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      纖維素酶輔助提取茶多糖的工藝研究

      2022-01-18 06:33:24周曉紅陳潔冰陳帥江彭潤(rùn)芝
      關(guān)鍵詞:茉莉花茶金花光度

      周曉紅,陳潔冰,羅 智,陳帥江,彭潤(rùn)芝,刀 彤

      (1. 湖南城市學(xué)院 材料與化學(xué)工程學(xué)院,湖南 益陽(yáng) 413000;2. 黑茶金花湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,湖南 益陽(yáng) 413000)

      茶多糖是茶葉中存在的一種多糖類復(fù)合物,多為與蛋白質(zhì)結(jié)合的酸性糖蛋白[1].大量研究證明,茶多糖具有降血壓、降血糖、抗凝血、抗腫瘤、防輻射、抗血栓、增強(qiáng)人體免疫力、調(diào)節(jié)腸道微生態(tài)等多重生物功效[2-4].茶多糖作為茶葉中一種重要的功能性成分,是茶葉品質(zhì)的重要保證,已有不少文獻(xiàn)研究了不同生產(chǎn)工藝和茶葉品種對(duì)茶多糖含量的影響.比如,黃浩[5]探討了“發(fā)花”過(guò)程中的主要生化成分和“發(fā)花”特征性微生物(冠突散囊菌)數(shù)量的變化,以及黑茶品質(zhì)的變化;劉丹奇等[6]研究了白茶多糖、綠茶多糖和紅茶多糖的成分及其降血糖的效果和機(jī)理.這些研究揭示了茶葉的原料、生產(chǎn)工藝和提取方法等都能影響茶多糖的含量與活性.

      鑒于茶多糖眾多的保健價(jià)值,如何高效提取、分離和純化茶多糖已成為諸多領(lǐng)域研究的熱點(diǎn)問(wèn)題[7-9].目前,已報(bào)道的茶多糖實(shí)驗(yàn)室提取方法主要包括醇沉法、水浸提法、活性酶輔助浸提法、微波輔助浸提法以及超聲波輔助浸提法[10-11].其中,活性酶輔助提取法可在常溫常壓條件下加速細(xì)胞壁和細(xì)胞間質(zhì)層的分解,促進(jìn)細(xì)胞內(nèi)有效成分的釋放,從而提高了茶多糖的提取率[12-13].

      本研究以茉莉花茶為研究對(duì)象,利用冠突散囊菌發(fā)酵液制備了“金花”茉莉花茶,通過(guò)纖維素酶輔助提取茶葉中的茶多糖,探究纖維素酶輔助提取茶多糖的最佳工藝參數(shù),為其酶解提取茶多糖的生產(chǎn)工藝提供參考.同時(shí),對(duì)提取的茶多糖進(jìn)行抗氧化活性研究,以期用該方法對(duì)提取的茶多糖進(jìn)行品質(zhì)評(píng)價(jià).

      1 實(shí)驗(yàn)部分

      1.1 儀器和試劑

      實(shí)驗(yàn)儀器包括SHZ-B 雙功能水浴恒溫振蕩器(江蘇金壇億通電子有限公司);DT5-2B 低速臺(tái)式離心機(jī)(北京時(shí)代北利離心機(jī)有限公司);101-1AB 電熱鼓風(fēng)干燥箱(天津市泰斯特儀器有限公司);SHZ-DⅢ循環(huán)水式真空泵(上海予申儀器有限公司);旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器RE-2000B(長(zhǎng)沙中天儀器設(shè)備有限公司);XY-200 高速多功能粉碎機(jī)(浙江省永康市松青五金廠);TP-214 電子天平(北京賽多利斯儀器有限公司);HS.Z68 電熱蒸餾水器(北京永光醫(yī)療設(shè)備有限公司);QHX-4005SH-Ⅲ人工氣候箱(上海新苗醫(yī)療器械制造有限公司);YXQ-100G 立式蒸汽滅菌器(上海博迅實(shí)業(yè)有限公司);722 型可見(jiàn)分光光度計(jì)(上海舜宇恒平科學(xué)儀器有限公司).

      茉莉花茶來(lái)自廣西橫縣星光茶廠;冠突散囊菌菌種來(lái)自湖南城市學(xué)院黑茶金花湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室;纖維素酶來(lái)自和氏璧生物科技有限公司;葡萄糖、苯酚、檸檬酸、檸檬酸鈉、無(wú)水乙醇等來(lái)自國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;DPPH 試劑來(lái)自西格瑪奧德里奇(上海)貿(mào)易有限公司;硫酸來(lái)自株洲市新工化玻有限責(zé)任公司.

      1.2 冠突散囊菌發(fā)酵液的制備

      參照文獻(xiàn)[14]中的方法,采用改良PDL 液體培養(yǎng)基制備冠突散囊菌發(fā)酵液.取200 g馬鈴薯,用適量蒸餾水煮沸20 min 后用3 層紗布將固體濾出;合并濾液,添加50 g 蔗糖,定容至1 000 mL;錐形瓶分裝滅菌,冷卻后置于超凈工作臺(tái)上接種冠突散囊菌,并在28 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)9 d,備用.

      1.3 “金花”茉莉花茶的制備

      取茉莉花茶100 g 置于500 mL 培養(yǎng)瓶中,保持充滿的狀態(tài),加水使之含水量為30%;將培養(yǎng)瓶放入高壓滅菌鍋,在121 ℃下滅菌20 min;滅菌后在無(wú)菌室接種3 mL 冠突散囊菌發(fā)酵液,于28 ℃恒溫箱培養(yǎng)7~10 d;待“金花”長(zhǎng)滿后取出,置于70 ℃烘箱干燥,備用.

      1.4 茶多糖的提取

      取干燥后的“金花”茉莉花茶,用破碎機(jī)破碎至過(guò)60 目篩;稱取粉碎后的茶樣1.000 0 g,按照液料比1∶25 加入檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖溶液,再加入纖維素酶,放入水浴恒溫振蕩器中酶解;酶解后置于121 ℃滅菌鍋加熱20 min 進(jìn)行滅活,離心并取上清液定容至25.0 mL,作為待測(cè)液測(cè)定“金花”茉莉花茶茶多糖的含量.

      1.5 茶多糖含量的測(cè)定

      根據(jù)文獻(xiàn)[15]中的方法,精密稱取0.100 0 g在105 ℃下干燥至恒重的葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),配制成1 000.0 mL 濃度為0.100 0 mg/mL 的標(biāo)準(zhǔn)溶液;分別準(zhǔn)確移取標(biāo)準(zhǔn)溶液0,0.20,0.40,0.60,0.80和1.00 mL置于10 mL試管中,加蒸餾水補(bǔ)至1.00 mL;繼續(xù)添加1.00 mL 5%苯酚和5.00 mL 濃硫酸,搖勻,在陰暗環(huán)境下反應(yīng)20 min,經(jīng)490 nm 比色測(cè)定,獲得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線.

      精密稱取1.000 0 g“金花”茉莉花茶,按液料比1∶25 加入pH 值為4.8 的檸檬酸-檸檬酸鈉緩沖液,再加入纖維素酶,置于水浴鍋中靜置酶解一段時(shí)間;高溫滅酶,將溶液在離心機(jī)(轉(zhuǎn)速3 000 r/min、時(shí)間10 min)中離心,取上層清液定容至25.0 mL;取1.00 mL上清液加水稀釋至100.0 mL,用苯酚-硫酸法測(cè)定溶液在490 nm 下的吸光度,并根據(jù)此吸光度在標(biāo)準(zhǔn)曲線上查得對(duì)應(yīng)的茶多糖質(zhì)量m1.樣品的茶多糖含量計(jì)算公式為

      其中,m1為樣品在標(biāo)準(zhǔn)曲線上對(duì)應(yīng)的含糖量,mg;m2為樣品質(zhì)量,g;D為稀釋倍數(shù);0.9 為粗多糖折算為茶多糖的換算系數(shù).

      1.6 正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

      為了分別考察酶解時(shí)間、酶解溫度、酶添加量對(duì)“金花”茉莉花茶茶多糖提取效率的影響,選擇L9(33)正交因素水平設(shè)計(jì)實(shí)驗(yàn),具體參數(shù)如表1 所示.

      表1 正交實(shí)驗(yàn)因素水平表

      1.7 測(cè)定茶多糖抗氧化活性

      稱取干燥好的DPPH 試劑0.035 0 g,用無(wú)水乙醇溶解后定容至100 mL 的容量瓶;移取1.00 mL 上述溶液,定容至50 mL 容量瓶;多次上下顛倒搖勻,得濃度約為0.017 8 mmol/L 溶液;將制備好的DPPH 溶液倒入深色瓶,置于冰箱,冷藏備用.

      移取2.00 mL 樣品置于試管中,加入2.00 mL DPPH 溶液搖勻,獲得樣品測(cè)定液;避光靜置30 min,于反應(yīng)結(jié)束后在517 nm 處測(cè)量獲得樣品測(cè)定液吸光度;以同體積蒸餾水代替樣品按相同操作測(cè)定空白對(duì)照組吸光度;以同體積無(wú)水乙醇代替DPPH 溶液,按相同操作測(cè)定樣品的本底吸光度.DPPH 清除率計(jì)算公式為

      其中,A1為2.00 mL DPPH 溶液+2.00 mL 蒸餾水的對(duì)照組吸光度;A2為2.00 mL DPPH 溶液+2.00 mL 樣品的測(cè)定液吸光度;A3為2.00 mL 無(wú)水乙醇+2.00 mL 樣品的本底吸光度.

      2 結(jié)果和討論

      2.1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

      根據(jù)1.5 節(jié)中的測(cè)定方法,獲得葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1 所示.

      圖1 葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線

      2.2 茶多糖含量

      2.2.1 酶解時(shí)間對(duì)茶多糖含量的影響

      固定酶解溫度為50 ℃和酶添加量為2.5%,在不同的酶解時(shí)間下,所獲得的茶多糖含量曲線如圖2 所示.

      圖2 酶解時(shí)間對(duì)茶多糖含量的影響

      由圖2 可知,當(dāng)酶解時(shí)間<120 min 時(shí),隨著酶解時(shí)間的增加,“金花”茉莉花茶中的茶多糖含量逐漸增大;當(dāng)酶解120 min 時(shí),茶多糖含量最大,為104.55 mg/g;當(dāng)酶解時(shí)間>120 min 時(shí),隨著時(shí)間的延長(zhǎng),茶多糖的提取率呈下降趨勢(shì).這可能是因?yàn)殡S著時(shí)間的進(jìn)一步延長(zhǎng),酶的活性逐步降低,長(zhǎng)時(shí)間的浸提導(dǎo)致了大量雜質(zhì)溶出,茶多糖的析出就不再明顯.因此,最適合的酶解時(shí)間為120 min.

      2.2.2 酶解溫度對(duì)茶多糖含量的影響

      固定酶解時(shí)間為120 min 和酶添加量為2.5%,在不同的酶解溫度下,實(shí)驗(yàn)所得茶多糖含量曲線如圖3 所示.

      圖3 酶解溫度對(duì)茶多糖含量的影響

      由圖3 可知,當(dāng)酶解溫度<50 ℃時(shí),隨著酶解溫度的上升,“金花”茉莉花茶的茶多糖含量增加;當(dāng)酶解溫度為50 ℃時(shí),茶多糖含量最高,為97.59 mg/g;當(dāng)酶解溫度>50 ℃時(shí),茶多糖含量呈下降趨勢(shì).其原因是,當(dāng)酶解溫度<50 ℃時(shí),酶的活性隨溫度升高而增強(qiáng);當(dāng)溫度為50 ℃時(shí),酶達(dá)到了最佳活性,茶多糖含量最高;當(dāng)溫度>50 ℃時(shí),隨著溫度的進(jìn)一步上升,酶的分子空間結(jié)構(gòu)發(fā)生改變,使其活性降低,影響反應(yīng)效率,導(dǎo)致茶多糖含量開(kāi)始下降.

      2.2.3 酶添加量對(duì)茶多糖含量的影響

      當(dāng)固定酶解時(shí)間為120 min 和酶解溫度為50 ℃時(shí),不同的纖維素酶添加量對(duì)茶多糖提取率的影響效果如圖4 所示.

      圖4 酶添加量對(duì)茶多糖含量的影響

      由圖4 可知,當(dāng)酶添加量<3%時(shí),茶多糖含量隨酶添加量的增加呈上升趨勢(shì);當(dāng)酶添加量為3%時(shí),茶多糖含量最高,達(dá)94.15 mg/g;當(dāng)酶添加量>3%時(shí),茶多糖含量逐漸下降.其原因可能是,剛開(kāi)始纖維素酶量的增加,有利于反應(yīng)的進(jìn)行,導(dǎo)致茶多糖含量增加;隨著酶添加量的繼續(xù)增加,底物濃度不能使酶達(dá)到飽和,致使酶的作用受到了抑制,導(dǎo)致茶多糖提取率下降[16].因此,最合適的酶添加量為3%.

      2.3 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果分析

      由表2 中極差R的大小可得出各因素對(duì)茶多糖含量的影響順序依次為:酶解時(shí)間>酶添加量>酶解溫度,最佳工藝條件為A2B2C2,即酶解時(shí)間120 min、酶解溫度50 ℃和酶添加量3%.在此條件下進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn),所得“金花”茉莉花茶的茶多糖含量為104.25 mg/g.

      由表3 可知,因素A(酶解時(shí)間)對(duì)于茶多糖提取效率有顯著性影響(P≤0.05);因素B(酶添加量)和因素C(酶解溫度)對(duì)茶多糖的提取效率影響不顯著(P>0.10).這與表2中酶解時(shí)間對(duì)茶多糖提取效率影響最大的結(jié)果一致.

      表2 正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      表3 方差結(jié)果分析

      2.4 茶多糖的抗氧化活性

      DPPH 是一種很穩(wěn)定的以氮為中心的自由基,其孤對(duì)電子在517 nm 波長(zhǎng)附近有強(qiáng)吸收,當(dāng)有自由基清除劑存在時(shí),孤對(duì)電子被配對(duì)、吸收后消失或者減弱[17-18].對(duì)比檢測(cè)從普通茉莉花茶和“金花”茉莉花茶中提取的茶多糖對(duì)DPPH 試劑的自由基清除效果得出,從2 種茶中所提取的茶多糖對(duì)DPPH 自由基半數(shù)清除率分別為57.14%和61.97%.這說(shuō)明相對(duì)于未“發(fā)花”的茉莉花茶,從“金花”茉莉花茶中提取的茶多糖表現(xiàn)出了較好的抗氧化能力.

      3 結(jié)語(yǔ)

      通過(guò)纖維素酶輔助提取“金花”茉莉花茶茶多糖的工藝研究,獲得了其最佳工藝條件:酶解時(shí)間120 min、酶解溫度50 ℃和酶添加量3%.在此條件下,從1.000 g“金花”茉莉花茶中提取的茶多糖為104.25 mg,相對(duì)文獻(xiàn)[10-11]所報(bào)道的方法有較高的提取效率.以相同實(shí)驗(yàn)方法從未發(fā)花的茉莉花茶中提取茶多糖并作為對(duì)照,利用DPPH的自由基清除法研究“金花”茉莉花茶中茶多糖的抗氧化活性,結(jié)果顯示從“金花”茉莉花茶中提取的茶多糖表現(xiàn)出了更好的抗氧化活性.綜上所述,對(duì)茉莉花茶采用“發(fā)花”技術(shù),可以提高其茶多糖含量,若同時(shí)采用纖維素酶輔助提取法,控制好最佳工藝參數(shù),就可獲得更高的茶多糖提取效率.但本文所提工藝得到的茶多糖是粗茶多糖,如果能進(jìn)一步對(duì)產(chǎn)品進(jìn)行純化,有望對(duì)“金花”茉莉花茶中的茶多糖和真菌多糖進(jìn)行區(qū)分和鑒別,從而對(duì)深入研究茶多糖的保健功效產(chǎn)生積極作用.

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