賀凌霄 韓文龍 李 波 江智敏 徐 敏 李芳芳 鄭 聰 徐世曉,*
(1 河南農(nóng)業(yè)大學煙草學院,河南 鄭州 450002;2 浙江中煙工業(yè)有限責任公司,浙江 杭州 310008;3 中國煙草總公司河南省公司,河南 鄭州 450002;4 福建省煙草公司南平市煙草公司浦城分公司,福建 南平 353400)
二萜類化合物順-冷杉醇(cis-abienol)是部分煙草葉片腺毛分泌物中特有的萜類香氣前體物之一,是由NtCPS2基因編碼柯巴基焦磷酸合酶(8-hydroxy-copalyl diphosphate synthase, CPS2)后合成的[1]。順-冷杉醇與二萜類化合物赤霉素(gibberellins,GAs)、倍半萜脫落酸(abscisic acid,ABA)具有共同的前體物質(zhì)香葉基香葉基焦磷酸(geranylgeranyl-PP,GGPP)[2-5],合成途徑見圖1[1,6-7]。河南農(nóng)業(yè)大學煙草學院育種課題組前期研究表明,8306編輯順-冷杉醇合成基因NtCPS2后,NtCPS2基因的相對表達量和順-冷杉醇的含量降低,同時赤霉素合成途徑中相關基因受到影響,進而使赤霉素含量提高[8]。此外,有研究表明,在植物生長過程中ABA與GAs相互影響,含量發(fā)生變化從而調(diào)節(jié)植物的生長發(fā)育,如:種子的萌發(fā)與休眠[9]、植株地上部的生長[10-12]。楊衛(wèi)民等[6]發(fā)現(xiàn)用不同濃度的外源ABA和赤霉素(gibberellin 3,GA3)分別處理木棗果實,對丙二醛(malondialdehyde, MDA)、維生素C(vitamin C,Vit C)、過氧化氫酶(Proline)含量和CAT活性均產(chǎn)生相反的作用,表現(xiàn)為相互制約或互為拮抗的特征。宋平等[13]研究表明,GAS與ABA間具有拮抗效應,且在不同秈稻半矮稈品種中的拮抗效應強弱不同。還有研究表明,在GAS處理條件下,ABA對水稻地上部生長的抑制作用被解除[11]。
ABA對氣孔運動有調(diào)控作用[14-16],同時氣孔是直接影響植物葉片光合作用的植物表皮結構[17-18]。在被子植物中,ABA與質(zhì)膜受體或胞內(nèi)受體結合,激活G蛋白,激活后的G蛋白活化磷脂酶,產(chǎn)生abi1-1、NAD(P)H依賴型ROS和abi2-1等因子參與Ca2+信號轉導[19],通過依賴Ca2+的信號轉導途徑,Ca2+可抑制K+內(nèi)流通道,激活K+外流通道和陰離子通道,從而促進K+外流[20-22],導致氣孔關閉或抑制氣孔開放[23]。此外,ABA還可通過不依賴Ca2+的信號轉導途徑,即通過提高細胞質(zhì)pH值,激活K+外流通道和陰離子通道誘導氣孔關閉[24-25]。氣孔開閉變化會引起氣孔導度(stomatal conductance,GS)的變化,進而影響植物的蒸騰速率(transpiration rate,Tr)和凈光合速率(net photosynthetic rate,Pn)[26]。有研究表明,植物氣孔導度下降導致胞間CO2濃度(intercellular carbon dioxide,Ci)下降,光合作用隨之下降[27-28]。植物通過光合作用合成的有機物質(zhì)是植株進行生長和發(fā)育的物質(zhì)基礎[29],累積的光合產(chǎn)物越多,越利于植株生長。同時,光合作用影響著植物體的生理代謝過程,對經(jīng)濟作物品質(zhì)的形成有基礎性作用[30-33]。因此,在一定范圍內(nèi)提高煙葉光合速率,可以增加煙草有機物的合成速率,有利于煙葉同化物的積累,從而提升煙葉的產(chǎn)量和品質(zhì)[34-35]。
目前,有關NtCPS2對二萜類代謝合成途徑的影響已有報道[1,4,8,36-38],但NtCPS2基因與光合作用關系的研究鮮見報道。本研究以烤煙品種(系)8306、8306B、MSK326、豫煙11號和新豫煙11號為材料,分別比較8306B與8306、新豫煙11號與豫煙11號在光合參數(shù)及相關合成基因相對表達量和酶活性,氣孔開度,順-冷杉醇、GA3、ABA含量及相關合成基因相對表達量上的差異以及產(chǎn)量和品質(zhì)的差異,旨在明確NtCPS2基因?qū)夂献饔玫恼{(diào)控方式,以期為萜類化合物對植物光合作用的反饋調(diào)節(jié)機制提供例證。
試驗于2020年在河南省漯河市臨潁縣進行,選擇土壤肥力中上等且均勻、地勢平坦、排灌方便、遠離工業(yè)區(qū)、前茬一致的沙壤土作為試驗地。供試烤煙(NicotianatabacumL.)品種(系)為自育高香氣烤煙品系8306、8306B[39](8306編輯NtCPS2基因的純合突變植株T3代)、MSK326、豫煙11號[40](MSK326×8306,YU11)、新豫煙11號(豫煙11號改良父本的新品系,MSK326×8306B,NYU11),由河南農(nóng)業(yè)大學煙草學院育種實驗室提供。
試驗共5個處理,分別為8306、8306B、MSK326、YU11、NYU11。各處理種植面積為60.5 m2,田間行距為110 cm, 株距為55 cm,于2019年3月1日播種,同年5月1日移栽,其他栽培措施按照當?shù)貎?yōu)質(zhì)煙葉生產(chǎn)技術規(guī)范操作。移栽后75 d時,每個品種(系)隨機挑選5株長勢一致的煙株取樣并測定指標;烤后樣統(tǒng)一選取C3F等級[41]葉片,每個品種(系)重復3次。
1.2.1 葉面分泌物順-冷杉醇的測定 煙草葉片中的順-冷杉醇提取參照陳偉等[42]的方法,通過NIST12檢索譜庫確定各類物質(zhì)成分,并使用內(nèi)標法對物質(zhì)定量。
1.2.2 內(nèi)源激素分析測定 采集移栽75 d后的0.50 g新鮮煙草樣品,用液氮速凍后,存放于-80℃冰箱中保存,采用間接酶聯(lián)免疫吸附法 (enzyme-linked immuno sorbent assay,ELISA)進行測定,酶免疫試劑盒由中國農(nóng)業(yè)大學化控中心提供。
1.2.3 光合參數(shù)測定 于上午8:00-11:30,用CIRAS-3便攜式光合儀(英國漢莎)測定光合相關參數(shù),每品種(系)隨機選定5株測定完全展開的功能葉,數(shù)據(jù)穩(wěn)定后記錄,5次重復取平均值。
1.2.4 光合相關的酶活性測定 采集0.50 g新鮮煙草樣品,用液氮速凍后,存放于-80℃冰箱中保存,采用間接酶聯(lián)免疫吸附法進行測定,酶免疫試劑盒由武漢普奈斯生物科技有限公司提供。
1.2.5 農(nóng)藝性狀調(diào)查 每個品種(系)選擇有代表性的5株,根據(jù)《YC/T 142-2010煙草農(nóng)藝性狀調(diào)查測量方法》[43]進行煙草農(nóng)藝性狀調(diào)查,測定并記錄株高和節(jié)距。
1.2.6 干物質(zhì)積累 每個處理選擇5株長勢均勻一致的植株,分為根、莖、葉片,在105℃殺青30 min,80℃烘干至恒重后測定干物質(zhì)量。
1.2.7 化學成分 根據(jù)《YC/T 159、160、162、217-2002煙草和煙草制品化學成分連續(xù)流動法》[44]測定煙葉總糖、煙堿、氯和鉀含量。
1.2.8 產(chǎn)量統(tǒng)計 根據(jù)《GB 2635-1992烤煙》[41]對烤后煙葉分級,統(tǒng)計各處理產(chǎn)量。
1.2.9 中性致香成分含量檢測 取20.00 g烤后煙樣(C3F)采用內(nèi)標法[45],內(nèi)標為硝基苯,通過RE-52C旋轉蒸發(fā)儀(上海普渡生化科技有限公司)和7200氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用儀(安捷倫,北京)(gas chromatography-mass spectrometry,GC-MS)進行檢測分析。利用NIST12檢索譜庫定性,并使用內(nèi)標法對物質(zhì)進行定量,并對測得的物質(zhì)按照姜慧娟等[46]的方法進行分類。
1.2.10 煙草葉片總RNA的提取 采用AM9690 Plant RNA isolation Aid(塞默飛,上海)提取供試材料葉片總RNA,于-80℃冰箱中保存。利用HiScript Ⅱ Q RT SuperMix for qPCR(+gDNA wiper)R223-01(南京諾唯贊生物公司)將待測RNA反轉錄成cDNA,儲存在-20℃冰箱中備用。
引物設計采用Roche LCPDS2軟件(表1)并由上海捷瑞生物工程有限公司合成。實時熒光定量PCR(quantitative real-time PCR,qRT-PCR)利用ChamQ SYBR qPCR Master MixQ311-03試劑盒(南京諾唯贊生物公司)在LightCycler?480 II型熒光定量PCR儀(Roche,瑞士)上進行反應。反應體系10 μL:2× ChamQ SYBR qPCR Master Mix 5 μL,10 μmol·L-1正、反向引物各0.2 μL,cDNA 1 μL,ddH2O 3.6 μL。PCR程序:95℃預變性30 s;95℃變性10 s,60℃退火和延伸 30 s,共40個循環(huán)。通過2-ΔΔCt法計算基因相對表達量并作圖。
表1 熒光定量引物序列Table 1 Sequences of fluorescence quantitative primers
采用Excel 2019軟件進行數(shù)據(jù)整理及作圖,用SPSS 20.0 軟件進行方差分析,用Duncan法進行多重比較, 用RStudio 1.2.5033軟件進行相關性分析及作圖。
由圖2可知,8306B、NYU11的順-冷杉醇含量、NtCPS2基因相對表達量分別顯著低于8306、YU11。NYU11的順-冷杉醇含量、NtCPS2基因相對表達量與雙親MSK326和8306B相比差異均不顯著;YU11的順-冷杉醇含量、NtCPS2基因相對表達量均顯著高于MSK326,而順-冷杉醇含量與8306相比差異不顯著,NtCPS2基因相對表達量則顯著低于8306。
注:誤差線表示標準差。不同小寫字母表示品種(系)間差異顯著(P<0.05)。下同。Note: The error line represents the standard deviation. Different lowercase letters represent the significant difference among varieties (series)at 0.05 level. The same as following.圖2 不同品種(系)順-冷杉醇含量及合成基因表達量的比較Fig.2 The content and the synthetic gene expression in different varieties (series)
由圖3可知,8306B、NYU11的赤霉素含量分別顯著高于8306、YU11,脫落酸含量分別顯著低于8306、YU11。NYU11的赤霉素含量與雙親差異顯著,且含量順序為MSK326>NYU11>8306B,YU11的赤霉素含量顯著低于MSK326,與8306差異不顯著(圖3-A);NYU11的脫落酸含量與雙親差異顯著,表現(xiàn)為MSK326>NYU11>8306B,YU11的脫落酸含量顯著低于雙親(圖3-B)。說明NtCPS2基因編輯后赤霉素含量增加,脫落酸含量降低。
圖3 不同品種(系)內(nèi)源激素含量比較Fig.3 Endogenous hormones content of in different varieties (series)
由圖4-A、B可知,8306B的CPS基因相對表達量顯著高于8306,NYU11的CPS基因相對表達量與YU11差異不顯著,8306B、NYU11的GA20ox基因相對表達量分別顯著高于8306、YU11。NYU11、YU11的CPS、GA20ox基因相對表達量分別與MSK326差異不顯著。由上述結果可知,NtCPS2基因?qū)PS的表達影響顯著,其中GA20ox基因表達在雜交后代中遺傳效應顯著。
圖4 不同品種(系)內(nèi)源激素基因相對表達量的比較Fig.4 Endogenous hormones gene relative expression of in different varieties (series)
由圖4-C~E可知,8306B、NYU11的GA2ox、PSY、NCED基因相對表達量分別顯著低于8306、YU11。NYU11的GA2ox基因相對表達量與雙親差異不顯著,YU11的GA2ox基因相對表達量顯著差異于雙親,8306>YU11>MSK326,NtCPS2基因編輯后赤霉素合成負調(diào)控基因GA2ox的相對表達量顯著降低(圖4-C)。NYU11的PSY基因相對表達量顯著差異于雙親,MSK326>NYU11>8306B,YU11的PSY基因相對表達量與雙親差異不顯著(圖4-D)。NYU11的NCED基因相對表達量顯著低于MSK326,與8306B差異不顯著,YU11的NCED基因相對表達量顯著低于8306,與MSK326差異不顯著(圖4-E),NtCPS2基因編輯后脫落酸合成途徑中的正調(diào)控基因PSY、NCED的相對表達量顯著降低。
由圖5可知,8306B、NYU11的氣孔閉合比率分別顯著低于8306、YU11。NYU11的氣孔閉合比率與雙親的差異顯著,MSK326>NYU11>8306B,YU11的氣孔閉合比率顯著低于雙親。表明NtCPS2基因編輯后降低了氣孔閉合比率且可在雜交后代中遺傳。
圖5 不同品種(系)氣孔閉合比率的比較Fig.5 Stomatal closure ratio of in different varieties (series)
2.4.1 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代光合參數(shù)的影響 由表2可知,8306B、NYU11的Pr、Ci、Gs、Tr、水汽壓虧缺(vapor pressure deficit,VPD)分別顯著高于8306、YU11,水分利用率(water use efficiency,WUE)分別顯著低于8306、YU11。YU11和NYU11的Pr、Ci、Tr在親本之間,未發(fā)生超親遺傳現(xiàn)象。
2.4.2 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代光合相關酶活及基因相對表達量的影響 由圖6可知,8306B、NYU11的Rubisco、GAPDH活性分別顯著高于8306、YU11。YU11、NYU11的Rubisco活性均顯
表2 不同品種(系)F1代光合參數(shù)比較Table 2 Photosynthetic parameters of in different varieties (series)
著高于雙親(圖6-A);NYU11的GAPDH活性顯著高于雙親,YU11的GAPDH活性與雙親差異顯著,MSK326>YU11>8306(圖6-B)。
由圖7可知,8306B、NYU11的Rubisco、GAPDH基因相對表達量分別顯著高于8306、YU11。NYU11的Rubisco、GAPDH基因相對表達量顯著高于MSK326,與8306B差異不顯著,YU11的Rubisco、GAPDH基因相對表達量與雙親MSK326和8306相比差異不顯著??芍夂舷嚓P酶活性及基因相對表達量在編輯NtCPS2基因后顯著增加。
圖6 不同品種(系)光合相關酶活的比較Fig.6 Photosynthesis-related enzyme activities of in different varieties (series)
圖7 不同品種(系)光合相關基因相對表達量的比較Fig.7 Photosynthesis-related gene relative expression of in different varieties (series)
注:* 表示P<0.05 水平上顯著相關,** 表示P<0.01 水平上極顯著相關,***表示P<0.001 水平上極顯著相關。Note:* indicates significant correlation at 0.05 level, ** indicates extremely significant correlation at 0.01 level, and *** indicates extremely significant correlation at 0.001 level.圖8 NtCPS2基因與光合作用相關基因的相關性分析Fig.8 Correlation analysis between NtCPS2 gene and genes related to photosynthesis
對8306編輯系和雜種F1代的萜類(順-冷杉醇、赤霉素、脫落酸)合成基因、氣孔閉合率與光合作用酶活相關基因進行相關性統(tǒng)計分析,結果見圖8。煙葉中CPS、光合作用相關基因Rubisco、GAPDH相對表達量均與NtCPS2相對表達量呈負相關性,其中煙葉中的CPS相對表達量與NtCPS2相對表達量在P<0.05 水平上呈顯著負相關,Rubisco、GAPDH相對表達量均與NtCPS2相對表達量在P<0.001水平上呈極顯著負相關,且相關系數(shù)較大,分別為-0.776和-0.840;煙葉中CPS相對表達量與PSY相對表達量在P<0.01水平上呈極顯著負相關,其相關系數(shù)為-0.651;煙葉的氣孔閉合率與PSY相對表達量在P<0.001水平上呈極顯著正相關,其相關系數(shù)為0.891。表明NtCPS2基因相對表達量降低可能提高光合效率。
由表3可知,8306B、NYU11的株高、葉數(shù)、節(jié)距分別顯著高于8306、YU11,莖圍、最大葉長、最大葉寬、最大葉面積與8306、YU11相比差異不顯著。NYU11的株高、莖圍與雙親差異顯著,表現(xiàn)為MSK326>NYU11>8306B;YU11的株高顯著差異于雙親,表現(xiàn)為MSK326>YU11>8306。表明在農(nóng)藝性狀的各項指標中NtCPS2基因?qū)χ旮吆凸?jié)距的影響最明顯。
2.7.1 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代干物質(zhì)積累的影響 由圖 9-A可知,8306B、NYU11的干物質(zhì)積累總量分別較8306、YU11高19.96%、9.20%。8306B、NYU11的葉干物質(zhì)積累量分別較8306、YU11高27.73%、11.94%;8306B、NYU11的根干物質(zhì)積累量均顯著大于8306、YU11;莖干物質(zhì)積
圖9 不同品種(系)干物質(zhì)積累與分配的比較Fig.9 Dry matter accumulation and allocation of in different varieties (series)
累量差異不顯著。由圖9-B可知,烤煙干物質(zhì)主要分配給煙葉,8306B、NYU11的干物質(zhì)量分配給葉、根的比例分別大于8306、YU11,8306B、NYU11的葉干物質(zhì)分配量分別較8306、YU11多4.46和1.54個百分點。由上述結果可知,煙株干物質(zhì)積累量在編輯NtCPS2基因后顯著增加,其中葉和莖干物質(zhì)分配率明顯增加。
2.7.2 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代產(chǎn)量的影響 由圖10可知,8306B、NYU11的產(chǎn)量分別顯著高于8306、YU11。NYU11的產(chǎn)量顯著高于雙親,YU11的產(chǎn)量顯著高于8306,與MSK326差異不顯著。
2.7.3 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代化學成分的影響 由表4可知,8306B的煙堿含量顯著低于8306,總糖含量、氯離子含量、鉀離子含量、糖堿比顯著高于8306;NYU11的煙堿含量、氯離子含量顯著低于YU11,總糖含量、鉀離子含量、糖堿比、鉀氯比顯著高于YU11。NYU11的煙堿含量、總糖含量、糖堿比與雙親差異顯著;YU11的總糖含量顯著低于雙親,煙堿含量顯著高于8306,糖堿比在雙親之間,氯離子含量顯著高于MSK326,鉀離子含量、鉀氯比顯著低于MSK326。NtCPS2基因的表達量影響煙草化學成分的含量,其中煙堿含量顯著降低,總糖含量、鉀離子含量顯著增加。
圖10 不同品種(系)產(chǎn)量的差異比較Fig.10 Yield of in different varieties (series)
表4 不同品種(系)化學成分的差異比較Table 4 Chemical composition of in different varieties (series)
2.7.4 編輯NtCPS2基因?qū)煵菥庉嬒岛碗s種F1代中性致香成分的影響 由表5可知,8306B、NYU11的芳香族氨基酸降解產(chǎn)物、美拉德反應產(chǎn)物、類西柏烷降解產(chǎn)物、類胡蘿卜素降解產(chǎn)物、葉綠素降解產(chǎn)物含量分別顯著高于8306、YU11。NYU11、YU11的中性致香產(chǎn)物含量未發(fā)生超親遺傳現(xiàn)象,表明編輯NtCPS2基因增加了中性致香成分的含量。
表5 不同品種(系)中性致香成分的差異比較Table 5 Neutral aroma components of in different cultivars (strains) /(μg·g-1)
圖11 NtCPS2基因?qū)煵莨夂献饔糜绊懙拇x網(wǎng)絡Fig.11 Metabolic network of the effect of NtCPS2 gene on photosynthesis in tobacco
順-冷杉醇與GAs均是二萜化合物,由GGPP作為前體物質(zhì)經(jīng)過萜烯合成酶(terpene synthases, TPSs)催化分別生成順-冷杉醇和內(nèi)-貝殼杉烯,內(nèi)-貝殼杉烯再經(jīng)細胞色素P450單加氧酶(cytochrome P450 monooxygenases, P450s)和2-酮戊二酸依賴的雙加氧酶(2-oxoglutarate-dependent dioxygenases, 2ODDs)生成GAs[47-50]。編碼萜烯合成酶的基因NtCPS2被編輯后,順-冷杉醇含量降低的同時GAs含量顯著增加,推測順-冷杉醇含量的降低可能減少了對共同前體物質(zhì)GGPP的競爭[39],導致GAs含量增加[8]。此外,本研究發(fā)現(xiàn),編輯NtCPS2基因影響了GAs合成途徑中相關基因的表達,進而提高了GAs含量,但編輯NtCPS2基因后與順-冷杉醇和GAs有共同前體物質(zhì)的ABA含量及相關基因表達量顯著降低,因此編輯NtCPS2基因?qū)BA含量的影響與GAs不同,ABA含量降低的原因可能是受到其與GAs的拮抗作用影響[51]。周玲等[52]研究發(fā)現(xiàn)外源施加不同濃度的 GA3 降低了瓜爾豆的 ABA含量,本研究結果與之相似。有研究進一步表明,GAs誘導的Ca2+/鈣調(diào)素信號調(diào)節(jié)水解酶的合成和分泌,而ABA阻斷水解酶的表達[53],這可能解釋了GAs和ABA之間的拮抗作用[54]。
本研究發(fā)現(xiàn),編輯NtCPS2基因后的煙株ABA含量降低引起葉片氣孔閉合率下降、氣孔導度增加、植株光合作用增強,該結果與王清泉[55]的研究結果相近,即ABA含量與氣孔開度存在顯著的負相關關系。Tal等[56]研究同樣表明,內(nèi)源ABA水平過低的植物突變體氣孔開度明顯增大。趙新宇等[57]研究發(fā)現(xiàn)將不同生育時期的離體大豆植株浸泡于含有ABA的營養(yǎng)液后葉片的氣孔均關閉,進而對大豆葉片光合產(chǎn)生顯著的抑制作用,本研究結果與之相似,ABA含量降低間接導致光合作用速率增加,推測ABA含量降低導致的氣孔導度增大可以進一步導致Ci增高,進而使葉片凈光合速率升高[58]。同時,編輯NtCPS2基因后光合作用相關酶(Rubisco、GAPDH)的活性及基因相對表達量均增加。Rubisco[59]和GAPDH活性提高可以使煙草的光合效率和光合環(huán)的運轉效率增加、促進光合作用增強[60]。
此外,對順-冷杉醇、GAs、ABA合成途徑中萜烯合成酶基因NtCPS2、CPS、PSY,氣孔閉合率和光合作用酶活相關基因Rubisco、GAPDH進行了相關性分析,結果表明NtCPS2基因相對表達量降低間接促進煙株的光合作用、提高了煙株的光合效率。
綜上所述,NtCPS2對煙草光合特征的影響可能如圖11所示。編輯NtCPS2基因后,NtCPS2基因相對表達量降低,GGPP含量增加,GAs合成正調(diào)控基因相對表達量增加,負調(diào)控基因的相對表達量降低,導致GAs含量增加,推測由于GAs和ABA之間的拮抗作用,ABA含量降低,導致氣孔閉合率降低,從而由外界環(huán)境經(jīng)由氣孔擴散到葉肉組織的CO2濃度(Ci)增高,進而提高葉片的光合能力。
光合作用是作物產(chǎn)量形成的基礎,作物干物質(zhì)90%以上來源于光合作用[61]。本研究表明編輯NtCPS2基因后煙株光能利用效率的增加導致株高、干物質(zhì)積累和產(chǎn)量增加,與Dalal等[62]的研究結果相近。此外,8306B、NYU11的化學成分與8306、YU11有所不同,編輯NtCPS2后煙堿含量顯著降低、鉀離子含量明顯增加,可能是由于赤霉素含量的提高促使植物體內(nèi)IAA含量增加,間接抑制了煙堿合成酶的活性導致煙堿含量降低[63-64],并且赤霉素含量的提高促進了鉀離子的運輸通道打開以及載體數(shù)量的增加[65]。同時,有研究表明鉀離子含量增高有利于提高煙葉的中性致香物質(zhì)含量[66],與本研究結果相似。
本試驗探究了JN6CPS2基因?qū)ο群献饔玫恼{(diào)控方式,為萜類化合物對植物光合作用反饋調(diào)節(jié)作用研究提供例證,發(fā)現(xiàn)降低NtCPS2基因相對表達量,可以增加純合突變植株的赤霉素含量,影響赤霉素合成途徑中CPS、GA20ox、GA2ox等基因的表達量,降低脫落酸含量及基因表達量和氣孔閉合率,從而提高光合酶活性及基因表達量、光合色素含量,改善植株的光合效率,提高葉片干物質(zhì)積累量和煙葉的品質(zhì),而且對于以純合突變植株為親本的雜種F1代與以野生型植株為親本的豫煙11號有相似的變化趨勢。