羅 陽,田唯嘉,,何 芳,浣 成,劉伯承,張佰忠,宋 武,楊 青,易康樂
(1.湖南省畜牧獸醫(yī)研究所,湖南 長沙 410131;2.湖南農(nóng)業(yè)大學 動物醫(yī)學院,湖南 長沙 410125)
肺炎克雷伯菌(Klebsiella pneumoniae)屬于條件性致病菌,在家畜、野生動物、水產(chǎn)動物以及人類的消化道、呼吸道等系統(tǒng)中均能生存,具有分布廣、發(fā)病率高、耐藥性強等特點[1-3]。病原菌控制一直是牛奶生產(chǎn)中的工作重點,而保持奶牛乳房健康是牛奶品質(zhì)安全的關(guān)鍵。肺炎克雷伯菌作為常見的奶牛乳房炎致病性革蘭氏陰性菌之一[4],在臨床上常被誤診為大腸桿菌,并采用抗生素進行治療,由于不同致病菌耐藥性有差異,近年來,肺炎克雷伯菌高毒力菌株以及多重抗藥現(xiàn)象不斷出現(xiàn),對奶牛場造成巨大的經(jīng)濟損失[5-8]。因此,肺炎克雷伯菌導(dǎo)致的奶牛乳房炎及其防治受到越來越多畜牧工作者的關(guān)注。
核酸檢測相對傳統(tǒng)純培養(yǎng)法具有速度快、操作簡單、準確度高等特點,在病原菌臨床鑒定研究中有著廣泛的應(yīng)用。不同種屬微生物有著固有看家基因和保守序列,經(jīng)常作為微生物鑒定的關(guān)鍵靶點。ITS(Internal transcribed spacer)序列是16S-23S rDNA 內(nèi)部轉(zhuǎn)錄間隔層一段基因片段,具有較16S rDNA 和23S rDNA 更高的遺傳變異性和物種特異性。前人利用ITS 序列已經(jīng)成功設(shè)計了阪崎腸桿菌、沙門氏菌和單核李斯特菌等病原體鑒定的引物和探針,解決了食品安全中微生物鑒定的技術(shù)瓶頸[9-11]。UreD基因是肺炎克雷伯菌編碼脲酶的第一啟動子,對脲酶功能蛋白的表達和氮代謝過程發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,而且同種克雷伯菌UreD基因具有高度保守性,與其他物種之間的差異性較大,可認定為肺炎克雷伯菌的特有基因[12-15]。目前,科研工作者針對人源或食品環(huán)境中的肺炎克雷伯菌開展了大量調(diào)查和深入研究[16-18],但針對奶牛乳房炎來源的肺炎克雷伯菌的分析以及發(fā)病機制研究較少。因此,以ITS 序列和UreD基因作為靶基因來鑒定肺炎克雷伯菌引起的奶牛乳房炎,對病原菌快速鑒定體系的構(gòu)建和乳房炎精準治療具有重要意義。
肺炎克雷伯菌、金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌分離自湖南省某規(guī)?;膛鋈榉垦谆疾∨?,并保存于-80 ℃冰箱。
2×FastTaq Premix 購自上海吐露港生物科技有限公司;基因擴增反應(yīng)液(常溫擴增法)購自廣州雙螺旋基因技術(shù)有限公司;BHI 肉湯培養(yǎng)基購自杭州百思生物技術(shù)有限公司;核酸染料、DNA Marker 購自杭州博日科技有限公司;其余試劑均為分析純。
儀器設(shè)備:電子分析天平(AL204,梅特勒-托利多);凝膠成像儀(ZF-288,上海嘉鵬);LAMP動物疫病檢測儀(Dhelix-Q5,廣州雙螺旋);PCR 儀(A200,杭州朗基);核酸電泳儀(DYY-6D,北京六一);超凈工作臺(SW-CJ-2FD,蘇州安泰);高壓滅菌鍋(LDZF-50L-Ⅰ,上海博迅)。
采用三區(qū)劃線法將肺炎克雷伯菌接種于BHI肉湯固體培養(yǎng)基中,在恒溫培養(yǎng)箱中37 ℃過夜培養(yǎng)。挑取單菌落接種于5 mL BHI 肉湯液體培養(yǎng)基中,37 ℃、226 r/min 恒溫搖床培養(yǎng)12~16 h,將獲取的菌液12 000 r/min離心1 min,棄上清,用無菌水反復(fù)洗滌2 次,采用細菌DNA 提取試劑盒提取基因組,-20 ℃保存。
利用肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS 序列,按照YIN 等[19]的方法合成特異性引物,ITS-F:5′-ATTTGAAGAGGTTGCAAACGAT-3′ ,ITS-R:5′-CCGAAGATGTTTCACTTCTGATT-3′,引物由杭州擎科生物科技有限公司合成。PCR 反應(yīng)體系為25 μL:2×Mix 12.5 μL,上游和下游引物各1 μL,細菌DNA 模板2 μL,滅菌超純水8.5 μL;反應(yīng)條件:95 ℃,預(yù)變性5 min;隨后擴增30 個循環(huán)(95 ℃,變性45 s;55 ℃,退火40 s;72 ℃,延伸45 s);最后72 ℃,延伸10 min。反應(yīng)結(jié)束后用1.5%瓊脂糖凝膠進行電泳檢測,PCR 產(chǎn)物送至杭州擎科生物科技有限公司進行測序,結(jié)果與GenBank 數(shù)據(jù)庫比對確認。將實驗室保存的乳房炎型金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌的基因組DNA,按照上述反應(yīng)體系和方法進行引物特異性驗證。
將提取的肺炎克雷伯菌基因組DNA 進行質(zhì)量濃度測定,按照10 倍梯度稀釋成500、50、5、5×10-1、5×10-2、5×10-3、5×10-4、5×10-5、5×10-6、5×10-7ng/μL,按照1.3中的方法和反應(yīng)程序進行敏感性檢測。
參照COLLINS 等[15]的方法,在NCBI 上獲取肺炎克雷伯菌脲酶UreD基因序列(GenBank 登錄號:L07039.1),應(yīng)用在線軟件Primer Explorer V5(http://primerexplorer.jp/e/)進行LAMP 特異性引物設(shè)計,共3組,分別包含內(nèi)引物(UreD-FIP:5′-TCATCACCGCCGACGATGCCGTTTTACCCGGAAGAAG-3′,UreDBIP:5′-TGACAATTAGCGCGCACCTTGCGGTAAAACTTGCTGG-3′)、環(huán)引物(UreD-LF:5′-GAAGCAGATAGAGGTGACAGG-3′,UreD-LB:5′-CTGCCATACGCTGATAACCA-3′)、外引物(UreD-F3:5′-GATCTCCGCTTTCAGCAG-3′,UreD-B3:5′-CAACTGCTGGCGAACTAG-3′),引物由杭州擎科生物科技有限公司合成。
將FIP/BIP 內(nèi)引物、LF/LB 環(huán)引物、F3/B3外引物按照8∶4∶1 配制成工作液,構(gòu)建25 μL 反應(yīng)體系:12.5 μL 反應(yīng)液、0.5 μL 熒光染料、1 μL Bst 聚合酶、2 μL 細 菌DNA 模 板、1 μL 引 物 工 作 液 和8 μL ddH2O,反應(yīng)前加入20 μL 礦物油進行封閉。利用LAMP 儀以1 ℃為反應(yīng)梯度,設(shè)定60~65 ℃6 個反應(yīng)條件進行對比,確定最佳反應(yīng)溫度,反應(yīng)結(jié)束后查看擴增曲線,陽性為S形曲線,陰性則為直線。將實驗室保存的奶牛乳房炎源金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌的基因組DNA,在最佳反應(yīng)溫度下進行引物特異性驗證。
將1.4 中不同質(zhì)量濃度的肺炎克雷伯菌基因組DNA,在最佳反應(yīng)條件下進行敏感性檢測。
肺炎克雷伯菌基因組DNA 經(jīng)特異性引物PCR擴增后,獲得260 bp左右的基因片段(圖1),與肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS 序列相似性為100%。以金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、松鼠葡萄球菌基因組DNA 為模板進行擴增,未能獲得目的基因片段(圖2),說明本研究所用的引物特異性較好,能準確鑒定肺炎克雷伯菌。
當肺炎克雷伯菌DNA 質(zhì)量濃度高于5×10-2ng/μL時,擴增出的條帶明亮清晰;當DNA質(zhì)量濃度為5×10-3ng/μL 時,條帶開始模糊發(fā)暗,穩(wěn)定性不好;質(zhì)量濃度低于5×10-4ng/μL 時,泳道中目的基因條帶難以區(qū)分(圖3)。說明利用PCR 技術(shù)檢測肺炎克雷伯菌ITS 基因所需的最低DNA 質(zhì)量濃度為5×10-2ng/μL。
圖3 肺炎克雷伯菌ITS序列PCR敏感性檢測結(jié)果Fig.3 PCR sensitivity detection results of Klebsiella pneumoniae ITS sequences
通過設(shè)定不同反應(yīng)溫度對LAMP反應(yīng)條件進行優(yōu)化,結(jié)果顯示(表1),60~65 ℃內(nèi)均能擴增肺炎克雷伯菌UreD基因,但擴增時間和CT 值有所差異,反應(yīng)溫度為62 ℃時,LAMP擴增所需時間最短(20 min),在63 ℃時,LAMP 反應(yīng)獲得CT 值最高,按照達到CT值所需時間最短,確定最佳反應(yīng)溫度。因此,確定LAMP法擴增UreD基因的最佳溫度為62 ℃。本試驗設(shè)計的LAMP引物在最適反應(yīng)溫度下無法擴增出乳房炎來源的金黃色葡萄球菌、大腸桿菌和松鼠葡萄球菌,而肺炎克雷伯菌能穩(wěn)定擴增,呈現(xiàn)S 形曲線(圖4),說明LAMP 引物特異性良好,可用于后期試驗。
圖4 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP法擴增結(jié)果Fig4 Amplification results of Klebsiella pneumoniae UreD gene by LAMP
表1 肺炎克雷伯菌UreD基因不同反應(yīng)溫度下LAMP擴增效率對比Tab.1 Comparison of LAMP amplification efficiency of Klebsiella pneumoniae UreD gene at different reaction temperatures
在62 ℃反應(yīng)條件下,對肺炎克雷伯菌500~5×10-7ng/μL 的DNA進行擴增(圖5)。結(jié)果顯示,利用LAMP 技術(shù)均能擴增肺炎克雷伯菌UreD基因,說明以UreD基因為靶基因,LAMP 擴增的靈敏度非常高。
圖5 肺炎克雷伯菌UreD基因LAMP敏感性檢測結(jié)果Fig.5 Sensitivity test results of Klebsiella pneumoniae UreD gene by LAMP
核酸檢測是當前疫情大流行的環(huán)境下重要防控手段之一,快速、準確檢測乳房炎病原菌對臨床診斷、治療以及預(yù)防交叉感染等環(huán)節(jié)具有重要意義。靶基因選擇是成功建立PCR 鑒定體系的關(guān)鍵因素,大量研究將耐藥基因作為肺炎克雷伯菌快速鑒定的靶點。張畢明等[20]利用耐藥基因KPC/CMY-2成功建立了肺炎克雷伯菌熒光定量PCR 檢測體系,并將時間控制在90 min 內(nèi)。汪華學等[21]基于PCR技術(shù)建立了基質(zhì)輔助激光解析/電離飛行時間質(zhì)譜(MALDI-TOF MS)鑒定方法,對攜帶blaKPC-2基因型的肺炎克雷伯菌能實現(xiàn)快速鑒定,準確率高達92.90%。此外,還有針對高黏性表型(uge、ureA、allS、cf29a等)、莢膜血清型(K1、K2、K5、K20 等)肺炎克雷伯菌致病決定基因以及其他功能性蛋白質(zhì)編碼基因(iucA、entB、fimH等)建立的PCR 鑒定體系[22-24]。本研究中,利用肺炎克雷伯菌16S-23S rDNA ITS序列,可在核酸質(zhì)量濃度為5×10-2ng/μL的環(huán)境下實現(xiàn)穩(wěn)定擴增。YIN 等[19]利用ITS 序列也成功建立了嬰幼兒奶粉中肺炎克雷伯菌的快速鑒定方法,利用此方法從奶粉中檢測出肺炎克雷伯菌濃度可低至0.015 cfu/g,具備較高的特異性和靈敏度。
LAMP 技術(shù)是一種新型核酸快速擴增方法,由于等溫反應(yīng)特性,在簡易環(huán)境下利用恒溫水浴鍋也能完成檢測,在采樣現(xiàn)場和移動性實驗室中被廣泛應(yīng)用。LAMP 技術(shù)鑒定肺炎克雷伯菌同樣需要選擇合適的靶基因,纖維二糖PTS家族CelB基因[25]、碳青霉烯酶KPC 編碼基因[26]、莢膜多糖合成調(diào)控基因rcsA[27]、脲酶基因ureR_1[28]等相繼被選為肺炎克雷伯菌快速鑒定的靶基因。前人研究表明,LAMP 技術(shù)鑒定肺炎克雷伯菌的靈敏度普遍為PCR 技術(shù)的10~1 000倍[27,29-30]。在本研究中,以肺炎克雷伯菌脲酶UreD基因為靶點實現(xiàn)了LAMP 技術(shù)的穩(wěn)定擴增和快速鑒定,且在核酸質(zhì)量濃度為5×10-7ng/μL 的條件下,依然能夠成功鑒定出肺炎克雷伯菌UreD基因,檢測靈敏度是普通PCR 方法的105倍,在奶牛乳房炎致病菌臨床鑒定上具有一定的應(yīng)用前景。
綜上,本研究成功構(gòu)建了PCR 和LAMP 技術(shù)快速鑒定奶牛乳房炎來源肺炎克雷伯菌的方法,2 種方法操作簡單、靈敏度高、特異性強,適合在實驗室和養(yǎng)殖現(xiàn)場推廣應(yīng)用。