摘要:2C型蛋白磷酸酶在細(xì)胞信號傳導(dǎo)和植物生長發(fā)育中發(fā)揮著至關(guān)重要的作用,有關(guān)甘藍(lán)型油菜PP2C家族的系統(tǒng)分析尚未見諸報(bào)道。本研究對BnaC03g56680D基因進(jìn)行了全面分析。BnaC03g56680D基因的cDNA序列全長423 bp,編碼140個(gè)氨基酸,包含PP2C-like結(jié)構(gòu)域,其相對分子質(zhì)量為15 765.96 u,理論等電點(diǎn)為4.96,屬于穩(wěn)定的親水性蛋白。其二級結(jié)構(gòu)主要呈現(xiàn)為無規(guī)則卷曲,不含有跨膜結(jié)構(gòu)域與信號肽,亞細(xì)胞定位于細(xì)胞核,屬于非分泌蛋白。該基因啟動子中含激素誘導(dǎo)相關(guān)元件與干旱脅迫響應(yīng)元件。此外,ABA、PEG、甘露醇的高水平誘導(dǎo)均導(dǎo)致BnaC03g56680D的表達(dá)上調(diào),說明其可能在植物的抗逆過程中發(fā)揮重要功能。本研究不僅有助于解析2C型蛋白磷酸酶在植物生物學(xué)中的作用機(jī)制,還為未來基因工程和植物育種提供了潛在的目標(biāo)和指導(dǎo)。
關(guān)鍵詞:甘藍(lán)型油菜;生物信息學(xué);基因克??;PP2C;BnaC03g56680D
中圖分類號:S565.401""文獻(xiàn)標(biāo)志碼:A
文章編號:1002-1302(2024)22-0038-06
油菜是湖南地區(qū)的主要油料作物,其種植面積和產(chǎn)量在我國均居領(lǐng)先地位[1]。國家統(tǒng)計(jì)年鑒顯示,2021年我國油菜種植面積為699.2萬hm2,占自產(chǎn)油料作物面積53.36%,是油料作物之首。油菜根據(jù)其植物學(xué)和生物學(xué)特性,分為甘藍(lán)型油菜(Brassica napus L.)、白菜型油菜(Brassia campestris L.)和芥菜型油菜(Brassica juncea L.)3類[2]。其中,甘藍(lán)型油菜作為我國重要的油料作物之一,具有極高的經(jīng)濟(jì)價(jià)值[3]。然而,隨著世界氣候與生態(tài)環(huán)境日益惡化,保護(hù)甘藍(lán)型油菜的生存環(huán)境變得艱難,特別是在干旱和半干旱地區(qū),干旱和鹽堿化對其影響最為顯著[4]。同時(shí),由于我國人口眾多,對菜籽油的需求不斷增加,導(dǎo)致我國菜籽油每年仍需進(jìn)口[5]。因此,提高甘藍(lán)型油菜產(chǎn)量對于確保油料作物供應(yīng)和促進(jìn)可持續(xù)農(nóng)業(yè)發(fā)展至關(guān)重要。
2C型蛋白磷酸酶(protein phosphatase 2Cs,PP2Cs),是一類依賴于Mg2+/Mn2+的絲氨酸/蘇氨酸蛋白磷酸酶,能夠去除蛋白質(zhì)的磷酸基團(tuán),動態(tài)調(diào)控蛋白磷酸化狀態(tài),在植物生長、發(fā)育以及對非生物脅迫響應(yīng)中發(fā)揮關(guān)鍵作用[6-9]。PP2C還參與多種植物信號通路的調(diào)控,包括脫落酸(ABA)信號通路、植物激素赤霉素(GA)信號通路以及蛋白激酶級聯(lián)反應(yīng)等,這些信號通路對植物的生長和發(fā)育至關(guān)重要[10-12]。多種植物中已鑒定出PP2C基因家族成員,如黃瓜(56個(gè))、林地草莓(62個(gè))、擬南芥(80個(gè)),蒺藜苜蓿(94個(gè)),玉米(103個(gè))[13-17]。多項(xiàng)研究表明,PP2C在植物的抗逆性中發(fā)揮著關(guān)鍵作用,尤其是在干旱和鹽堿等不利環(huán)境下。例如,小麥中的TaPP2C158可以直接與TaSnRK1.1相互作用并使其去磷酸化,從而使TaSnRK1.1-TaAREB3信號通路失活,阻斷干旱脅迫響應(yīng)[18]。棉花的GhDRP1基因可能通過調(diào)節(jié)ABA信號通路和類黃酮生物合成途徑參與干旱脅迫響應(yīng)[19]。在水稻中,OsPP65通過調(diào)節(jié)茉莉酸(JA)和脫落酸(ABA)信號通路以及調(diào)節(jié)棉子糖家族低聚糖代謝途徑來負(fù)調(diào)控滲透脅迫和鹽脅迫耐受性[20]。另外,白樺BpPP2C1過表達(dá)植株可能通過減少氧應(yīng)激損傷,表現(xiàn)出明顯的耐鹽性[21]。
本研究成功從甘藍(lán)型油菜XY15中克隆得到BnaC03g56680D基因的完整cDNA序列。通過生物信息學(xué)方法,對該基因編碼蛋白的氨基酸組成、理化性質(zhì)、親疏水性、亞細(xì)胞定位以及三級結(jié)構(gòu)進(jìn)行分析和預(yù)測。這項(xiàng)研究不僅對培育抗逆新品種具有重要意義,同時(shí)也可以為揭示甘藍(lán)型油菜抗逆基因的功能機(jī)制提供有力支持。
1"材料與方法
1.1"材料
本研究于2022年在湖南農(nóng)業(yè)大學(xué)作物表觀遺傳調(diào)控與發(fā)育湖南省重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室完成。供試材料甘藍(lán)型油菜湘油15號(XY15),常規(guī)種植于該實(shí)驗(yàn)室。
1.2"引物設(shè)計(jì)與合成
根據(jù)甘藍(lán)型油菜數(shù)據(jù)庫Genoscope網(wǎng)站(https://www.genoscope.cns.fr/brassicanapus/)設(shè)計(jì)基因克隆及實(shí)時(shí)熒光定量PCR引物(表1),由北京擎科生物科技股份有限公司合成。
1.3"甘藍(lán)型油菜RNA的提取
使用Trizol法提取甘藍(lán)型油菜XY15葉片組織的RNA。產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳進(jìn)行檢驗(yàn),并用BioTek Epoch酶標(biāo)儀測定其濃度。質(zhì)量較好的產(chǎn)物用于后續(xù)目的基因擴(kuò)增及反轉(zhuǎn)錄。
1.4""BnaC03g56680D基因的克隆及載體構(gòu)建
甘藍(lán)型油菜湘油15號于光照氣候培養(yǎng)箱中培育,直至長出真葉,生長條件為24 ℃,光照16 h,黑暗 8 h。取適量真葉葉片,利用Trizol提取總RNA。使用購自諾唯贊公司的試劑盒HiScriptⅡ Q RT SuperMix for qPCR (+gDNA wiper)進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,得到BnaC03g56680D基因的cDNA。在Snap Gene軟件中進(jìn)行引物設(shè)計(jì),分別在BnaC03g56680D的正向引物5′端和反向引物的3′端添加載體pCAMBIA1300-eGFP的同源臂。以cDNA為模板,采用15 μL的PCR反應(yīng)體系進(jìn)行擴(kuò)增,PCR擴(kuò)增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,用HiPure Gel Pure DNA Mini Kit (D2111-02)試劑盒回收純化目的片段,利用同源重組法將目的片段構(gòu)建至pCAMBIA1300-eGFP載體,轉(zhuǎn)化至大腸桿菌DH5α中,將菌液涂布于含有卡那霉素的LB平板中,37 ℃過夜培養(yǎng)。挑取單克隆進(jìn)行PCR檢測,選取陽性單克隆至含有卡那霉素的LB液體培養(yǎng)基中,37 ℃過夜培養(yǎng),提取質(zhì)粒后送至武漢金開瑞生物工程有限公司測序。
1.5"實(shí)時(shí)熒光定量PCR
為了研究BnaC03g56680D的表達(dá)模式,分別用200 mmol/L NaCl、200 g/L聚乙二醇(PEG)6000、200 μmol/L 甘露醇、100 μmol/L ABA和 100 μmol/L 茉莉酸甲酯(MeJA)處理正常生長3周齡的甘藍(lán)型油菜XY15幼苗。在0、3、6、9、12 h采集幼苗的葉片組織作為樣品。以油菜葉片cDNA為模板,持家基因Actin作為內(nèi)參,以克隆得到的BnaC03g56680D序列為參考,使用Primer Premier 5.0軟件進(jìn)行qPCR引物設(shè)計(jì),引物序列見表1。試驗(yàn)設(shè)置3次生物學(xué)重復(fù)和3次技術(shù)重復(fù)。利用2-ΔΔCT法分析試驗(yàn)數(shù)據(jù),計(jì)算出基因的相對表達(dá)量[22]。使用Graphpad軟件作圖,以0 h的表達(dá)量作為對照,使用單因素方差檢驗(yàn)進(jìn)行顯著性差異分析。
1.6"BnaC03g56680D亞細(xì)胞定位分析
構(gòu)建pCAMBIA1300-35S::BnaC03g56680D-eGFP載體完成后,采用瞬時(shí)表達(dá)法,將含有pCAMBIA1300-35S::BnaC03g56680D-eGFP的重組質(zhì)粒和pCAMBIA1300-eGFP質(zhì)粒的GV3101農(nóng)桿菌注射至正常生長4周齡的本氏煙草的下表皮[23]。煙草暗培養(yǎng)36 h后,以含有35S::GFP質(zhì)粒的本氏煙草葉片為對照,并結(jié)合細(xì)胞核染料DAPI在熒光顯微鏡下觀察亞細(xì)胞定位情況。
1.7""BnaC03g56680D基因的生物信息學(xué)分析
通過ProtParam(https://web.expasy.org/protparam/)對蛋白理化性質(zhì)進(jìn)行分析;并使用InterPro(https://www.ebi.ac.uk/interpro/)工具分析蛋白結(jié)構(gòu)域;采用TMHMM Server v.2.0(https://services.healthtech.dtu.dk/services/TMHMM-2.0/)分析編碼氨基酸的跨膜結(jié)構(gòu)域;利用SignalP 5.0 Server進(jìn)行信號肽預(yù)測;用在線工具Cell-PLoc 2.0(http://www.csbio.sjtu.edu.cn/bioinf/Cell-PLoc-2/)分析亞細(xì)胞定位情況;通過SPOMA及 SWISS-MODEL預(yù)測蛋白質(zhì)的二級結(jié)構(gòu)和三級結(jié)構(gòu)。使用在線工具PlantCare(https://bioinformatics.psb.ugent.be/webtools/plantcare/html/)分析油菜BnaC03g56680D基因啟動子區(qū)域的順式作用元件。
2"結(jié)果與分析
2.1"BnaC03g56680D基因的克隆以及載體構(gòu)建
在甘藍(lán)型油菜數(shù)據(jù)庫Genoscope中獲得BnaC03g56680D基因的cDNA序列全長為423 bp,共編碼140個(gè)氨基酸。經(jīng)RNA提取及反轉(zhuǎn)錄后,獲得帶有同源臂的目的片段。利用同源重組酶進(jìn)行同源重組,將目的片段構(gòu)建到pCAMBIA1300-eGFP載體中,隨后進(jìn)行產(chǎn)物檢測和測序。測序結(jié)果與數(shù)據(jù)庫中的序列完全一致,未發(fā)現(xiàn)任何突變,由此得到了完整的重組質(zhì)粒。
2.2"BnaC03g56680D基因生物信息學(xué)分析
2.2.1"理化性質(zhì)、亞細(xì)胞定位分析
BnaC03g56680D蛋白化學(xué)式為C690H1 084N184O216S11,由140個(gè)氨基酸組成。其中纈氨酸(Val)含量最高,占總氨基酸比例的10.0%(圖1)。該蛋白的相對分子質(zhì)量為 15 765.96 u。理論等電點(diǎn)為4.96,偏酸性。脂肪系數(shù)為83.43,不穩(wěn)定系數(shù)為18.65,說明該蛋白在體外能夠穩(wěn)定存在。ProtScale預(yù)測為親水性蛋白(圖2)。亞細(xì)胞定位結(jié)果顯示,BnaC03g56680D主要分布于細(xì)胞核中。
2.2.2"BnaC03g56680D蛋白結(jié)構(gòu)分析
分析BnaC03g56680D蛋白質(zhì)的結(jié)構(gòu)域,發(fā)現(xiàn)其保守結(jié)構(gòu)域第2~134位的氨基酸屬于PPM-type phosphatase-like超家族(圖3-A)。第5~53位及第88~125位為PP2C-like超家族。通過SOPMA在線工具對BnaC03g56680D的二級結(jié)構(gòu)進(jìn)行預(yù)測,結(jié)果顯示,其二級結(jié)構(gòu)組成豐富,包括51.43%的無規(guī)則卷曲、30.71%的α-螺旋、5.71%的β-轉(zhuǎn)角和12.14%的延伸鏈(圖3-B)。使用SWISS-MODEL進(jìn)行蛋白質(zhì)3級結(jié)構(gòu)的預(yù)測和模型構(gòu)建(圖3-C),全球模型質(zhì)量估計(jì)GMQE為0.83,表明模型具有高可信度。細(xì)胞膜或質(zhì)膜上發(fā)揮作用的蛋白質(zhì)通常包含跨膜區(qū)域,這些區(qū)域連接著細(xì)胞內(nèi)外環(huán)境并在維持蛋白質(zhì)位置和穩(wěn)定性方面發(fā)揮關(guān)鍵作用。此外,部分跨膜區(qū)域還具有信號傳遞功能[24]。結(jié)果表明,BnaC03g56680D缺乏跨膜結(jié)構(gòu)域,不屬于膜蛋白。通過SignalP 5.0 Server在線工具進(jìn)行信號肽預(yù)測,BnaC03g56680D不包含信號肽,因此可歸類為非分泌蛋白。
2.2.3"啟動子順式作用元件分析
對起始密碼子上游2 000 bp啟動子區(qū)域進(jìn)行分析,結(jié)果(圖4)表明,該啟動子不僅包含了真核生物啟動子核心元件TATA-box和CAAT-box,還檢測到其他10種元件,其中包括光響應(yīng)型、激素響應(yīng)型和逆境響應(yīng)型元件。值得注意的是,其中ARE順式作用調(diào)節(jié)元件數(shù)量最多,表明其在無氧誘導(dǎo)調(diào)節(jié)中起著重要作用。相比之下,逆境響應(yīng)型元件較少,僅包括1個(gè)MBS元件,可能與干旱脅迫有關(guān)。綜合分析結(jié)果表明,該啟動子的元件種類豐富,具備積極響應(yīng)激素誘導(dǎo)和逆境脅迫的潛力。
2.3"實(shí)時(shí)熒光定量PCR表達(dá)分析
利用RT-qPCR技術(shù)分析了BnaC03g56680D在各種非生物脅迫條件下的相對表達(dá)水平,結(jié)果(圖
5)顯示,在ABA誘導(dǎo)下,BnaC03g56680D的表達(dá)量顯著增加,在PEG和甘露醇模擬的干旱脅迫條件下,其表達(dá)量也有所上升。相比之下,在鹽脅迫條件下,其表達(dá)水平相對較低,而在MeJA誘導(dǎo)下,表達(dá)水平顯著下降。這種降低可能是因?yàn)樵搯幼尤狈⑴c茉莉酸甲酯反應(yīng)的順式作用元件。然而,在不同激素誘導(dǎo)和干旱脅迫條件下,BnaC03g56680D都能夠在短時(shí)間內(nèi)迅速作出反應(yīng),這與啟動子順式作用元件分析的結(jié)果一致。
2.4"亞細(xì)胞定位分析
根據(jù)在線預(yù)測結(jié)果,BnaC03g56680D位于細(xì)胞核中。利用煙草葉片瞬時(shí)表達(dá)法將已驗(yàn)證的35S::pCAMBIA-1300-eGFP 載體通過農(nóng)桿菌注射于本氏煙草葉片, 暗培養(yǎng)36 h后撕下葉片下表皮, 并在熒光顯微鏡下結(jié)合DAPI染色進(jìn)行觀察。
pCAMBIA-1300-eGFP空載體中熒光信號同時(shí)在細(xì)胞核和細(xì)胞質(zhì)中可見,而BnaC03g56680D-GFP融合蛋白的熒光信號僅在細(xì)胞核中觀察到(圖6)。結(jié)合DAPI染色的結(jié)果表明,BnaC03g56680D蛋白在細(xì)胞核內(nèi)執(zhí)行特定功能。試驗(yàn)結(jié)果與初步預(yù)測相符。
3"討論與結(jié)論
盡管甘藍(lán)型油菜擁有高產(chǎn)和抗倒伏的特性, 但隨著人口的增加和環(huán)境條件的惡化,油菜籽總產(chǎn)量大大低于谷類,難以滿足市場需求[25]。在面對非生物脅迫時(shí),油菜的生物量、根系生長、葉片數(shù)、比葉面積、光合作用和葉綠素含量明顯減少。特別是在開花期受到脅迫時(shí),可能導(dǎo)致開花時(shí)間提前,降低種子的油脂和脂肪酸含量,嚴(yán)重制約了油菜籽的生長和發(fā)育,從而最終影響了產(chǎn)量和品質(zhì),對全球食品安全構(gòu)成威脅[26]。PP2C基因廣泛分布于不同植物物種中,其家族成員通過調(diào)控多種信號通路及細(xì)胞內(nèi)外離子平衡來響應(yīng)不同的逆境脅迫[27]。在常見的擬南芥、水稻、小麥等植物中研究表明,PP2C常作為負(fù)調(diào)控因子參與調(diào)節(jié)干旱、低溫、鹽等脅迫[28-30]。BnaC03g56680D編碼的蛋白含有PP2C-like結(jié)構(gòu)域,且位于細(xì)胞核內(nèi)。研究表明,核內(nèi)蛋白可以通過調(diào)控蛋白磷酸化狀態(tài)或與其他蛋白質(zhì)互作,形成蛋白質(zhì)復(fù)合物,從而調(diào)控基因表達(dá)和信號轉(zhuǎn)導(dǎo),影響細(xì)胞核內(nèi)的生物學(xué)過程[31]。因此,BnaC03g56680D可能具有類似于PP2C的功能,通過去磷酸化作用調(diào)控下游靶蛋白的活性,從而影響植物的生長和發(fā)育。此外,基于啟動子順式作用元件及多種脅迫下的相對表達(dá)水平分析,BnaC03g56680D可能還參與植物對逆境脅迫的響應(yīng)。在干旱脅迫下,它可能通過調(diào)控ABA信號通路,影響植物的耐受性。本研究結(jié)果為深入研究甘藍(lán)型油菜BnaC03g56680D基因表達(dá)調(diào)控及抗逆機(jī)制提供了堅(jiān)實(shí)的理論基礎(chǔ)。
參考文獻(xiàn):
[1]鐘志平,劉"俊,劉文祥. 我國油菜生產(chǎn)現(xiàn)狀、效益及提升策略[J]. 湖南農(nóng)業(yè)科學(xué),2023(4):94-97.
[2]星曉蓉,柳海東. 甘藍(lán)型油菜遺傳圖譜構(gòu)建及產(chǎn)量相關(guān)性狀QTL定位研究進(jìn)展[J]. 青海大學(xué)學(xué)報(bào),2019,37(5):1-8.
[3]崔"成,鄭本川,柴"靚,等. 中抗菌核病高產(chǎn)高油油蔬兩用油菜新品種川油81的選育[J]. 中國種業(yè),2023(10):161-163.
[4]Zhang X K,Lu G Y,Long W H,et al. Recent progress in drought and salt tolerance studies in Brassica crops[J]. Breeding Science,2014,64(1):60-73.
[5]王漢中. 我國油菜產(chǎn)業(yè)發(fā)展的歷史回顧與展望[J]. 中國油料作物學(xué)報(bào),2010,32(2):300-302.
[6]Stern A,Privman E,Rasis M,et al. Evolution of the metazoan protein phosphatase 2C superfamily[J]. Journal of Molecular Evolution,2007,64(1):61-70.
[7]Bhaskara G B,Wong M M,Verslues P E. The flip side of phospho-signalling:regulation of protein dephosphorylation and the protein phosphatase 2Cs[J]. Plant,Cell amp; Environment,2019,42(10):2913-2930.
[8]Kamada R,Kudoh F,Ito S,et al. Metal-dependent Ser/Thr protein phosphatase PPM family:evolution,structures,diseases and inhibitors[J]. Pharmacology amp; Therapeutics,2020,215:107622.
[9]Lim C W,Baek W,Jung J,et al. Function of ABA in stomatal defense against biotic and drought stresses[J]. International Journal of Molecular Sciences,2015,16(7):15251-15270.
[10]Cutler S R,Rodriguez P L,F(xiàn)inkelstein R R,et al. Abscisic acid:emergence of a core signaling network[J]. Annual Review of Plant Biology,2010,61:651-679.
[11]Amir Hossain M,Ahn C H,Lee I S,et al. Isolation of a novel protein phosphatase 2C in rice and its response to gibberellin[J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,2018,503(3):1987-1992.
[12]Ayatollahi Z,Kazanaviciute V,Shubchynskyy V,et al. Dual control of MAPK activities by AP2C1 and MKP1 MAPK phosphatases regulates defence responses in Arabidopsis[J]. Journal of Experimental Botany,2022,73(8):2369-2384.
[13]Zhang G B,Zhang Z Y,Luo S L,et al. Genome-wide identification and expression analysis of the cucumber PP2C gene family[J]. BMC Genomics,2022,23(1):563.
[14]Haider M S,Khan N,Pervaiz T,et al. Genome-wide identification,evolution,and molecular characterization of the PP2C gene family in woodland strawberry[J]. Gene,2019,702:27-35.
[15]Xue T T,Wang D,Zhang S Z,et al. Genome-wide and expression analysis of protein phosphatase 2C in rice and Arabidopsis[J]. BMC Genomics,2008,9:550.
[16]Yang Q,Liu K,Niu X C,et al. Genome-wide identification of PP2C genes and their expression profiling in response to drought and cold stresses in Medicago truncatula[J]. Scientific Reports,2018,8:12841.
[17]Wu H,Zhu L,Cai G P,et al. Genome-wide identification and characterization of the PP2C family from Zea mays and its role in long-distance signaling[J]. Plants,2023,12(17):3153.
[18]Wang J Y,Li C N,Li L,et al. DIW1 encoding a clade I PP2C phosphatase negatively regulates drought tolerance by de-phosphorylating TaSnRK1.1 in wheat[J]. Journal of Integrative Plant Biology,2023,65(8):1918-1936.
[19]Chen Y,Zhang J B,Wei N,et al. A type-2C protein phosphatase (GhDRP1) participates in cotton (Gossypium hirsutum) response to drought stress[J]. Plant Molecular Biology,2021,107(6):499-517.
[20]Liu Q,Ding J R,Huang W J,et al. OsPP65 negatively regulates osmotic and salt stress responses through regulating phytohormone and raffinose family oligosaccharide metabolic pathways in rice[J]. Rice,2022,15(1):34.
[21]Xing B Y,Gu C R,Zhang T X,et al. Functional study of BpPP2C1 revealed its role in salt stress in Betula platyphylla[J]. Frontiers in Plant Science,2021,11:617635.
[22]Luo D F,Mei D S,Wei W L,et al. Identification and phylogenetic analysis of the R2R3-MYB subfamily in Brassica napus[J]. Plants,2023,12(4):886.
[23]Wang Q,Guo C,Li Z Y,et al. Potato NAC transcription factor StNAC053 enhances salt and drought tolerance in transgenic Arabidopsis[J]. International Journal of Molecular Sciences,2021,22(5):2568.
[24]尹桂芳,段"迎,楊曉琳,等. 苦蕎FtC4H基因克隆與生物信息學(xué)分析[J]. 作物雜志,2022(1):77-83.
[25]Zheng M,Terzaghi W,Wang H Z,et al. Integrated strategies for increasing rapeseed yield[J]. Trends in Plant Science,2022,27(8):742-745.
[26]Lohani N,Jain D,Singh M B,et al. Engineering multiple abiotic stress tolerance in canola,Brassica napus[J]. Frontiers in Plant Science,2020,11:3.
[27]Xie W X,Liu S,Gao H L,et al. PP2C.D phosphatase SAL1 positively regulates aluminum resistance via restriction of aluminum uptake in rice[J]. Plant Physiology,2023,192(2):1498-1516.
[28]Sugimoto H,Kondo S,Tanaka T,et al. Overexpression of a novel Arabidopsis PP2C isoform,AtPP2CF1,enhances plant biomass production by increasing inflorescence stem growth[J]. Journal of Experimental Botany,2014,65(18):5385-5400.
[29]Han S,Lee J Y,Lee Y,et al. Comprehensive survey of the VxGΦL motif of PP2Cs from Oryza sativa reveals the critical role of the fourth position in regulation of ABA responsiveness[J]. Plant Molecular Biology,2019,101(4):455-469.
[30]Yu X F,Han J P,Li L,et al. Wheat PP2C-a10 regulates seed germination and drought tolerance in transgenic Arabidopsis[J]. Plant Cell Reports,2020,39(5):635-651.
[31]Jung C,Nguyen N H,Cheong J J. Transcriptional regulation of protein phosphatase 2C genes to modulate abscisic acid signaling[J]. International Journal of Molecular Sciences,2020,21(24):9517.