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      原代黃素化卵泡顆粒細(xì)胞氧化應(yīng)激模型的建立與評價(jià)

      2022-03-01 00:19:10邢鵬袁博王娜李澎濤孟娜娜
      關(guān)鍵詞:顆粒細(xì)胞原代培養(yǎng)液

      邢鵬,袁博,王娜,李澎濤,孟娜娜

      顆粒細(xì)胞作為卵泡的基本組成單位,在調(diào)控卵泡生長[1]、排卵和誘導(dǎo)竇卵泡凋亡[2]中起著關(guān)鍵性作用。由于顆粒細(xì)胞代謝旺盛致代謝產(chǎn)物的堆積,以及不良生活方式,如熬夜、飲酒等,都會(huì)導(dǎo)致氧化和抗氧化系統(tǒng)的失衡,形成氧化應(yīng)激損傷[3]。氧化應(yīng)激誘導(dǎo)脂質(zhì)過氧化,從結(jié)構(gòu)和功能上改變蛋白質(zhì)和DNA功能,并促進(jìn)細(xì)胞凋亡。顆粒細(xì)胞的氧化應(yīng)激與女性生殖系統(tǒng)多種疾病有關(guān),如多囊卵巢綜合征(polycystic ovary syndrome,PCOS)[4]、子宮內(nèi)膜異位癥(endometriosis,EMT)[5]和原發(fā)性卵巢功能不全(premature ovarian insufficiency,POI)[6]等。由于人卵巢原代顆粒細(xì)胞獲取方法困難、培養(yǎng)條件苛刻及傳代培養(yǎng)時(shí)間長等問題,較難構(gòu)建穩(wěn)定的細(xì)胞模型。既往,有學(xué)者通過不同濃度過氧化氫(H2O2)處理人卵巢顆粒腫瘤細(xì)胞(COV434)建立了氧化應(yīng)激模型[7],但是由于腫瘤細(xì)胞固有的特性,其實(shí)驗(yàn)結(jié)論并不能完全反映生理細(xì)胞的特性。因此,構(gòu)建穩(wěn)定的原代黃素化卵泡顆粒細(xì)胞氧化應(yīng)激細(xì)胞模型,是進(jìn)一步開展卵巢氧化應(yīng)激研究及篩選抗氧化藥物所需要的[8-9]。本研究通過H2O2誘導(dǎo),探討是否可以建立穩(wěn)定的人原代黃素化卵泡顆粒細(xì)胞氧化應(yīng)激模型。

      1 材料與方法

      1.1 主要試劑

      3% H2O2于美國Sigma,DMEM/F12培養(yǎng)液、胎牛血清購自美國Gibco,紅細(xì)胞裂解液、Percoll細(xì)胞分離液、碘化丙啶試劑盒均購自北京Solarbio,CCK-8試劑盒購于日本同仁,丙二醛、總超氧化物歧化酶測定試劑盒購自南京建成生物工程研究所,雌二醇(estradiol,E2) ELISA試劑盒購自武漢Elabscience。

      1.2 顆粒細(xì)胞收集

      收集2019年10月至12月于保定市婦幼保健院生殖醫(yī)學(xué)科,行體外受精-胚胎移植患者取卵后廢棄的卵泡液。本研究獲得保定市婦幼保健院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),所有參與研究的患者均知情同意并簽署知情同意書。

      1.2.1 納入與排除標(biāo)準(zhǔn) 選擇年齡<35歲的輸卵管性不孕或男方精子因素不孕患者,同時(shí)排除:① 卵巢低反應(yīng)[10];② PCOS;③ EMT;④ 各種類型的卵巢腫物[11]的患者。

      1.2.2 細(xì)胞分離與培養(yǎng) 將收集到的卵泡液置入50 mL離心管,400 g離心10 min棄上清,沉淀用磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffer saline,PBS)重懸,緩慢加入50% Percoll單層密度梯度離心液上層,400 g離心25 min。離心后,液體共分四層,從下到上依次為:紅細(xì)胞層,透明Percoll液層、白色絮狀顆粒細(xì)胞層、淡黃色上清液層。收集顆粒細(xì)胞層,紅細(xì)胞裂解液裂解紅細(xì)胞,沉淀用PBS重懸,加入等體積0.25%胰蛋白酶+EDTA,37℃消化10 min。400 g離心5 min,棄去上清,將細(xì)胞接種于培養(yǎng)液[含15%胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)]、1%青-鏈霉素的DMEM/F12培養(yǎng)液,置入37℃ 5% CO2的培養(yǎng)箱(以下簡稱培養(yǎng)箱)中上層。培養(yǎng)24 h后觀察細(xì)胞貼壁情況[12]。培養(yǎng)5~6天細(xì)胞匯合度達(dá)到80%以上,開始建立氧化應(yīng)激損傷模型,所有實(shí)驗(yàn)均重復(fù)3次。

      1.3 顆粒細(xì)胞氧化損傷模型的建立

      1.3.1 采用最大半數(shù)抑制濃度(half maximal inhibitory concentration,IC50)來建立顆粒細(xì)胞氧化損傷模型。

      1.3.2 取1.2.2培養(yǎng)后的顆粒細(xì)胞,經(jīng)消化、計(jì)數(shù)后,以105/mL的濃度,每孔100 μL,均勻接種于96孔板,每組設(shè)6個(gè)復(fù)孔。培養(yǎng)24 h后細(xì)胞貼壁,吸去孔內(nèi)培養(yǎng)液,加入用無血清培養(yǎng)液倍數(shù)稀釋的H2O2(5 μmol/L、10 μmol/L、20 μmol/L、40 μmol/L、80 μmol/L、160 μmol/L、320 μmol/L)100 μL,以無血清培養(yǎng)液為陰性對照組,以PBS為空白組。放入培養(yǎng)箱培養(yǎng)12 h后,吸去培養(yǎng)液,每孔加入新培養(yǎng)液100 μL和CCK-8 10 μL, 繼續(xù)培養(yǎng)4 h。在波長為450 nm酶標(biāo)儀上測定吸光度(Optical Density,OD)值,計(jì)算細(xì)胞存活率。

      1.3.3 利用GraphPad Prism 5.0軟件計(jì)算IC50。

      1.4 顆粒細(xì)胞氧化損傷模型的驗(yàn)證

      1.4.1 實(shí)驗(yàn)分組 以IC50濃度的H2O2處理匯合后的顆粒細(xì)胞12 h,作為模型組;以未加H2O2的顆粒細(xì)胞,作為對照組。

      1.4.2 采用硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid,TBA)法測定丙二醛(malondialdehyde,MDA)含量和WST-1法測定超氧化物歧化酶(superoxide dismutase,SOD)水平 收集實(shí)驗(yàn)后細(xì)胞經(jīng)超聲波細(xì)胞粉碎機(jī)破碎,漩渦混勻。按照BCA(bicinchoninic acid)蛋白濃度測定試劑盒說明書測定細(xì)胞勻漿液中蛋白濃度。按MDA和SOD試劑盒操作,應(yīng)用酶標(biāo)儀分別在532 nm處測定ODMDA值和450 nm處測定ODSOD值,并計(jì)算MDA含量和SOD水平。

      1.4.3 競爭ELISA法測定E2分泌量 分組實(shí)驗(yàn)結(jié)束后,更換新鮮的含濃度為12 ng/mL的r-FSH(Gonal-F)的培養(yǎng)液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h。1 500 g離心10 min,取上清液。按E2試劑盒操作,應(yīng)用酶標(biāo)儀在450 nm處測定ODE2值,用標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算培養(yǎng)液中E2的濃度。

      1.4.4 流式細(xì)胞儀分析細(xì)胞周期 收集兩組顆粒細(xì)胞,經(jīng)胰酶消化后收集單個(gè)細(xì)胞,用預(yù)冷的PBS洗滌。75%酒精4℃固定4 h,500 g離心10 min,去上清。預(yù)冷PBS洗滌后,每管加入400 μL PI(50 μg/mL),100 μL RNase(100 μg/mL)輕柔旋渦混均后,4℃避光孵育30 min。流式細(xì)胞儀檢測,利用ModFit LT 3.1軟件分析細(xì)胞周期分布。

      1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

      2 結(jié)果

      2.1 細(xì)胞生存曲線

      隨著H2O2濃度的增加,人卵泡顆粒細(xì)胞的存活率呈對數(shù)下降。根據(jù)不同濃度H2O2與顆粒細(xì)胞的存活率,繪制細(xì)胞生存曲線(見下頁圖1)。所得IC50值為65.72 μmol/L,95%CI(60.98-70.84)。使用IC50濃度H2O2=65 μmol/L,建立顆粒細(xì)胞氧化損傷模型。

      圖1 細(xì)胞生存曲線

      2.2 兩組顆粒細(xì)胞形態(tài)的光鏡觀察結(jié)果

      圖2A所示為模型組,可見卵泡顆粒細(xì)胞的細(xì)胞核核仁不明顯,細(xì)胞的體積變形等早期凋亡形態(tài),及凋亡小體和細(xì)胞膜發(fā)泡現(xiàn)象等凋亡晚期的形態(tài)。圖2B所示為對照組,可見卵泡顆粒細(xì)胞呈多突狀生長,細(xì)胞間有偽足相連,細(xì)胞核圓形、較大,核仁明顯,胞漿內(nèi)可見豐富的顆粒。

      圖2 光鏡下兩組顆粒細(xì)胞的形態(tài)特點(diǎn)(20 μm)

      2.3 兩組顆粒細(xì)胞MDA含量、SOD水平及E2分泌量比較

      與對照組相比,模型組細(xì)胞MDA含量升高,SOD水平降低,E2分泌量降低,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05),詳見表1。

      表1 兩組顆粒細(xì)胞存活率、MDA含量及SOD水平的比較

      2.4 兩組顆粒細(xì)胞細(xì)胞周期的比較

      與對照組相比,模型組的凋亡峰(sub G1)明顯增高[模型組vs對照組:(30.48±4.19) vs (7.14±3.84),t=12.321,P<0.001],而G1期[模型組vs對照組:(35.99±3.45) vs (47.06±6.09),t=4.742,P<0.001]和G2期[模型組vs對照組:(9.12±3.95) vs (17.81±4.82),t=4.178,P=0.001]細(xì)胞數(shù)量均明顯降低,S期兩組細(xì)胞數(shù)量無差異[模型組vs對照組:(24.40±4.01) vs (27.99±3.62),t=1.996,P=0.063],見圖3。

      圖3 兩組顆粒細(xì)胞的細(xì)胞周期

      3 討論

      原代顆粒細(xì)胞來源于接受體外受精/卵胞漿內(nèi)單精子顯微注射技術(shù)治療的患者,這些細(xì)胞在超生理劑量的促卵泡生成素(follicle stimulating hormone,FSH)和人絨毛膜促性腺激素(human chorionic gonadotropin,hCG)的刺激下,通常在獲得時(shí)已經(jīng)黃素化,它們在體外的壽命有限,且新鮮制備的細(xì)胞缺乏對hCG一致性的反應(yīng),在短期培養(yǎng)細(xì)胞中亦對FSH缺乏反應(yīng)性,因此,利用人類顆粒細(xì)胞的原代培養(yǎng)物進(jìn)行研究比較困難[13]。有研究發(fā)現(xiàn),通過長期培養(yǎng)的顆粒細(xì)胞能夠重建對FSH刺激的反應(yīng)性,在FSH和hCG共同處理下,E2和孕酮的分泌量明顯增加[14]。本實(shí)驗(yàn)經(jīng)過多輪嘗試與摸索,并查閱大量其他人的基礎(chǔ)實(shí)驗(yàn)結(jié)果,通過觀察細(xì)胞的融合生長狀態(tài)和測定細(xì)胞的孕酮分泌功能的恢復(fù)情況,我們通過增加鋪板密度和延長培養(yǎng)時(shí)間至6天左右,這樣既能保證顆粒細(xì)胞的生長匯合,又能使經(jīng)過過度刺激的黃素化-顆粒細(xì)胞恢復(fù)內(nèi)分泌功能。

      H2O2屬強(qiáng)氧化劑,一定濃度下可對細(xì)胞造成氧化應(yīng)激和氧化損傷,已經(jīng)有多種H2O2誘導(dǎo)的細(xì)胞氧化應(yīng)激模型建立成功[15-16]。本研究通過給予不同濃度H2O2作用顆粒細(xì)胞12 h后,計(jì)算IC50濃度建立顆粒細(xì)胞氧化應(yīng)激模型?;钚匝豕羯锬ぶ械亩嗖伙柡椭舅?,引發(fā)脂質(zhì)過氧化反應(yīng),氧化終產(chǎn)物為高活性的醛基化合物MDA[17]。SOD是一種抗氧化金屬酶,它能夠催化超氧陰離子自由基歧化生成氧和H2O2,體內(nèi)的過氧化氫酶將其分解為水,從而保護(hù)細(xì)胞免受氧化應(yīng)激。膜損傷的最終結(jié)果將導(dǎo)致細(xì)胞凋亡、壞死,進(jìn)而導(dǎo)致顆粒細(xì)胞的分泌功能受損[18]。

      本研究結(jié)果顯示,H2O2作用12 h后,MDA含量上升、SOD水平下降,說明顆粒細(xì)胞氧化損傷程度增高,而細(xì)胞修復(fù)損傷的能力下降。經(jīng)過FSH刺激后,卵泡顆粒細(xì)胞分泌E2的量明顯較對照組下降,說明細(xì)胞的內(nèi)分泌功能受損。細(xì)胞周期分析顯示:凋亡的sub G1峰升高,而G1/G0期和G2/M期均下降,說明隨著細(xì)胞凋亡峰的增高,DNA發(fā)生損傷,細(xì)胞周期將不能通過DNA損傷監(jiān)測點(diǎn)[19],從而不能進(jìn)入下一分裂時(shí)相,因此G1期、G2期均被延遲。以上指標(biāo)表明H2O2誘導(dǎo)的人黃素化卵泡顆粒細(xì)胞的應(yīng)激損傷模型建模成功,這與其他學(xué)者的研究基本一致[20-21]。

      綜上所述,65 μmol/L H2O2處理人卵泡顆粒細(xì)胞12 h,細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷水平升高,內(nèi)分泌功能下降,細(xì)胞凋亡增加而分裂減少。因此,建立了穩(wěn)定的顆粒細(xì)胞氧化應(yīng)激損傷模型,為進(jìn)一步開展顆粒細(xì)胞抗氧化研究提供了細(xì)胞模型。

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