謝 雯,張春梅,任 昊,張懷霞,張瑩瑩,陳 倩,賈建磊*
(1.青海大學農牧學院,青海 西寧 810016; 2.青海大學實驗管理處,青海 西寧 810016)
熱休克蛋白27(Heat Shock Protein 27,HSP27)是小分子熱休克蛋白亞家族的重要一員,是高溫等應激因素誘導產生的蛋白[1],具有抗細胞凋亡和調節(jié)F-肌動蛋白活性等功能[2],其主要通過抗細胞凋亡和調節(jié)信號傳導來參與機體的多種復雜生理過程。
顆粒細胞為卵母細胞發(fā)育提供營養(yǎng)物質和能量[3-4]。HSP27蛋白是卵泡發(fā)育過程中產生的第一類蛋白,能在卵泡內的顆粒細胞層中表達[5-6]。HSP27基因在哺乳動物卵泡發(fā)育過程中通過介入到細胞凋亡信號通路直接干擾細胞凋亡,通過影響下丘腦促性腺激素釋放激素(Gonadotropin-releasing hormone,GnRH)、垂體促性腺激素中的促卵泡激素(Follicle Stimulating Hormone,FSH)和促黃體生成素(Luteinizing Hormone,LH)對卵巢顆粒細胞或膜細胞的調節(jié),進而調控哺乳動物卵泡發(fā)育及排卵過程[7]。因此,HSP27蛋白可以通過抑制顆粒細胞的凋亡來促進卵母細胞成熟[8]。
目前,對于HSP27基因的研究主要集中在運用分子遺傳學和DNA分子遺傳標記技術探索母體繁殖障礙疾病的作用機制,Shochet等[9]、Bahr等[10]研究發(fā)現HSP27蛋白的磷酸化會影響胎兒生長受限期間的胎盤發(fā)育;Hromadnikova等[11]研究發(fā)現sHSP的mRNA水平能反映母體對妊娠相關并發(fā)癥的應激反應程度。關于HSP27基因在顆粒細胞凋亡及卵母細胞成熟中的研究較少,因此本文以三大原始綿羊品種之一的藏羊為研究對象,構建HSP27基因真核表達體系,通過生物信息學分析并預測HSP27基因及其相互作用網絡在藏羊卵巢卵母細胞成熟過程中的作用通路,從分子生物學角度分析了HSP27基因對藏羊產羔性狀作用通路的影響,為提高藏羊產羔率提供理論依據。
試驗用成年健康經產高原型藏母羊5只(3~4歲),購自青海省海南藏族自治州共和縣哇玉香咔梅哚牧業(yè)有限公司,屠宰后采集兩側卵巢,剝離卵巢周圍表面韌帶及組織脂肪,無菌水沖洗后置于液氮中帶回實驗室,-80 ℃保存。
1.2.1HSP27基因PCR擴增及克隆 根據GenBank上提交的HSP27全基因mRNA的堿基序列(登錄號:NC_037352.1),運用Primer Premier 5.0軟件設計HSP27基因編碼區(qū)PCR引物(表1)。引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成。
表1 目的基因引物序列
將藏羊卵巢總RNA提取后反轉錄為cDNA,進行PCR擴增,產物用1%的瓊脂糖凝膠電泳檢測。擴增體系20 μL:模板cDNA(50 mg/μL)1.5 μL,Taq PCR預混酶2.0 μL,上、下游引物(100 μmol/L)各0.5 μL,PCR Loading Buffer 2.5 μL,dNTP(2.5 mmol/L)2.0 μL,ddH2O 11.0 μL(TransGen Biotech PerfectStart Uni RT&qPCR kit)。擴增條件:95 ℃預變性4 min;95 ℃變性30 s,59 ℃退火30 s,72 ℃延伸30 s,30個循環(huán);72 ℃保持10 min。使用T4 DNA連接酶將純化的PCR產物連接到pMD19-T中,過夜(4 ℃)構建重組質粒,將重組質粒轉化至DH5α感受態(tài)細胞中,將得到的菌液通過分區(qū)劃線法培養(yǎng)在含卡那抗性的LB固體培養(yǎng)基上,過夜(37 ℃)培養(yǎng)。挑取白色斑點轉移至具有氨芐抗性的LB液體培養(yǎng)基中培養(yǎng)(37 ℃,過夜),通過PCR篩選陽性克隆,送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
1.2.2HSP27基因真核表達體系的構建與單克隆抗體的制備 將pcDNA3.1a真核表達質粒載體和構建的pMD19-T-HSP27克隆載體進行雙酶切(XhoI、KpnI),用連接酶連接目的基因片段和空載體后轉化至DH5α感受態(tài)細胞中,冰浴30 min;熱激(42 ℃)90 s,冰浴1 min;加入1 mL液體LB培養(yǎng)基于搖床培養(yǎng)(37 ℃,180 r/min,1.5 h),取菌液涂布于含卡那抗性的LB固體培養(yǎng)基,過夜(37 ℃)培養(yǎng),挑取白色斑點,通過PCR篩選陽性克隆,送生工生物工程(上海)股份有限公司測序。
在含有10%胎牛血清的Grace′s培養(yǎng)基中培養(yǎng)Sf 9昆蟲細胞;將重組質粒轉染于Sf 9昆蟲細胞,在28 ℃條件下培養(yǎng),當細胞“病變”超過80%時分別收集上清液和沉淀,用SDS-PAGE凝膠電泳檢測,利用蛋白純化試劑盒進行重組蛋白的純化。
以重組HSP27蛋白為抗原免疫Bal b/c 6~8周齡雌性小鼠,末次免疫后取小鼠的血清進行ELISA抗體檢測,選擇抗體效價最高的小鼠脾細胞與SP 2/0骨髓瘤細胞進行融合,融合后待雜交瘤細胞長至96孔板的1/4時,用已建立的間接ELISA法對所有孔進行檢測,選擇檢測結果呈陽性的孔,用有限稀釋法進行2~3次亞克隆,直至抗體陽性率達到100%時擴大培養(yǎng)并凍存。
圖1藏羊卵巢總 RNA 提取圖Fig.1Extraction of total RNA from sheep ovary圖2HSP27基因PCR擴增圖Fig.2PCR amplification of HSP27 gene
1.2.3 重組HSP27蛋白相互作用蛋白的鑒定及生物信息學分析 在4 ℃條件下,用500 μL的0.5% NP40裂解緩沖液裂解母羊卵巢30 min;將沉淀物在PBS中洗滌2次后在4 ℃條件下用500 μL的1% NP40裂解緩沖液裂解,并用水浴超聲波儀(2級)處理(4個循環(huán));將3 mg總蛋白加入50 μg IgA進行免疫沉淀;將單獨表達空載體的Sf 9細胞用作陰性對照。用Expasy和NetPhos 3.1 Server在線軟件分析預測目的蛋白的氨基酸含量和磷酸化位點,Bio-rad電泳儀進行雙向電泳,Q Exactive質譜儀與Easy nLC系統鑒定目的蛋白,以試驗組和對照組蛋白差異倍數的絕對值(≥3)為篩選條件來鑒定差異蛋白。利用Wolf PSORT預測互作蛋白的亞細胞定位,結合NCBI數據庫,利用GENEMANIA軟件及Uniprot(http://www.uniprot.org/)數據庫對目的蛋白進行基本性質分析。
藏羊卵巢總RNA提取圖可見清晰的兩條帶(28S與18S)(圖1),提取效果較好,可直接用于反轉錄。用反轉錄PCR擴增HSP27基因編碼區(qū)序列,擴增片段與目的片段大小一致(618 bp)且特異性良好(圖2),結合NCBI數據庫中的BLAST軟件在線對比,擴增所得序列與參考序列的一致性達99.72%,可判定擴增序列為藏羊的HSP27基因序列。將擴增序列與pMD19-T載體進行連接,并將連接產物轉化至DH5α感受態(tài)細胞中,培養(yǎng)后挑選菌落使用限制性內切酶XhoI、KpnI 做酶切后,獲得618 bp的插入片段;空質粒未被酶切,表明藏羊HSP27基因的克隆成功(圖3)。
圖3 克隆雙酶切鑒定圖
利用限制性內切酶XhoI、KpnI對重組的真核載體pcDNA3.1a-HSP27、pcDNA3.1a分別進行雙酶切檢測,由圖4可見,重組的真核表達載體pcDNA3.1a-HSP27在5 000 bp和618 bp左右有兩條清晰的可見條帶,測序結果與已知序列完全相同,表明pcDNA3.1a-HSP27真核載體構建成功。
圖4 真核載體構建雙酶切鑒定圖
由圖5可見,重組HSP27蛋白主要在沉淀中,有利于蛋白的純化。經4次免疫后小鼠的血清抗體效價達到1∶32 000,表明pcDNA3.1a-HSP27經真核表達所得到的融合蛋白可以誘導小鼠產生良好的免疫反應(圖6)。用單克隆抗體在藏羊卵巢全蛋白中進行特異性檢測,免疫后小鼠血清與藏羊卵巢中HSP27蛋白可獲得特異性目的條帶,表明制備的抗體具有較好的免疫活性(圖7)。
利用Expasy和NetPhos 3.1 Server在線軟件分析HSP27基因編碼蛋白的氨基酸含量及磷酸化位點,結果表明該蛋白含有20種氨基酸,其中絲氨酸和脯氨酸的含量最高(9.5%),蛋氨酸和半胱氨酸含量最低(0.5%);圖8顯示該蛋白有18個絲氨酸磷酸化位點、8個蘇氨酸磷酸化位點和3個酪氨酸磷酸化位點,其中18個絲氨酸磷酸化位點包括Ser9、Ser15、Ser44、Ser48、Ser50、Ser70、Ser74、Ser78、Ser79和Ser82等。
圖8 HSP27基因編碼蛋白的磷酸化位點分析圖
圖9為用雙向電泳法分離免疫共沉淀復合物的情況,經鑒定有15種目的蛋白能與HSP27蛋白相互作用,分別為HSP27、熱休克蛋白10(HSP10)、細胞外信號調節(jié)激酶1(ERK1)、Bcl-2、骨成型蛋白受體1B(BMPR-1B)、亞甲基四氫葉酸還原酶(MTHFR)、Ras同源物基因家族成員D(RhoD)、膜聯蛋白A2(Annexin A2,ANXA2)、鈣調蛋白(Calmodulin)、轉膠蛋白(Transgelin)、生長分化因子5(GDF5)、半乳糖凝集素1(Galectin-1)、磷脂酰乙醇胺結合蛋白(Phosphatidylethanolamine Binding Protein,PEBP)、L-乳酸脫氫酶-1(L-lactate dehydrogenase 1,LDH-1)及銅-鋅超氧化物歧化酶(Cu-Zn Superoxide dismutase,SOD[Cu-Zn])。通過免疫印跡法(Western Blot)確認了14種已識別候選蛋白與HSP27蛋白的特異性相互作用(圖10)。
圖9 藏羊卵巢HSP27蛋白及其相互作用蛋白的雙向電泳圖
圖10 HSP27蛋白相互作用蛋白的Western Blot驗證
利用Expasy在線軟件分析目的蛋白的基本性質,結果如表2所示。由表2可知15種目的蛋白等電點為4.09~9.80;除HSP27、HSP10和LDH-1外,親水性數值都為負(屬于疏水蛋白);Bcl-2在205~226個氨基酸中存在跨膜區(qū)域,BMPR-1B在127~148個氨基酸中存在跨膜區(qū)域,其他13種蛋白不存在跨膜區(qū)域;所有蛋白都沒有信號肽。
表2 目的蛋白基本性質分析表
表3表明HSP27、RhoD和Galectin-1主要分布于細胞外基質,HSP10和ERK1主要分布于線粒體,Bcl-2、MTHFR、ANXA2、Transgelin、GDF5、PEBP、LDH-1和SOD[Cu-Zn]主要分布于細胞質,BMPR-1B主要分布于細胞質膜,Calmodulin主要分布于高爾基體。
表3 目的蛋白亞細胞位置的預測分數
表3(續(xù))
以前期篩選的15種目的蛋白的調控基因為基礎,結合NCBI數據庫,利用可視化軟件GENEMANIA構建出互作網絡,見圖11?;赑hysical interactions、Shared protein domains、Predicted、Co-expression和Genetic interactions算法共得到34個節(jié)點的蛋白互作網絡,覆蓋了14種目的蛋白,其中MTHFR未與目的蛋白構成互作網絡?;诨プ鹘Y果設計HSP27基因調節(jié)藏羊卵母細胞成熟和顆粒細胞凋亡的代謝途徑(圖12),在該預測途徑中發(fā)現HSP27基因能激活MAPK、mTOR和TGF-β信號通路,HSP27基因在藏羊卵泡發(fā)育中具有重要作用。
圖11 HSP27基因互作網絡圖
圖12 HSP27基因通路預測圖
綜合以上結果,檢索KEGG數據庫發(fā)現,HSP27蛋白與BMPR-1B、GDF5、ERK1、Calmodulin、Bcl-2和SOD[Cu-Zn]具有強烈交互作用。
本研究將HSP27基因目的片段插入pMD19-T載體后,將其與pcDNA3.1a真核表達質粒載體連接,構建出HSP27基因真核表達體系并制備單克隆抗體。HSP27基因的編碼區(qū)長為618 bp,HSP27蛋白的分子量為22.334 KD,分子式為C999H1539N281O299S2,等電點為6.22。
本研究結果表明藏羊HSP27基因編碼蛋白共含有20種氨基酸,其中含量最高的是絲氨酸,占總氨基酸的9.5%,且該蛋白有18個絲氨酸磷酸化位點,包括Ser9、Ser15、Ser44、Ser48、Ser50、Ser70、Ser74、Ser78、Ser79和Ser82等。夏佳音等[12]研究發(fā)現HSP27蛋白主要有3個磷酸化位點,分別為Ser15、Ser78和Ser82,這與本文的研究結果有著一定的相似性。磷酸化的HSP27蛋白可與F-actin、β-Arrestin2結合,使其具有穩(wěn)定細胞骨架和抑制細胞凋亡的功能,從而達到維護細胞穩(wěn)定和阻止細胞凋亡的作用[13-14]。
本研究發(fā)現HSP27蛋白具有結合HSP27、HSP10、ERK1、Bcl-2、BMPR-1B、MTHFR、RhoD、ANXA2、Calmodulin、Transgelin、GDF5、Galectin-1、PEBP、LDH-1和SOD[Cu-Zn]等15種目的蛋白的能力。GDF5、BMPR-1B通過促進孕酮、雌二醇等的合成使卵巢顆粒細胞加快分化,促進卵泡成熟[15-16];HSP10直接或間接地參與細胞增殖凋亡、生殖等過程[17];RhoD被激活后參與細胞分化、細胞因子的產生和細胞凋亡等多種細胞生理過程[18];Calmodulin是細胞內鈣離子信號的主要受體,在細胞增殖、凋亡等許多方面起著重要的作用[19];Transgelin通過抑制GnRH的分泌間接影響動物的繁殖性能[20];MTHFR基因突變會導致機體細胞的周期調控、DNA復制等生物過程紊亂[21];SOD[Cu-Zn]可抑制卵母細胞的有絲分裂和減數分裂[22]。HSP27蛋白與14種已識別候選蛋白具有特異性相互作用,可調控細胞的增殖、分化和凋亡。
本研究通過預測HSP27基因在藏羊卵母細胞成熟及顆粒細胞調亡中的作用通路,發(fā)現HSP27基因能激活MAPK、mTOR和TGF-β信號通路。通過檢索KEGG數據庫發(fā)現,HSP27蛋白與BMPR-1B、GDF5、ERK1、Calmodulin、Bcl-2和SOD[Cu-Zn]具有強烈交互作用。MAPK信號通路在卵母細胞減數分裂過程起調控作用,參與FSH誘導卵母細胞減數分裂[23]。卵母細胞生發(fā)泡破裂期發(fā)生的時候,磷酸化的HSP27蛋白能激活p38-MAPK通路導致孕酮等蛋白水平上升從而促進卵母細胞發(fā)育成熟[24]。mTOR信號通路是細胞生長的主導信號調節(jié)通路,其調節(jié)卵母細胞的減數分裂成熟等一系列卵巢功能[25]。TGF-β信號通路對卵泡細胞的分化和類固醇激素的合成具有重要的調節(jié)作用。因此,HSP27基因在藏羊卵巢卵泡發(fā)育和卵母細胞成熟過程中具有重要作用。