36(3): 309-318.
[15] TAUPIN V,MéTéNIER G,DELBAC F,et al. Expression of two cell wall proteins during the intracellular development ofEncephalitozooncuniculi: an immunocytochemical andinsituhybridization study with ultrathin frozen sections[J].Parasitology,2006,132(Pt 6): 815-825.
[16] XU Y J,TAKVORIAN P,CALI A,et al. Identification of a new spore wall protein fromEncephalitozooncuniculi[J].InfectionandImmunity,2006,74(1): 239-247.
[17] YANG D L,PAN G Q,DANG X Q,et al. Interaction and assembly of two novel proteins in the spore wall of the microsporidian speciesNosemabombycisand their roles in adherence to and infection of host cells[J].InfectionandImmunity,2015,83(4): 1715-1731.
[18] LI Y H,WU Z L,PAN G Q,et al. Identification of a novel spore wall protein (SWP26) from microsporidiaNosemabombycis[J].InternationalJournalforParasitology,2009,39(4): 391-398.
[19] WU Z L,LI Y H,PAN G Q,et al. Proteomic analysis of spore wall proteins and identification of two spore wall proteins fromNosemabombycis(Microsporidia)[J].Proteomics,2008,8(12): 2447-2461.
[20] 冷赫. 蝗蟲(chóng)微孢子蟲(chóng)孢壁蛋白的鑒定及功能分析[D]. 哈爾濱:黑龍江大學(xué),2012.
LENG H. Identification and functional analysis of spore wall protein fromAntonosporalocustaemicrospore [D]. Harbin: Heilongjiang University,2012.(in Chinese with English abstract)
[21] 陳中華. 蝗蟲(chóng)微孢子蟲(chóng)ALSWP2基因功能初探[D]. 哈爾濱:黑龍江大學(xué),2014.
CHEN Z H. Functional analysis of ALSWP2 gene fromAntonosporalocustaemicrospore[D]. Harbin: Heilongjiang University,2014.(in Chinese with English abstract)
[22] DING Z F,SUN M L,LIU H Y,et al. A new microsporidium,PotasporaMacrobrachiumn.sp. infecting the musculature of pond-reared oriental river prawnMacrobrachiumnipponense(Decapoda: Palaemonidae)[J].JournalofInvertebratePathology,2016,136: 57-64.
浙江農(nóng)業(yè)學(xué)報(bào)2021年6期