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      飼料級大豆磷脂中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇的檢測研究

      2010-04-28 08:53:36上海市農(nóng)科院農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所楊海鋒趙志輝顧賽紅邢增濤
      中國飼料 2010年6期
      關(guān)鍵詞:大豆磷脂冰乙酸乙醇胺

      上海市農(nóng)科院農(nóng)產(chǎn)品質(zhì)量標(biāo)準(zhǔn)與檢測技術(shù)研究所 楊海鋒 趙志輝 顧賽紅 邢增濤

      磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇是大豆磷脂中最重要的活性成分,其所占比重的高低,是衡量大豆磷脂品質(zhì)優(yōu)劣的一個重要標(biāo)準(zhǔn)(章慧芳和陸婭,2007)。隨著大豆磷脂市場需求的不斷擴(kuò)大,經(jīng)常發(fā)生大豆磷脂產(chǎn)品的貿(mào)易糾紛。廣大生產(chǎn)企業(yè)和用戶都希望對大豆磷脂中的有效成分磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇進(jìn)行檢驗和檢測。國內(nèi)外研究報道的大豆磷脂的檢測方法主要是定磷法、薄層色譜法(TLC)、高效液相色譜法(HPLC)等(張穎穎等,2006;卜延剛等,2004)。定磷法需要消化、顯色等過程,操作繁瑣、耗時。薄層色譜法干擾因素多,靈敏度不高,顯色后定量誤差較大而主要用于定性分析。高效色相色譜法以其高速、高效、高靈敏度、系統(tǒng)封閉避免不飽和鍵氧化等優(yōu)點,受到普遍關(guān)注(董曉渭等,2000;Mounts和Nash,1990)。然而由于研究者應(yīng)用的前處理技術(shù)、檢測方法都不相同(張德權(quán)等,2006;Rombaut等 ,2005;Singleton 和 Stikeleather,1995;Becart等,1990),即使都使用HPLC技術(shù),但分離柱、填料、流動相也存在差異,缺乏一個統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)。而不同的前處理方法和檢測技術(shù)會對檢測結(jié)果產(chǎn)生一定的影響,因此迫切需要建立統(tǒng)一的飼料級大豆磷脂中主成分的檢測方法。本研究探討了應(yīng)用高效液相色譜法同時檢測飼料添加劑大豆磷脂中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇的可行性。

      1 材料與方法

      1.1 實驗材料 實驗中所用的大豆磷脂產(chǎn)品來自國內(nèi)6個主要大豆磷脂廠商的6個不同批次的產(chǎn)品,因此所選樣品具有廣泛的代表性。

      1.2 試劑及儀器 正己烷:色譜純;異丙醇:色譜純;冰乙酸:色譜純;1%冰乙酸溶液:1 mL冰乙酸用色譜純水定容到100 mL;磷脂酰膽堿(PC):標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),純度 ≥ 99%;磷脂酰乙醇胺(PE):標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),純度 ≥ 99%;磷脂酰肌醇(PI):標(biāo)準(zhǔn)物質(zhì),純度≥98%。高效液相色譜儀:配有四聯(lián)泵、柱溫箱、紫外檢測器(206 nm)。所用的磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇標(biāo)樣來源應(yīng)與所測定的樣品一致,如測定的樣品為大豆磷脂時,上述三種標(biāo)樣應(yīng)來源于大豆。

      1.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制 精確稱取約20 mg磷脂酰膽堿、20 mg磷脂酰乙醇胺與10 mg磷脂酰肌醇,用正己烷∶異丙醇∶1%冰乙酸溶液為 8∶8∶1(V∶V∶V)混合溶液溶解并定容于10 mL容量瓶中搖勻,溶液中 PC、PE、PI濃度分別為 2、2 mg/mL 和 1 mg/mL。準(zhǔn)確吸取此溶液 0.25、1.25、2.50、3.75 mL 和 5.0 mL,并用正己烷∶異丙醇∶1%冰乙酸溶液為 8∶8∶1(V∶V∶V)混合溶液定容至5 mL,使溶液中磷脂酰膽堿的最終濃度為0.1~2.0 mg/mL、磷脂酰乙醇胺的最終濃度為0.1~2.0 mg/mL、磷脂酰肌醇的最終濃度為0.05~1.0 mg/mL。過0.45 μm孔徑濾膜。低于-16℃保存?zhèn)溆?,保存時注意容器口的密封。如標(biāo)樣為三氯甲烷或甲醇溶解的溶液,必須將其中的溶液用氮氣吹干,再用流動相溶解定容。

      1.4 試樣制備 依據(jù)樣品中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇含量,稱取0.1~0.5 g(精確到0.0001 g)試樣,用正己烷∶異丙醇∶1%冰乙酸溶液為 8∶8∶1(V∶V∶V)混合溶液溶解并定容于 10 mL容量瓶中。于渦旋振蕩器上渦旋振蕩,混勻后,置超聲波清洗器中超聲30 min(期間每10 min取出混勻一次)。取少量試液于離心管中,以3600 r/min離心分離15 min,取2 mL上清液過0.45 μm孔徑濾膜,制得試樣待測液進(jìn)行色譜測定。低于-16℃保存?zhèn)溆茫4鏁r注意容器口密封。

      1.5 液相色譜條件 硅膠柱:硅膠柱,長250 mm,內(nèi)徑 4.6 mm,粒度 5 μm,或相當(dāng)者;柱溫:30 ℃;流動相:正己烷∶異丙醇∶冰乙酸溶液為 8∶8∶1(V∶V∶V);流速:1.0 mL/min;檢測波長:206 nm;進(jìn)樣體積:10 μL。

      1.6 液相色譜測定 用高效液相色譜儀分別對標(biāo)準(zhǔn)品溶液和樣品溶液進(jìn)行檢測,測定其色譜峰面積的響應(yīng)值,進(jìn)行定量計算。對同一樣品至少進(jìn)行兩次測定。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 方法重復(fù)性 結(jié)果見表1。由表1可見,本方法中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇的測定結(jié)果的相對標(biāo)準(zhǔn)偏差均小于4%,因此應(yīng)用本檢測方法測定大豆磷脂中三種主成分含量有較好的精密度。

      2.2 回收率 結(jié)果見表2。

      對大豆磷脂樣品進(jìn)行添加回收試驗,稱取約100 mg大豆磷脂樣品,用正己烷∶異丙醇∶1%冰乙酸溶液為 8∶8∶1(V∶V∶V)混合溶液溶解并定容至10 mL,稱取10 mg磷脂酰膽堿、10 mg磷脂酰乙醇胺、5 mg磷脂酰肌醇標(biāo)樣,用混合流動相溶液溶解并定容于5 mL容量瓶中。分別取1 mL樣品溶液和1 mL的大豆磷脂標(biāo)樣溶液于5 mL容量瓶中定容,過0.45 μm膜,裝入樣品瓶內(nèi),待測,回收率計算公式如下:

      表1 方法重復(fù)性試驗

      表2 樣品的回收率

      回收率=(測定值-試樣中大豆磷脂含量)/添加大豆磷脂含量。

      表2的測定結(jié)果表明,此方法中飼料級大豆磷脂三種主成分含量的回收率均在96%~103%,因此應(yīng)用本檢測方法測定大豆磷脂中三種主成分含量有較好的準(zhǔn)確度。

      2.3 磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇同時測定 選用國內(nèi)6個不同廠家生產(chǎn)的大豆磷脂產(chǎn)品,測定其磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇含量,三者總和見表3?!睹绹醒氪蠖构玖字改稀分写蠖沽字牧字D憠A、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇含量分別約為16%、14%和9%,本試驗結(jié)果與其基本相符。

      表3 不同產(chǎn)品中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺、磷脂酰肌醇含量總和的檢測比較 %

      3 結(jié)論

      本實驗中所采用的飼料級大豆磷脂中磷脂酰膽堿、磷脂酰乙醇胺和磷脂酰肌醇的高效液相色譜檢測方法,檢測結(jié)果穩(wěn)定、精確、可靠、可操作性強(qiáng),為國內(nèi)飼料添加劑大豆磷脂產(chǎn)品中主要活性成分檢測提供很好借鑒。

      [1]卜延剛,占春瑞,彭建華.保健食品卵磷脂膠囊中卵磷脂含量測定方法的研究[J].江西化工,2004,3:156 ~160.

      [2]董曉渭,馮學(xué)偉,李桂貞.高效液相法測定大豆磷脂中的磷脂酰膽堿[J].華東理工大學(xué)學(xué)院,2000,26(3):315 ~317.

      [3]張德權(quán),陳衛(wèi)濤,張柏林.高效液相色譜法測定大豆中卵磷脂的含量[J].核農(nóng)學(xué)報,2006,20(5):414 ~416.

      [4]張穎穎,楊亦文,吳彩娟,等.磷脂分析檢測方法的研究進(jìn)展[J].中國醫(yī)藥工業(yè)雜志,2006,37(1):58 ~62.

      [5]章慧芳,陸婭.大豆磷脂中卵磷脂檢測方法的研究[J].中國油脂,2007,32(7):70 ~73.

      [6]Becart J,Chevalier C,Biesse J.Quantitative analysis of phospholipids by HPLC with a light scattering evaporating detector application to raw materials for cosmetic use[J].Journal of High Resolution Chromatography,1990,13:126~129.

      [7]Mounts T L,Nash A M.HPLC Analysis of phospholipids in crude oil for evaluation of soybean deterioration[J].J Am Oil Chem Soc,1990,67:757 ~760.

      [8]Rombaut R,Camp J V,Dewettinck K.Analysis of phospho and sphingolipids in dairy products by a new HPLC method[J].Journal of Dairy Science,2005,88:482 ~488.

      [9]Singleton J A,Stikeleather L F.High performance liquid chromatography analysis of peanut phospholipids.1.Injection system for simultaneous concentration and separation of phospholipids[J].Journal of the American Oil Chemists’Society,1995,72:481 ~483.

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