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      黑曲霉羧肽酶CapA的克隆表達(dá)與酶學(xué)性質(zhì)解析

      2021-09-16 07:52:38馮瑋宋鵬
      食品研究與開發(fā) 2021年17期
      關(guān)鍵詞:絲氨酸黑曲霉底物

      馮瑋,宋鵬

      (聊城大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,山東 聊城 252000)

      羧肽酶(caboxypeptidases,CPs)是一類重要的外切蛋白酶,水解蛋白或多肽鏈的C端特定肽鍵,逐個(gè)降解釋放游離氨基酸。根據(jù)催化機(jī)制不同,羧肽酶分為絲氨酸羧肽酶(EC3.4.16.-)、金屬羧肽酶(EC3.4.17.-)和半胱氨酸羧肽酶(EC3.4.18.-)[1]。羧肽酶由于具有獨(dú)特的水解作用,在食品工業(yè)中常用于酶法生產(chǎn)氨基酸[2]、制備寡肽[3]、蛋白水解物脫苦和提升風(fēng)味[4],部分特殊種類的羧肽酶還應(yīng)用到生物技術(shù)領(lǐng)域中多肽的特異性裂解[5]和多肽氨基酸序列測(cè)定[6]。

      羧肽酶在動(dòng)植物、真菌及細(xì)菌中均有發(fā)現(xiàn)[7],但動(dòng)植物體內(nèi)羧肽酶含量低、成分復(fù)雜,提取成本較高,利用微生物發(fā)酵是當(dāng)今獲得羧肽酶的主要方法。目前已有多種來源的羧肽酶被克隆表達(dá),主要是微生物羧肽酶尤其是真菌來源的羧肽酶[8]。其中,已被克隆表達(dá)的黑曲霉羧肽酶有2種:羧肽酶D-I(PepF)和羧肽酶DII(PepG)[9]。

      黑曲霉CBS 513.88的基因組序列于2007年完成解析并公布,但黑曲霉的蛋白數(shù)據(jù)庫顯示還有許多功能未確定的蛋白[10]。本文通過對(duì)黑曲霉CBS 513.88基因組全面閱讀和必要的比對(duì)分析,發(fā)現(xiàn)了一個(gè)疑似編碼絲氨酸羧肽酶的基因,并將該基因在畢赤酵母進(jìn)行克隆與表達(dá),系統(tǒng)解析了重組酶的酶學(xué)性質(zhì),為進(jìn)一步挖掘其應(yīng)用價(jià)值奠定了良好的基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與儀器

      黑曲霉CGMCC 3.7193:中國普通微生物菌種保藏管理中心保藏;克隆宿主菌大腸桿菌(E.coli JM109)、表達(dá)宿主菌畢赤酵母(P.pastoris GS115)、表達(dá)質(zhì)粒pPIC9K:聊城大學(xué)生物工程實(shí)驗(yàn)室保藏;馬鈴薯葡萄糖瓊脂(potato dextrose agar,PDA)培養(yǎng)基、LB 培養(yǎng)基:北京奧博星生物技術(shù)有限公司;酵母浸出粉胨葡萄糖(yeast extract peptone dextrose,YPD)培養(yǎng)基、最小葡萄糖(minimaldextrose,MD)培養(yǎng)基、緩沖復(fù)合甘油(buffered glycerol-complex medium,BMGY)培養(yǎng)基、緩沖復(fù)合甲醇(buffered methanol-complex medium,BMMY)培養(yǎng)基:北京索萊寶生物技術(shù)有限公司。

      聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)引物CapA-F:5′-GTAGTCCTCCAGCCAGAGGAACCATC-3′、CapA-R:5′-TGCTCTAGATCACTCAGTAAACGATGCCCCG-3′(下劃線部分為限制性酶切位點(diǎn)):由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。

      限制性內(nèi)切酶、Pyrobest DNA聚合酶、T4DNA連接酶:TaKaRa公司;質(zhì)粒提取試劑盒、DNA純化回收試劑盒:北京莊盟國際生物基因科技有限公司;RNA提取試劑盒、cDNA合成試劑盒:Invitrogen公司;化學(xué)合成底物芐氧羰基-丙氨酰-精氨酸(N-carboben zoxy-L-alanyl-L-arginine,CBZ-Ala-Arg)、芐氧羰基-脯氨酰-甘氨酸(N-carboben zoxy-L-prolyl-L-glycine,CBZPro-Gly)、芐氧羰基-丙氨酰-賴氨酸(N-carboben zoxy-L-alanyl-lysine,CBZ-Ala-Lys)、芐氧羰基-甘氨酰-丙氨酸(N-carboben zoxy-L-glycyl-alanine,CBZGly-Ala)、芐氧羰基-丙氨酰-谷氨酸(N-carboben zoxy-L-alanyl-glutamate,CBZ-Ala-Glu)、芐氧羰基-苯丙氨酰-亮氨酸(N-carboben zoxy-L-phenylalanyl-L-leucine,CBZ-Phe-Leu):由浙江昂拓萊司生物技術(shù)有限公司合成。

      ArktikTMPCR熱循環(huán)儀:賽默飛世爾公司;MicroPulser電穿孔儀:美國伯樂(Bio-Rad)公司;DYCP-31DN凝膠電泳儀、DYCZ-25E型P4垂直電泳儀:北京六一儀器廠;JY04S-3C凝膠成像系統(tǒng):北京君意東方電泳設(shè)備有限公司;SP-2012UV型分光光度計(jì):上海光譜儀器有限公司。

      1.2 試驗(yàn)方法

      1.2.1 基因克隆與重組菌構(gòu)建

      黑曲霉總RNA提取,反轉(zhuǎn)錄合成第一鏈cDNA,用已合成引物以第一鏈cDNA為模板進(jìn)行聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)擴(kuò)增,及后續(xù)的PCR產(chǎn)物純化、酶切、連接、轉(zhuǎn)化E.coli JM109,篩選陽性克隆子按照實(shí)驗(yàn)室常規(guī)方法進(jìn)行[11];重組質(zhì)粒線性化、電轉(zhuǎn)化P.pichia GS115及畢赤酵母重組菌GS115(pPIC-CapA)的篩選按照畢赤酵母表達(dá)手冊(cè)提供的方法進(jìn)行。

      1.2.2 重組酶的誘導(dǎo)表達(dá)與初步純化

      畢赤酵母重組菌GS115(pPIC-CapA)在YPD平板上純化,挑選單菌落接種于YPD液體培養(yǎng)基(25 mL),于30℃、200 r/min培養(yǎng)18 h~20 h,然后,1%接種量轉(zhuǎn)接BMGY培養(yǎng)基(25 mL),于30℃、200 r/min培養(yǎng)16 h~18 h至對(duì)數(shù)期(OD600=2.0~6.0),8 000 r/min 離心5 min收集菌體,再將菌體重懸于適當(dāng)體積BMMY培養(yǎng)基,至OD600值為1.0,于30℃、200 r/min培養(yǎng)誘導(dǎo),每24 h補(bǔ)加無水甲醇至終濃度0.5%,維持誘導(dǎo)120 h,發(fā)酵結(jié)束。發(fā)酵液4℃,8 000 r/min離心收集上清液,即為粗酶液。

      粗酶液經(jīng)30%~70%的硫酸銨分級(jí)沉淀,用截留分子量為50 kDa的透析袋透析,實(shí)現(xiàn)初步純化。

      1.2.3 重組羧肽酶活力測(cè)定

      羧肽酶酶活測(cè)定參照Morita等[3]的方法,并做簡(jiǎn)單優(yōu)化。酶活測(cè)定以CBZ-Phe-Leu為底物,用pH6.0的磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液(0.1 mol/L)配制1 mmol/L底物溶液。取450 μL底物,加入50 μL適當(dāng)稀釋的酶液于37℃反應(yīng)60 min,立即加入500 μL 0.5%茚三酮溶液,混合液置于100℃水浴加熱15 min,加熱完畢后自來水冷卻5 min,用分光光度計(jì)測(cè)定A570的吸光值。配制不同濃度標(biāo)準(zhǔn)酪氨酸溶液,同樣條件下與茚三酮反應(yīng),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      酶活定義:在37℃,1 min水解底物生成1 μg酪氨酸的酶量定義為一個(gè)酶活力單位(U)。

      1.2.4 重組羧肽酶的酶學(xué)性質(zhì)分析

      1.2.4.1 最適溫度及溫度穩(wěn)定性測(cè)定

      分別檢測(cè)羧肽酶在30℃~70℃,pH 6.0條件下的酶活值,確定該酶最適作用溫度。

      將酶液分別置于30℃~70℃,保溫處理0.5、1、1.5、2 h,按1.2.3項(xiàng)進(jìn)行酶活測(cè)定,未進(jìn)行熱處理的酶液作對(duì)照(酶活為100%),計(jì)算相對(duì)酶活,考察羧肽酶的熱穩(wěn)定性。

      1.2.4.2 最適pH值及pH穩(wěn)定性測(cè)定

      分別檢測(cè)羧肽酶在pH 4.0~8.0,45℃條件下的酶活值,確定該酶最適作用pH值。

      將酶液分別置于pH 4.0~8.0緩沖液中保溫1 h(溫度45℃),按1.2.3項(xiàng)進(jìn)行酶活測(cè)定。酶活最高值為100%,考察羧肽酶的pH穩(wěn)定性。使用的緩沖液是0.1 mol/L 磷酸氫二鈉-檸檬酸緩沖液(pH 4.0、5.0、5.5、6.0、6.5、7.0、8.0)。

      1.2.4.3 金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)酶活的影響

      在羧肽酶和底物反應(yīng)體系中分別加入終濃度1 mmol/L的金屬離子和化學(xué)試劑。按1.2.3項(xiàng)進(jìn)行酶活測(cè)定。以不加金屬離子和化學(xué)試劑體系中的酶活為100%,計(jì)算各金屬離子和化學(xué)試劑存在時(shí)的相對(duì)酶活。

      1.2.4.4 底物特異性分析

      羧肽酶分別與1 mmol/L的CBZ-Ala-Arg、CBZPro-Gly、CBZ-Ala-Lys、CBZ-Gly-Ala、CBZ-Ala-Glu 或CBZ-Phe-Leu反應(yīng),按照1.2.3項(xiàng)進(jìn)行酶活測(cè)定。以CBZ-Phe-Leu為底物時(shí)的酶活測(cè)定值為100%,計(jì)算其它底物與羧肽酶反應(yīng)的相對(duì)酶活值。

      1.2.5 生物信息學(xué)分析

      利用美國國家生物信息中心網(wǎng)站查找黑曲霉和其它來源絲氨酸羧肽酶氨基酸序列;用Clustal X2和Biodit進(jìn)行序列比對(duì)分析;MEGA 5.0以臨近法(Neighbour-joining)構(gòu)建進(jìn)化樹,分析親緣關(guān)系[12]。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 羧肽酶基因的克隆與序列分析

      A.niger CBS 513.88基因組(EMBL AM270980-AM270998)已經(jīng)解析[10],通過閱讀其基因組信息和BLAST分析,發(fā)現(xiàn)一個(gè)新的疑似絲氨酸羧肽酶基因(carboxypeptidase,CapA)。以CapA-F和CapA-R為引物,提取的黑曲霉F0510 cDNA為模板,成功擴(kuò)增出該基因,并構(gòu)建了重組質(zhì)粒pPIC-CapA。測(cè)序確定CapA具有完整的開放閱讀框(open reading frame,ORF),而且核苷酸序列與A.niger CBS 513.88基因組公布的序列完全一致。該絲氨酸羧肽酶基因1 479 bp,編碼492個(gè)氨基酸。

      采用Clustal X2分析比對(duì)不同來源的絲氨酸羧肽酶氨基酸序列,整理后匯總于圖1。

      圖1 不同來源絲氨酸羧肽酶的氨基酸序列比對(duì)Fig.1 Multiple sequence alignment of serine carboxypeptidases from different microorganisms

      CapA在結(jié)構(gòu)上存在4個(gè)參與底物結(jié)合和催化的保守結(jié)構(gòu)域,其中結(jié)構(gòu)域1是保守的底物結(jié)構(gòu)域,結(jié)構(gòu)域2~4是保守的催化結(jié)構(gòu)域,包含由絲氨酸(S)、天門冬氨酸(D)和組氨酸(H)組成的保守三聯(lián)體(Ser-Asp-His)[3,7],以及一個(gè)空間上包圍絲氨酸活性殘基的GX-S-X保守序列(位于結(jié)構(gòu)域1中)[13]。在負(fù)責(zé)催化的絲氨酸殘基之前有一個(gè)保守的谷氨酸(Glu)(位于結(jié)構(gòu)域2中),被認(rèn)為是絲氨酸羧肽酶在酸性條件發(fā)揮最佳催化作用的原因[13]。與其它羧肽酶一樣,CapA屬于SC族羧肽酶中的S10家族[14]。

      利用MEGA 5.0將CapA進(jìn)一步與已報(bào)道的絲氨酸羧肽酶的氨基酸序列進(jìn)行對(duì)比,并構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹,如圖2所示。

      圖2 進(jìn)化樹描述不同來源的絲氨酸羧肽酶的遺傳距離Fig.2 Phylogenetic tree describing the genetic distances among various serine carboxypeptidases from different microorganisms

      進(jìn)化樹反映了10種不同來源絲氨酸羧肽酶之間的遺傳距離,遺傳距離短說明親緣關(guān)系近,并聚集在一起。CapA與其他絲氨酸羧肽酶氨基酸序列相似度介于 15.76%(SpCap)~93.09%(AlCap),平均值為30.45%。CapA與AlCap的相似度最高,為93.09%。

      2.2 羧肽酶的誘導(dǎo)表達(dá)

      重組質(zhì)粒pPIC-CapA經(jīng)限制性內(nèi)切酶SacⅠ線性化,電轉(zhuǎn)化畢赤酵母GS115,經(jīng)過一系列篩選,獲得重組菌GS115(pPIC-CapA)。采用搖瓶培養(yǎng),并伴隨甲醇誘導(dǎo)120 h后,粗酶液酶活達(dá)到最高值109.7 U/mL。通過鹽析、透析對(duì)CapA的粗酶液初步純化后,十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfatepolyacrylamide gel electropheresis,SDS-PAGE)見圖 3。

      圖3 蛋白電泳分析重組酶CapA的純化效果Fig.3 SDS-PAGE analysis of the purification of the recombinant enzyme CapA

      由圖3分析表明,CapA的分子量約為60.0 kDa,略大于理論分子量52.7 kDa,推斷是糖基化所致,絲氨酸羧肽酶在合成過程中普遍要進(jìn)行糖基化修飾[7]。

      2.3 羧肽酶的酶學(xué)性質(zhì)

      2.3.1 最適溫度及溫度穩(wěn)定性

      溫度對(duì)CapA酶活性和穩(wěn)定性的影響如圖4。

      圖4 溫度對(duì)CapA酶活性和穩(wěn)定性的影響Fig.4 Effect of temperature on the activity and stability of CapA

      由圖4a可知,CapA的最適溫度是45℃,在30℃~55℃相對(duì)酶活可維持在70%以上。熱穩(wěn)定性研究表明(圖4b),在30℃~50℃孵育1 h后,CapA的酶活可保持80%以上,在60℃和70℃孵育2 h,酶活仍能分別保留30%和10%以上。

      CapA的最適反應(yīng)溫度和熱穩(wěn)定性明顯高于A.oryzae羧肽酶的最適溫度(30℃)和熱穩(wěn)定性(60℃孵育 30 min,酶活低于 10%)[3],也高于 S.cerevisiae來源重組羧肽酶Y的最適溫度(約30℃)和熱穩(wěn)定性(60℃孵育1 h,幾乎檢測(cè)不到酶活)[16]。CapA相比于其它羧肽酶有更好的耐熱性,使其應(yīng)用時(shí)在簡(jiǎn)化工藝、提高效率和降低成本等方面存在優(yōu)勢(shì)[21]。

      2.3.2 最適pH值及pH值穩(wěn)定性

      pH值對(duì)CapA的酶活性和穩(wěn)定性的影響如圖5所示。

      圖5 pH值對(duì)CapA的酶活性和穩(wěn)定性的影響Fig.5 Effect of pH on the activity and stability of CapA

      由圖5a可知,CapA的最適pH值是6.0,在pH 5.0~6.5相對(duì)酶活可維持在60%以上。pH值小于5.0或大于6.0時(shí),酶活快速下降。pH值穩(wěn)定性研究表明(圖 5b),CapA 在 pH 4.0~8.0都比較穩(wěn)定,孵育 1 h,酶活可保持60%以上,CapA和其它來源的羧肽酶相似,都在酸性條件發(fā)揮最佳水解作用,但與大多絲狀真菌和酵母菌來源的羧肽酶最適pH值位于4.0附近不同[3,22-23],CapA的最適反應(yīng)pH值和pH值穩(wěn)定范圍更偏向中性,和已報(bào)道的S.cerevisiae來源的羧肽酶Y相似[16],其發(fā)揮作用偏向中性pH值的反應(yīng)體系,更方便酶作用后產(chǎn)物的后續(xù)處理。

      2.3.3 金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)酶活的影響

      金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)CapA酶活的影響見表1。

      表1 金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)CapA酶活的影響Table 1 Effect of metal ions and chemicals on the enzymatic activity of CapA

      Mg2+顯著提高 CapA 酶活,Cu2+、Fe2+和 Co2+明顯抑制酶活,而Ca2+、Zn2+和Mn2+則對(duì)酶活幾乎沒有影響。CapA屬絲氨酸蛋白酶,其活性中心不需要金屬離子輔助[23],乙二胺四乙酸(ethylene diamine tetraacetic acid,EDTA)螯合后,酶活不受影響也說明了這一點(diǎn)。所以金屬離子應(yīng)該是與酶的一些關(guān)鍵氨基酸形成配位鍵后改變了酶的構(gòu)象,從而影響了酶的活性[24]。苯甲基磺酰氟(phenylmethylsulfonyl fluoride,PMSF)對(duì)重組酶的酶活性抑制率達(dá)80%以上,PMSF作為絲氨酸蛋白酶的特異性抑制劑,對(duì)曲霉羧肽酶OcpC、紅曲霉羧肽酶等絲氨酸羧肽酶都有抑制作用[3]。

      2.3.4 CapA水解底物特異性

      以6種CBZ-aa-aa為底物,CapA的水解特異性結(jié)果見圖6。

      圖6 重組羧肽酶的底物特異性Fig.6 Substrate specificity of recombinant carboxypeptidase

      CBZ-Phe-Leu是CapA的最適作用底物。CapA水解6種底物能力大小如下:CBZ-Phe-Leu>CBZ-Gly-Ala>CBZ-Ala-Lys>CBZ-Pro-Gly>CBZ-Ala-Glu>CBZAla-Arg(無水解活性)。CapA底物特異性較廣泛,并且偏好水解形成寡肽苦味的羧基端疏水性氨基酸Leu和Lys,在蛋白C端測(cè)序和寡肽脫苦中有良好的應(yīng)用潛力[6,8,25],有待進(jìn)一步研究。

      3 結(jié)論

      本研究首次鑒定了黑曲霉來源的絲氨酸羧肽酶CapA,并成功進(jìn)行了異源表達(dá)。解析了CapA的最適反應(yīng)溫度和溫度穩(wěn)定性、最適反應(yīng)pH值和pH值穩(wěn)定性、金屬離子和化學(xué)試劑對(duì)酶活影響、底物特異性等基本酶學(xué)特征。系統(tǒng)研究表明,CapA最適反應(yīng)溫度和pH值分別為45℃和6.0;相比已報(bào)道羧肽酶,有更好的耐熱性(60℃孵育2 h,酶活仍能保留30%)和pH值穩(wěn)定性(在pH 4.0~8.0環(huán)境孵育1 h,酶活可保持60%);其水解底物特征表明CapA在蛋白C端測(cè)序和寡肽脫苦中具有應(yīng)用潛力。

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