伊麗米熱·吾甫爾,庫熱西·玉努斯,王志濱,國魯源,吳桂霞*
1新疆醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院;2新疆醫(yī)科大學(xué)維吾爾醫(yī)學(xué)院;3新疆醫(yī)科大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院,烏魯木齊 830011
肺癌是全球最常見的癌癥之一。大約85%的肺癌是非小細胞肺癌(non small cell lung cancer,NSCLC)[1]。臨床對于肺癌的主要治療手段有手術(shù)、化療、放療和生物治療等。完全手術(shù)切除雖有效但前提是該疾病在醫(yī)學(xué)上可操作且可適當(dāng)分期[2]。放、化療藥物具有非特異性,往往產(chǎn)生嚴重的毒副作用。中藥因具有多靶點、多途徑、多效應(yīng)的作用特點在腫瘤的預(yù)防及治療領(lǐng)域發(fā)揮了獨特的作用。已有多種中藥成分及其提取物被發(fā)現(xiàn)具有較好的抗腫瘤作用,如苦參堿、三羥異黃酮、紫杉醇等,其中一些已廣泛地應(yīng)用于臨床[3-5]。昆侖雪菊又被稱作兩色金雞菊(CoreopsistinctoriaNutt.)?,F(xiàn)代藥效學(xué)研究表明新疆昆侖雪菊富含多酚類、黃酮類、多糖等多種化學(xué)成分[6],其中黃酮類具有降血脂、調(diào)節(jié)血糖、抗腫瘤等重要的藥理作用[7,8]。但由于黃酮類成分多、靶點多、作用途徑多,使其治療疾病的分子機制研究存在一定困難。
網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)(network pharmacology)是基于系統(tǒng)生物學(xué)和多向藥理學(xué)的研究方法,通過構(gòu)建“藥物-靶點-疾病”的多層次相互作用網(wǎng)絡(luò),從整體水平上分析藥物作用靶點及作用機制[9]。本文通過應(yīng)用網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)結(jié)合體外細胞實驗,分析昆侖雪菊總黃酮(Kunlun chrysanthemum total flavonoids,KCTF)對NSCLC的抗瘤成分及作用機制,為其后續(xù)的藥物研發(fā)和臨床應(yīng)用提供實驗依據(jù)。
人非小細胞肺癌細胞(A549)由新疆醫(yī)科大學(xué)協(xié)同創(chuàng)新細胞庫提供。
DMEM液體培養(yǎng)基和胎牛血清(賽默飛世爾科技有限公司);Annexin V-FITC/PI試劑盒(美國BD公司);TRIzol Reagent(賽默飛世爾科技有限公司);反轉(zhuǎn)錄試劑盒(賽默飛世爾科技公司);QuantiNova SYBR Green染料法PCR試劑盒(凱基生物公司);RIPA裂解液(碧云天生物技術(shù)公司);BCA蛋白濃度測定試劑盒(碧云天生物技術(shù)公司);兔單抗Bax、兔單抗Bcl-2(Abcam公司,ab32503、ab32124);小鼠單抗β-actin(武漢博士德生物工程有限公司,BM0627);昆侖雪菊(新疆雪菊生物科技有限公司,生產(chǎn)許可證號:QS650114020007)。
NovoCyte D2060R流式細胞儀(ACEA公司);MF53倒置熒光顯微鏡(德國萊卡公司);ABI 7500 Real-Time PCR儀(Applied Biosystems公司)。
60 ℃烘干箱內(nèi)烘干雪菊,研磨后過篩備用,按照1∶60投料比,加入80%的乙醇,超聲萃取儀超聲1.5 h后過濾,共三次。濾液經(jīng)旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀蒸發(fā)濃縮得其浸膏。將粗黃酮浸膏裝入大孔樹脂的玻璃層析柱中,經(jīng)12 h浸泡后,60%乙醇洗脫,收集洗脫液,旋蒸后得KCTF純化物,經(jīng)紫外分光光度計法測其總黃酮含量。
用600 μL提取液(50%甲醇含0.1%甲酸)復(fù)溶總黃酮純化物,渦旋30 s后冰水浴超聲15 min,4 ℃,12 000 rpm離心15 min,取上清于2 mL進樣,UPLC BEH C18色譜柱(1.7 μm,2.1 mm×150 mm)上機檢測。柱溫箱溫度設(shè)為40 ℃,自動進樣器溫度設(shè)為8 ℃,進樣體積為2 μL。
2.3.1 KCTF靶點預(yù)測
通過HPLC法得到KCTF的化合物組分,從TCMPS(https://lsp.nwu.edu.cn/tcmsp.php)中對KCTF的主要化合物分子進行吸收、分布、代謝、排泄和毒性(ADME/T)預(yù)測和評價。對符合藥物口服生物利用度(oral bioavailability,OB)≥30%,類藥性值(drug-like,DL)≥0.18的成分進行篩選,得出總黃酮的有效活性成分。再通過TCMSP平臺預(yù)測上述有效活性成分的靶點。將所有靶點通過STRING(https://www.string-db.org/)數(shù)據(jù)庫以“Homo sapiens”(人屬)為關(guān)鍵詞進行基因-蛋白名稱轉(zhuǎn)換。
2.3.2 NSCLC相關(guān)靶點網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建[10]
通過DiSGeNET(http://www.disgenet.org/),以“Non-Small Cell Lung Carcinoma”為關(guān)鍵詞檢索NSCLC相關(guān)靶點,獲得所有已知的與NSCLC有關(guān)的基因靶點。借助STRING數(shù)據(jù)庫,輸入上述關(guān)鍵靶點,物種限定設(shè)置為人類。將查詢到的與NSCLC有關(guān)的靶點與KCTF有效活性成分的作用靶點取交集,篩選KCTF治療NSCLC的潛在靶點。應(yīng)用STRING數(shù)據(jù)庫,輸入上述潛在靶點,隨后進行PPI網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建與分析,獲取關(guān)鍵靶點。
2.3.3 關(guān)鍵靶點的KEGG通路富集分析
通過DAVID(https://david.ncifcrf.gov/)對關(guān)鍵靶點進行KEGG通路富集分析,并通過OmicShare(http://www.omicshare.com)平臺對結(jié)果進行可視化處理。
2.3.4 總黃酮-靶點-通路網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建
應(yīng)用Cytoscape 3.6.0軟件繪制關(guān)鍵靶點-通路網(wǎng)絡(luò)和KCTF化合物-關(guān)鍵靶點網(wǎng)絡(luò)。最后將KCTF化合物-關(guān)鍵靶點網(wǎng)絡(luò)和關(guān)鍵靶點-通路網(wǎng)絡(luò)進行合并。建立KCTF-靶點-通路網(wǎng)絡(luò)。通過Network analyzer分析評價網(wǎng)絡(luò)的拓撲結(jié)構(gòu)特性。
2.4.1 細胞培養(yǎng)
A549細胞復(fù)蘇后加入到10%的DMEM培養(yǎng)基中,置入37 ℃、5%CO2的培養(yǎng)箱中培養(yǎng),待細胞進入快速生長期后傳代培養(yǎng)。
2.4.2 CCK8法檢測細胞活性
A549細胞接種于96孔板中(1×105/孔),經(jīng)48 h細胞融合時進行實驗。不同濃度的雪菊總黃酮提取物(400、800、1 600、2 400、3 200 μg/mL)的藥物100 μL,以DDP作為對照組,繼續(xù)培養(yǎng)24 h后,每孔加入CCK8 100 μL,將培養(yǎng)液傾去,酶聯(lián)儀490 nm波長測各孔的OD值。按照如下公式計算細胞抑制率,半數(shù)抑制濃度(inhibitory concentration 50,IC50)值由IC50值計算軟件求出。實驗重復(fù)3次。
細胞生長抑制率=[1-OD實驗/OD對照]×100%
2.4.3 流式細胞儀檢測細胞凋亡
A549細胞接種至6孔板中,待細胞達到對數(shù)生長期后,分為三個處理組:陰性對照組;雪菊總黃酮干預(yù)組;陽性對照組(順鉑,DDP),干預(yù)處理細胞48 h,胰酶消化后收集細胞懸液,離心5 min;PBS洗滌、重懸后,取100 μL的細胞懸液與Annexin V-FITC 5 μL和PI 5 μL混勻后避光,室溫孵育45 min;流式上機檢測,CELL Quest軟件分析。
2.4.4 細胞劃痕實驗觀察細胞遷移
按“2.4.3”干預(yù)細胞48 h后,胰酶消化細胞;用完全培養(yǎng)基制備成1×105/mL單細胞懸液,細胞接種于培養(yǎng)皿中間的2孔插件Insert(70 μL/孔,即每孔7×104/孔),細胞長滿Insert區(qū)域后用鑷子移除Insert。每隔12 h拍照記錄。根據(jù)收集圖片數(shù)據(jù)分析實驗結(jié)果。
2.4.5 RT-qPCR檢測A549細胞Bax、Bcl-2和MMP-2 mRNA表達
收集“2.4.3”中平行處理的各組A549細胞,Trizol提取總RNA,按逆轉(zhuǎn)錄試劑盒說明書,獲得cDNA后,以SYBRGreen熒光染料試劑盒進行實時熒光定量PCR擴增,反應(yīng)條件設(shè)置為95 ℃預(yù)變性2 min;95 ℃變性5 s,60 ℃退火30 s,95 ℃延伸15 s,共設(shè)置40個循環(huán)。用2-△△ct法測定目的基因相對表達量。相關(guān)引物序列見表1。
表1 Real-Time PCR所用引物序列表Table 1 Primer sequences used for Real-Time PCR
2.4.6 Western blot檢測Bax、Bcl-2的表達
收集“2.4.3”中平行處理的各組A549細胞,提取細胞總蛋白,測定蛋白濃度,電泳分離40 μg蛋白質(zhì),轉(zhuǎn)移至PVDF膜,用含5%脫脂奶粉的TBST封閉PVDF膜,室溫2 h。一抗4 ℃孵育過夜,二抗室溫孵育2 h,TBST充分洗滌PVDF膜5次,5 min/次。化學(xué)發(fā)光法曝光至醫(yī)用X膠片上,灰度值掃描后統(tǒng)計處理,重復(fù)三次。
通過HPLC方法對KCTF進行廣靶代謝組分析,共得出68個黃酮化合物,根據(jù)化合物的分子量(MW)、口服生物利用度(OB)、類藥性(DL)從TCMPS獲得KCTF的23個活性藥效成分(OB≥30%,DL≥0.18),其中表兒茶素沒食子酸酯、表沒食子兒茶素、芹菜素,紫云英苷4個成分含量較高將其納入。共得到27個總黃酮的成分。KCTF活性化合物的化學(xué)信息(見表2)。
表2 KCTF主要的活性化合物Table 2 Active ingredients of KCTF
續(xù)表2(Continued Tab.2)
KCTF的27個活性成分(見表2)從TCMSP數(shù)據(jù)庫和ETCM數(shù)據(jù)庫中預(yù)測到891個靶點,通過STRING數(shù)據(jù)庫進行基因-蛋白名稱轉(zhuǎn)換及去除重復(fù)的靶基因,共得到303個化合物靶點。將DiSGeNET數(shù)據(jù)庫搜索的靶點信息與NSCLC相關(guān)的靶點取交集得到217個KCTF對NSCLC潛在的作用靶點(見圖1)。
圖1 疾病靶點-藥物靶點韋恩圖Fig.1 Disease targets-drug targets Venn diagram
將217個KCTF對NSCLC潛在的作用靶點導(dǎo)入STRING數(shù)據(jù)庫,選擇物種為人類,排除游離的無相互作用蛋白,將minimum required interaction score設(shè)置為大于0.998,獲得蛋白質(zhì)相互作用關(guān)系,邊越粗意味著combine score越大,根據(jù)combine score的大小制作出68個關(guān)鍵蛋白節(jié)點(見圖2)。
圖2 PPI網(wǎng)絡(luò)Fig.2 PPI network
KEGG通路富集分析結(jié)果顯示,88個通路被富集,P<0.01的通路有76條,依據(jù)P值大小,選擇P值最小即相關(guān)度最高的20位,包括細胞凋亡(apoptosis)、PI3K-Akt信號通路(PI3K-Akt signaling pathway)、p53信號通路(p53 signaling pathway)、細胞周期(cell cycle)、腫瘤壞死因子信號通路(TNF signaling pathway)等??傸S酮治療NSCLC關(guān)鍵靶點KEGG通路富集結(jié)果見圖3。說明總黃酮有效成分的作用靶點分布在不同的信號通路,通過多成分、多靶點互相調(diào)節(jié)發(fā)揮治療NSCLC的作用。
圖3 KEGG通路分析Fig.3 KEGG pathway analysis
采用Cytoscape 3.6.0構(gòu)建KCTF-靶點-通路網(wǎng)絡(luò)網(wǎng)絡(luò)模型(見圖4),綠色三角形代表化合物,黃色圓形代表作用靶點,藍色多邊形代表通路。由KEGG反向分析得到的前20個通路中共有65個關(guān)鍵靶點。在KCTF的活性成分中表沒食子兒茶素沒食子酸酯((-)-epigallocatechin gallate)、槲皮素(quercetin)、芹菜素(apigenin)、木犀草素(luteolin)、漆黃素(fisetin)、黃芩素(baicalein)、金合歡素(acacetin)的自由度較高,具有較多的作用靶點,可能在KCTF治療NSCLC的過程中起到較為核心的作用。在關(guān)鍵靶點方面,HSP90AA1、TP53、AKT1、CCND1、RELA、CDKN1A、MAPK1、CDK4、RB1、CASP3、MDM2、EGFR、CASP9、BAX的自由度均大于15,有較多的活性成分配體。在前20條通路中自由度較大的通路為癌癥的途徑(pathways in cancer)、細胞凋亡(apoptosis)、PI3K-Akt信號通路(PI3K-Aktt signaling pathway)、HTLV-I感染(HTLV-I infection)、病毒致癌(viral carcinogenesis)、細胞周期(cell cycle)、p53信號通路(p53 signaling pathway)、FoxO信號通路(FoxO signaling pathway)自由度均大于20,其中PI3K-Akt信號通路的自由度為28。KCTF有效成分作用靶點分布于的代謝通路,相互協(xié)調(diào)。
圖4 KCTF-靶點-通路網(wǎng)絡(luò)Fig.4 KCTF-target-pathways network
CCK8的結(jié)果表明,KCTF對A549細胞的生長有明顯的抑制作用,且濃度越高對細胞的增殖抑制作用越強;KCTF干預(yù)A549細胞24、48及72 h后,計算IC50值(24 h:2 408.09 μg/mL;48 h:1 613.09 μg/mL;72 h:1 338.48 μg/mL),結(jié)果表明KCTF對A549細胞的增殖抑制作用具有一定的時間依賴性。根據(jù)上述實驗結(jié)果,將KCTF干預(yù)濃度確定為1 000 μg/mL,干預(yù)時間確定為48 h,用于后續(xù)實驗(見表3)。
表3 KCTF對A549細胞的生長抑制作用Table 3 Inhibitory effect of KCTF on A549
流式的結(jié)果表明,與陰性對照組相比,KCTF干預(yù)組(1 000 μg/mL)干預(yù)A549細胞后明顯促進了細胞的凋亡,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)(見表4、圖5)。
圖5 KCTF對A549細胞凋亡的影響Fig.5 The apoptotic effect of KCTF on A549 cells注:A:陰性對照組;B:KCTF干預(yù)組;C:陽性對照組。Note:A:Negative control group;B:KCTF intervention group;C:Positive control group.
表4 KCTF對A549細胞凋亡的影響Table 4 The apoptotic effect of KCTF on A549
細胞劃痕后在0、12、24、36 h分別在鏡下觀察三組細胞劃痕寬度恢復(fù)的情況,空白對照組基本保持原有的遷移能力,KCTF干預(yù)組(1 000 μg/mL)及陽性對照組在12、24、36 h細胞遷移受到抑制明顯,說明KCTF對A549細胞有抑制腫瘤細胞遷移的能力(見表5)。
表5 KCTF對A549細胞遷移的影響Table 5 Effect of KCTF on A549 cell
與陰性對照組比較,KCTF干預(yù)組(1 000 μg/mL)Bax的mRNA表達水平上調(diào),差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05),而Bcl-2和MMP-2的mRNA表達水平與陰性對照組比較差異無統(tǒng)計學(xué)意義,但有下調(diào)趨勢(P>0.05)(見表6)。
表6 KCTF對A549細胞中Bax、Bcl-2和MMP-2 mRNA表達水平的影響Table 6 The effect of KCTF on the expression of Bax and Bcl-2 mRNA in A549
如表7所示,與陰性對照組相比(n=3),KCTF干預(yù)組(1 000 μg/mL)對A549細胞內(nèi)促凋亡因子Bax的水平顯著升高(P<0.01),抗凋亡因子Bcl-2的表達明顯下調(diào)(P<0.01),Bax/Bcl-2的比值上調(diào),表明KCTF對A549細胞可能是通過上調(diào)Bax/Bcl-2的比值的表達來促進NSCLC的凋亡,從而抑制腫瘤的生長(見圖6)。
表7 KCTF對A549細胞中Bax/Bcl-2蛋白表達水平的影響Table 7 The effect of KCTF on the expression of Bax and Bcl-2 protein in A549
圖6 KCTF對A549細胞中Bax/Bcl-2蛋白表達的影響Fig.6 The effect of KCTF on the expression of Bax and Bcl-2 protein in A549 cells注:A:陰性對照組;B:KCTF干預(yù)組;C:陽性對照組。Note:A:Negative control group;B:KCTF intervention group;C:Positive control group.
廣泛存在于各種植物中的黃酮化合物是一種很強的抗氧化劑,能有效地清除體內(nèi)自由基,具有抗腫瘤、降血壓、抗衰老等重要的藥理作用。本研究通過HPLC技術(shù)對昆侖雪菊中的總黃酮進行成分分析,結(jié)果顯示相對含量較高的有表沒食子兒茶素沒食子酸酯、槲皮素、木犀草素、兒茶素等,已有大量的研究結(jié)果表明槲皮素、木犀草素等黃酮類對多種實體瘤有較好的抗瘤活性[11,12]。體外的細胞實驗已表明,昆侖雪菊總黃酮對人結(jié)腸癌HCTI16細胞、Caco-2細胞具有明顯的增殖抑制作用[13]。但中藥多成分、多靶點、多途徑協(xié)同發(fā)揮藥效的作用特點,使其作用機制的現(xiàn)代化研究存在困難。
2007年Hopkins[14]提出的網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué),將藥物、靶點、疾病的關(guān)系在網(wǎng)絡(luò)中表現(xiàn)出來。利用網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)可以系統(tǒng)分析中藥的組成成分,挖掘藥物與疾病的共同作用靶點,進而分析生物學(xué)功能和信號通路,這種整體、系統(tǒng)的研究模式與中醫(yī)藥的整體觀理論是相一致的。
在本研究中,通過TCMSP對KCTF的68個成分進行篩選,預(yù)測27個黃酮成分的891個靶點,與NSCLC靶點交集后,獲得217個KCTF干預(yù)NSCLC的可能靶點。其中MAPK1、EGFR、Tp53、Akt、Bax、Bcl-2、Caspase 3等重要靶點與多個化學(xué)成分存在關(guān)系,表明KCTF各活性成分間存在著密切的協(xié)同關(guān)系。為進一步對KCTF干預(yù)NSCLC的作用機制進行分析,將二者關(guān)系進行PPI網(wǎng)絡(luò)構(gòu)建與KEGG生物通路富集分析,結(jié)果表明PI3K-Akt信號通路、Bax/Bcl-2抗凋亡信號通路、p53信號通路、MAPK信號通路等與KCTF抗瘤作用有關(guān)。
誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡、阻遏周期、抑制遷移是抗瘤藥物主要的作用機制。研究表明許多植物黃酮(如姜黃素、原花青素、表沒食子兒茶素沒食子酸酯、槲皮素等)可以通過干擾PI3K-Akt信號通路,直接抑制PI3k或阻斷PI3K-Akt信號通路,進一步調(diào)節(jié)其下游效應(yīng)分子的表達,從而加速腫瘤細胞周期、促進細胞凋亡和抑制細胞增殖,達到抗腫瘤的作用[15,16]。Xiang等[17]研究表明,槲皮素誘導(dǎo)HeLa細胞凋亡是通過下調(diào)PI3K-Akt信號通路中PI3k、Akt和Bcl-2表達,上調(diào)Bax表達,使細胞在G0/G1細胞周期阻滯。木犀草素可以通過抑制PI3K-Akt信號通路中MMP-2、MMP-9的表達抑制人黑色素瘤細胞的增殖,誘導(dǎo)其凋亡發(fā)揮抗瘤活性[18]。本研究細胞水平的實驗結(jié)果表明,雪菊總黃酮明顯抑制了A549細胞的增殖,促進了細胞的凋亡,抑制細胞的遷移,mRNA水平上驗證了雪菊總黃酮上調(diào)Bax的表達及下調(diào)Bcl-2和MMP-2的表達。當(dāng)細胞內(nèi)Bax高表達時,細胞對死亡信號敏感,促進了細胞發(fā)生凋亡。當(dāng)Bcl-2高表達時,Bcl-2可以和Bax形成異源二聚體,抑制細胞凋亡。所以細胞內(nèi)Bax/Bcl-2的比例對決定細胞凋亡的敏感性起到重要作用,因此利用Western blot在細胞水平上的驗證實驗表明雪菊總黃酮明顯上調(diào)Bax/Bcl-2的比值,促進了A549細胞的凋亡。結(jié)合網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)分析的結(jié)果,雪菊總黃酮可通過多靶點、多途徑實現(xiàn)干預(yù)NSCLC的作用,其抗腫瘤活性可能與影響凋亡基因Bax及Bcl-2的表達有關(guān)。
本文在細胞水平觀察到了雪菊總黃酮提取物對A549細胞的抗瘤作用,但由于大孔樹脂純化總黃酮的得率較低,藥物對細胞抑制率的IC50較高,后續(xù)為進行體內(nèi)的動物實驗,將優(yōu)化純化方法,提高黃酮得率,降低藥物使用濃度,結(jié)合網(wǎng)絡(luò)藥理學(xué)分析結(jié)果,進一步深入研究其抗瘤的分子作用機制。