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      ELF4通過激活Akt通路促進胰島素瘤細胞增殖并抑制細胞凋亡

      2021-10-14 08:22:28衛(wèi)國紅萬學思譚泳謠
      南方醫(yī)科大學學報 2021年9期
      關鍵詞:胰島素瘤細胞系磷酸化

      衛(wèi)國紅,王 利,萬學思,譚泳謠

      中山大學附屬第一醫(yī)院1內分泌科,2保健科,廣東 廣州 510080;3中山大學中山醫(yī)學院,廣東 廣州510080

      胰腺神經(jīng)內分泌腫瘤(PNENs)是胰腺上皮樣腫瘤中第2常見的腫瘤,其病死率高達60%[1,2]。盡管如此,因其發(fā)病率較低,臨床癥狀和體征常不典型,一直在臨床上被忽視而對其研究不足,導致近30 年來我國PNENs病例數(shù)量呈顯著上升,但患者生存期卻無明顯改善[3,4]。胰島素瘤是功能性PNENs中最為常見的一種,胰島素瘤的典型臨床表現(xiàn)為Whipple三聯(lián)征,但該病實際臨床表現(xiàn)復雜多樣,由于其引起的低血糖癥狀及神經(jīng)系統(tǒng)癥狀往往與其他疾病類似,加之超聲、CT的確診率不高,均需由多科室會診,臨床上無法依據(jù)胰島素瘤細胞的形態(tài)學來判斷其良惡性質,目前亦無可靠臨床指標及分子標記物以用于區(qū)分良、惡性胰島素瘤[4],極易漏診及誤診[5,6]。特別重要的是,正因為PNENs病程進展非常緩慢,確診時大多已有遠處轉移,而轉移性PNENs的5年生存率低至27%[7,8],這給胰島素瘤的臨床治療提出了非常大的挑戰(zhàn)。同時,胰島素瘤中常見癌基因(myc,ras等)與抑癌基因(p53,Rb,p16等)表達均無明顯異常變化[5,6,9],因此針對胰島素瘤為主的PNENs新的診斷生物標志物亟待闡明。

      ELF4屬于ETS轉錄因子家族,是近年來新發(fā)現(xiàn)的一個在腫瘤發(fā)生、發(fā)展及腫瘤免疫中至關重要的癌基因[10]。ELF4是腫瘤惡性轉化不可或缺的因子,研究發(fā)現(xiàn)在Elf4(-/-)p53(-/-)的胚胎成纖維細胞(MEF)中,甚至癌基因H-Ras(V12)或者c-myc均不能使得MEF細胞惡性轉化[10]。ELF4與神經(jīng)膠質母細胞瘤、卵巢癌等腫瘤的發(fā)生發(fā)展密切相關,發(fā)揮著如抑制細胞凋亡、促進腫瘤細胞過度增殖及促進腫瘤血管新生等生物學功能[11,14]。本研究擬探究胰島素瘤中ELF4表達是否與其腫瘤的發(fā)生發(fā)展存在相關性。

      胰島素瘤等PNEN疾病臨床上少見,導致病例及組織標本的稀缺成為限制其發(fā)病機制研究的瓶頸,目前尚無理想模擬其發(fā)生發(fā)展的動物模型[2,9]。因此,國內外關于胰島素瘤發(fā)生、發(fā)展及演進研究尚未明確,目前的研究表明胰島細胞增殖失控是導致胰島素瘤發(fā)生的主要機制之一,而細胞過度增殖及抗凋亡的分子機制一直尚未明確。胰島素瘤細胞增殖和抗凋亡過程中的關鍵因子有待進一步闡明。

      本研究以ELF4外源穩(wěn)定高表達的胰島素瘤BON細胞為研究對象,發(fā)現(xiàn)ELF4高表達可以促進人胰島素瘤細胞增殖,同時增強人胰島素瘤細胞抗凋亡能力,并闡明其機制是通過激活Akt通路而促進胰島素瘤細胞增殖和抗凋亡。本研究為闡明ELF4在胰島素瘤發(fā)生發(fā)展中的作用及機理提供新的線索,并為胰島素瘤的診斷預后標志或治療提供可能的新靶點。

      1 材料和方法

      1.1 細胞系及實驗試劑

      人胰島素瘤細胞系BON(中國醫(yī)學科學院細胞庫),凍存于本實驗室液氮罐。胎牛血清FBS、DMEM培養(yǎng)基、0.25%胰蛋白酶、PBS均(Gibco);表阿霉素(EPI)(Selleck);抗ELF4抗體(Invitrogen),抗caspase-8前體抗體、抗caspase-8切割成熟體抗體、抗caspase-9前體抗體、抗caspase-9切割成熟體抗體、抗PARP前體抗體、抗PARP成熟體抗體、抗磷酸化Akt抗體(Thr308位點)、抗磷酸化Akt抗體(Ser473位點)、抗總Akt體、抗Actin抗體均(Cell Signaling Technology)。MTT(Genview);DMSO(Sigma)。

      1.2 外源穩(wěn)定高表達ELF4蛋白的細胞系的構建

      通過逆轉錄病毒表達載體(pMSCV),構建質粒pMSCV-puro-ELF4-Flag,與包裝質粒pIK用磷酸鈣法共轉HEK-293T細胞,制備病毒液,然后感染人胰島素瘤細胞系BON。在培養(yǎng)基中添加嘌呤霉素作為細胞篩選標志物,并連續(xù)傳代細胞,以篩選建立穩(wěn)定高表達ELF4的細胞株(實驗組BON-ELF4)。構建載體對照組細胞BON-Vector。

      收集和抽提第5代細胞的總蛋白,采用免疫印跡技術檢測證明穩(wěn)定高表達ELF4的細胞BON-ELF4是否構建成功。

      1.3 免疫印跡實驗

      收集各實驗組及對照組細胞,使用細胞裂解液,充分裂解消化細胞獲得總蛋白裂解液樣品,采用BCA法進行各組蛋白定量后,進行SDS-PAGE電泳;等待電泳完成后,準備6張Whatman 3M專用濾紙和1張PVDF膜,甲醇浸泡PVDF膜5 min,將夾子、海綿和專用濾紙浸泡于轉膜緩沖液中;取出SDS-PAGE凝膠,徹底去除濃縮膠部分,并把濾紙和PVDF膜裁成凝膠大?。话措娹D印裝置操作,負極-海綿-3 張濾紙-濃縮凝膠-PVDF膜-3張濾紙-海綿-正極板,將其放入轉膜槽中,加入轉膜緩沖液中;冰浴,按照300 mA 電流設置轉膜2 h;取出PVDF膜,使用含5%脫脂牛奶的TBST封閉液封閉1 h;然后,采用待測蛋白的一抗抗體4 ℃過夜孵育,TBST洗膜,15 min/次,重復3次;采用相應的二抗抗體孵育1 h;TBST洗膜,15 min/次,重復3次;在暗房采用X片發(fā)光顯影定影而獲得數(shù)據(jù)圖。數(shù)據(jù)圖中條帶,經(jīng)掃描后使用Quantity One v4.6.2軟件測算出總體灰度值,并計算出相對灰度值:目的條帶的總體灰度值/相對應的內參條帶總體灰度值。

      1.4 MTT比色法

      取對數(shù)生長期的BON-ELF4和BON-Vector細胞,用胰酶消化制成單細胞懸液,通過細胞計數(shù)調整細胞濃度為3×104/mL,取200 μL細胞每孔接種于96孔細胞培養(yǎng)板內,共設置3個復孔,置于37 ℃,5%CO2飽和濕度孵箱內培養(yǎng)。每間隔24 h,在超凈工作臺內每孔加MTT(5 mg/mL)20 μL,培養(yǎng)箱內繼續(xù)培養(yǎng)4 h,連續(xù)測定6 d。用5 cc的注射器小心的吸去培養(yǎng)基,加入100 μL DMSO 置搖床上低速振蕩10 min,使結晶物充分溶解。最后,在酶聯(lián)免疫檢測儀570 nm處測量各孔的吸光值A570nm。

      1.5 Annexin V-FITC/PI雙染色結合流式細胞術檢測細胞凋亡

      將各組細胞置于37 ℃、5%CO2孵箱中孵育培養(yǎng)處理24 h后,去除培養(yǎng)基,隨后分別用0.25%胰酶對細胞進行消化,采用DMEM完全培養(yǎng)基終止消化,800g離心5 min,棄去上清。采用1×PBS重懸細胞并計數(shù),收集5×105細胞。加入500 μL的凋亡檢測試劑盒(江蘇凱基生物技術股份有限公司)中提供的緩沖液懸浮細胞后,加入5 μLAnnexin V-FITC 混勻,再加入5 μL碘化丙錠(PI),混勻,室溫避光反應10 min。然后用流式細胞儀檢測,激發(fā)波長Ex=488 nm;發(fā)射波長Em=530 nm,Annexin V-FITC 的綠色熒光通過FITC 通道(FL1)檢測;PI 紅色熒光通過PI 通道(FL3)。熒光補償調節(jié):使用未經(jīng)凋亡誘導處理的正常細胞,作為對照進行熒光補償調節(jié)去除光譜重疊和設定十字門的位置。采用FlowJo 7.6軟件進行數(shù)據(jù)分析。

      1.6 統(tǒng)計學分析

      本研究實驗數(shù)據(jù)均采用軟件SPSS25.0進行統(tǒng)計學分析,定量資料采用均數(shù)±標準差表示,組間比較采用t檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結果

      2.1 建立了ELF4高表達的人胰島素瘤細胞BON-ELF4

      應用逆轉錄病毒載體表達系統(tǒng),構建ELF4穩(wěn)定高表達人胰島素瘤細胞系BON。Western blot顯示BONELF4細胞中ELF4蛋白表達量高于對照組細胞BONVector(P=0.013,圖1),穩(wěn)定高表達外源性ELF4蛋白的細胞系BON-ELF4構建成功。

      圖1 建立ELF4穩(wěn)定高表達的胰島素瘤細胞BON細胞模型Fig.1 Establishment of BON-ELF4 cell line that stably overexpresses ectopic ELF4.A:Western blotting for detecting ELF4 in BON cells.B:Quantitative analysis of EFL expression using Quantity One software.*P=0.013 vs BON-Vector group.

      2.2 高表達ELF4能促進人胰島素瘤細胞增殖

      實驗結果顯示,從第3 天開始,相比較于BON 細胞,穩(wěn)定高表達ELF4的細胞系BON-ELF4生長明顯較快(P<0.01,圖2)。

      圖2 MTT 法檢測胰島素瘤細胞BON-ELF4 和BON-Vector的生長曲線Fig.2 Growth curves of BON-ELF4 cells and BONVector cells generated based on the results of MTT assay(**P<0.01 vs BON-Vector group).

      2.3 高表達ELF4能增強人胰島素瘤細胞抗凋亡能力

      采用抗腫瘤化療藥物表阿霉素(EPI)作為凋亡誘導劑,根據(jù)EPI的對各種腫瘤細胞的半數(shù)抑制濃度IC50,以及我們的預實驗參考結果,發(fā)現(xiàn)選定0.1 μmol/L 作用24 h后可有效誘發(fā)BON-Vector腫瘤細胞的凋亡。而后通過免疫印跡法檢測caspase 激活情況,相比較于載體對照組BON-Vector,BON-ELF4 細胞在0.1 μmol/L EPI 處理24 h 后caspase-8、caspase-9 蛋白前體降低,而caspase-8、caspase-9 成熟體切割帶增強(P<0.05,圖3)。同時,相應的PARP切割帶隨著ELF4的高表達而降低(P<0.05,圖3)。采用Annexin V-FITC/PI染色結合流式細胞術分析,結果顯示,在0.1 μmol/L EPI處理各組細胞24 h后,22.90%的載體對照組BON-Vector細胞呈現(xiàn)出Annexin V陽性、PI陰性的早期凋亡結果,6.03%的BON-ELF4細胞組呈現(xiàn)出Annexin V陽性、PI陰性的早期凋亡結果(圖4)。

      圖3 EPI處理的各組腫瘤細胞中caspase-8、caspase-9及PARP的表達水平Fig.3 Expression cleaved caspase-8,caspase-9 and PARP in BON-ELF4 cells and BON-Vector cells following epirubicin treatment.

      圖4 Annexin V-FITC/PI雙染色結合流式細胞術檢測各組腫瘤細胞凋亡情況Fig.4 Epirubicin-induced apoptosis of BON-Vector and BON-ELF4 cells analyzed using flow cytometry with annexin V-FITC/PI staining.

      2.4 ELF4能夠激活胰島素瘤細胞內Akt信號轉導通路

      檢測BON-ELF4和BON-Vector細胞中Akt的磷酸化水平結果顯示,與載體轉導對照細胞相比,外源高表達ELF4的腫瘤細胞中Akt的磷酸化升高(P<0.05),而Akt總蛋白的水平基本未受影響(P>0.05,圖5)。

      圖5 胰島素瘤細胞BON-ELF4和BON-Vector細胞中Akt磷酸化水平Fig.5 Expressions of phosphorylated Akt and total Akt in BON-ELF4 cells and BON-Vector cells.

      3 討論

      本研究證明了ELF4可促進胰島素瘤細胞的增殖以及抵抗凋亡,并闡明其作用機理為激活了腫瘤細胞內Akt信號轉導通路,可為胰島素瘤的診斷預后標志或治療靶點提供科學依據(jù)和理論基礎。

      ELF4屬于ETS轉錄因子家族成員,能作為轉錄因子結合在IL-8、perforin、GM-CSF及IL-3等基因的啟動子上,而啟動基因表達[11]。研究表明,在小鼠的Elf4基因敲除后,并不會使得小鼠在胚胎期死亡。這提示ELF4或許是功能冗余,或許是在生理生化及發(fā)育過程中起到一定的作用[11,12]。另外,ELF4還能與細胞內蛋白相互作用,在機體天然免疫中起到調控作用,細胞靜息狀態(tài)下,ELF4以非活性狀態(tài)游離于細胞質中,當PRRs識別病原體后,誘導位于內質網(wǎng)上的接頭蛋白STING與ELF4的C端發(fā)生相互作用,并招募TBK1繼而磷酸化ELF4,隨后激活狀態(tài)的ELF4轉移到核內,進而增強了IRF3,IRF7以及p65與EICE的親和力,最終促進I型干擾素的產(chǎn)生[13]。目前發(fā)現(xiàn)I型和II型干擾素通路的激活均是抗腫瘤免疫的重要環(huán)節(jié)[14,16],本研究發(fā)現(xiàn)ELF4可激活腫瘤細胞內Akt通路,而以往研究報道PI3K/Akt通路也是I型干擾素的產(chǎn)生的關鍵通路[17,18]。由此提示,ELF4可能可以通過Akt通路激活I型、II型或者III型干擾素的產(chǎn)生,亟待深入研究。因此,ELF4在腫瘤的發(fā)生發(fā)展以及腫瘤免疫系統(tǒng)中都扮演著非常重要的作用。

      目前在腫瘤研究領域,ELF4作為抑癌或者促癌的研究都有報道。ELF4是腫瘤惡性轉化不可或缺的因子,研究發(fā)現(xiàn)在Elf4(-/-)p53(-/-)的胚胎成纖維細胞(MEF)中,甚至癌基因H-Ras(V12)或者c-myc均不能使得MEF惡性轉化[10]。其調控細胞惡性轉化的分子機制主要是通過促進Mdm2 的表達,下調P53 依賴的反應,抑制INK4a的激活,從而導致Rb蛋白的磷酸化。研究表明,MDM2的磷酸化是其從細胞質移位進入細胞核的關鍵,MDM2需要定位到細胞核內才能與p53相互作用,而MDM2的磷酸化主要依賴與Akt激酶[19,20],本研究發(fā)現(xiàn)ELF4可激活Akt通路,因此提示ELF4可能是MDM2重要上游調節(jié)因子。研究發(fā)現(xiàn)ELF4在神經(jīng)膠質母細胞瘤中異常高表達,其可通過直接激活機體細胞內Sox2的表達從而賦予其干細胞特性,促使神經(jīng)膠質母細胞瘤的形成[21]。也有研究發(fā)現(xiàn)ELF4在卵巢癌中呈上調表達,并且通過體外及體內實驗證明ELF4能促進卵巢癌細胞過度增殖,能夠在裸鼠體內促進卵巢癌失控性生長[22]。然而在急性髓性白血病中,ELF4則是作為一個抑癌基因起作用[23]。本研究發(fā)現(xiàn)ELF4高表達可以促進人胰島素瘤細胞增殖,同時增強人胰島素瘤細胞抗凋亡能力,并闡明其機理是通過激活Akt通路而促進胰島素瘤細胞增殖和抗凋亡。由此說明ELF4的功能具有一定的多樣性,在不同類型腫瘤中,由于ELF4定位在細胞質或細胞核中而發(fā)揮功能的差異性,可能激活完全不同的信號轉導通路,而其原因可能是在細胞內相互結合的關鍵蛋白因子不同。圍繞ELF4的精細調控信號轉導通路的主題,本課題組擬將繼續(xù)深入探究。本研究為闡明ELF4在胰島素瘤發(fā)生發(fā)展中的作用及機理提供新的線索,并為胰島素瘤的診斷預后標志或治療提供可能的新靶點。

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