徐 律 楊金生 丁迎燕 夏松養(yǎng)
魚糜制品是以魚類為原料經(jīng)采肉、漂洗、精濾、脫水、攪拌、成型、加熱等工序加工而成的,營養(yǎng)價(jià)值高,深受消費(fèi)者喜愛。魚糜生產(chǎn)中,為了得到彈性好、色澤白的優(yōu)質(zhì)魚糜,采肉后的碎魚肉一般需進(jìn)行漂洗。漂洗過程中一定量的水溶性蛋白質(zhì)溶于水中,作為廢水而廢棄,十分可惜。魚肉肉質(zhì)鮮嫩美味,其中所含的必需氨基酸齊全,各種氨基酸組成合理,易被人體消化吸收利用,是一種優(yōu)質(zhì)蛋白質(zhì)。從漂洗水中提取的蛋白,可作為蛋白源添加到食品中供人食用,也可以添加到飼料中,供各種動(dòng)物養(yǎng)殖用,用途廣泛。本文通過對(duì)魚糜漂洗水中蛋白質(zhì)的提取方法的研究,為科學(xué)利用廢水魚蛋白提供技術(shù)依據(jù)[1]。
原料(魚糜漂洗水):魚糜加工廠取樣。
低速大容量離心機(jī)、冷凍離心機(jī)、氮蒸餾裝置、pH計(jì)、冷凍干燥機(jī)、套式恒溫器。三氯化鐵、磷酸、明礬、乙酸。
水分的測(cè)定[2]按照GB;蛋白質(zhì)含量的測(cè)定采用凱式定氮法;pH計(jì)測(cè)定pH值。
2.2.1 等電點(diǎn)沉淀提取法[3-5]
2.2.1.1 工藝流程
原料→過濾處理(去渣)→調(diào)節(jié)濾液的pH值(用磷酸或乙酸)→pH值的測(cè)定→靜置→去除上清液→干燥→稱重
2.2.1.2 試劑的準(zhǔn)備
將磷酸稀釋到原來濃度的0.1%、0.2%、0.4%,乙酸稀釋到原來濃度的0.2%、1.0%、4.0%,以上6種不同的酸溶液作為pH調(diào)節(jié)劑調(diào)節(jié)溶液的等電點(diǎn)。
①原料處理
用紗布(一層)對(duì)原液進(jìn)行過濾,除去濾渣(濾渣可回收利用),使濾液看上去無明顯的大顆粒懸浮物。
②濾液pH值的調(diào)節(jié)
準(zhǔn)備 40 支試管,標(biāo)號(hào)為 A1、A2…A19、A20,每支試管均加入 8.0 ml濾液。其中溶液 A1、A2…A9、A10以磷酸為pH調(diào)節(jié)劑,溶液A11、A12…A19、A20是以乙酸為pH調(diào)節(jié)劑。pH調(diào)節(jié)劑加入各試管中后,添加自然水,保證各試管溶液的體積達(dá)到10.0 ml。操作如下:
向 A1~A6分別加入 0.1% 磷酸 0、0.5、0.8、1.2、1.6、2.0 ml;向 A7~A9中分別加入 0.2% 磷酸 1.4、1.6、1.8 ml;向A10中加入0.4%磷酸1.2 ml,各加入濾液8 ml,并加水定容至10 ml。
向 A11~A14分別加入 0.2% 乙酸 0、0.2、1.0、1.8 ml;向 A15~A16中分別加入 1.0%乙酸 0.5、1.0 ml;向 A17~A20中加入 4.0%乙酸 0.8、1.0、1.2、2.0 ml;同時(shí)各加入濾液 8 ml,并加水定容至 10 ml。另取試管 B1、B2…B20,做平行試驗(yàn),操作同上。
③pH值的測(cè)定
40份溶液配制完后,搖勻,快速用已調(diào)節(jié)好的pH計(jì)測(cè)得各溶液的pH值。
④離心干燥處理
溶液 A1~A20:靜置 90 min,將 20份溶液分別倒入離心管內(nèi),在4 200 r/min下,離心15 min。除去上清液,在60℃下干燥約10 h,至恒重,稱量。
溶液 B1~B20:靜置 90 min后,產(chǎn)生分層現(xiàn)象,挑選出分層現(xiàn)象明顯的試管,除去上清液,取絮狀沉淀物在干燥皿中稱量,在60℃的干燥箱內(nèi)干燥約10 h,至恒重,稱量。那些無明顯分層現(xiàn)象產(chǎn)生的溶液,提取物質(zhì)量記為0。
2.2.2 添加凝聚劑提取法[6-7]
2.2.2.1 工藝流程
原料→過濾處理(去渣)→添加凝聚劑→靜置觀察現(xiàn)象(混濁度)→去除上清液→干燥→稱量
2.2.2.2 操作要點(diǎn)
①原料處理:用紗布對(duì)原液進(jìn)行過濾,除去濾渣(回收利用),濾液中無明顯的大顆粒懸浮物。
②凝聚劑的添加方法:向試管A21~A30中分別加入 0.1%三氯化鐵 0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、2.0 ml,各加入濾液 8.0 ml,用水定容至 10 ml。
向試管 A31~A40中分別加入 0.1%氯化鋁 0、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.2、1.4、1.6、2.0 ml,各加入濾液 8.0 ml,用水定容至10 ml。
向試管 A41~A50中分別加入明礬 0、0.05、0.1、0.2、0.4、0.6、0.8、1.0、1.5、2.0mg,各加入濾液定容至 10.0 ml。
③離心干燥:分別把上述溶液搖勻靜置,觀察沉淀情況,當(dāng)溶液有明顯的絮狀沉淀物產(chǎn)生時(shí)(約90 min),取出,去上清液,沉淀物置于干燥皿中,在60℃的烘箱內(nèi)(約10 h)烘至恒重,稱量。那些無明顯分層現(xiàn)象產(chǎn)生的溶液,提取物質(zhì)量記為0。
經(jīng)測(cè)定,原料(魚糜漂洗液)中含蛋白質(zhì)0.64%、水分98.70%;濾渣中蛋白質(zhì)占15.4%、水分占82.30%;濾液中蛋白質(zhì)含量為0.18%、水分99.74%。濾液及濾渣的固形物中蛋白質(zhì)的純度分別為:
P濾液=蛋白質(zhì)(%)/[1-水分(%)]=[0.18%/(1-99.74%)]×100%=69.23%;
P濾渣=蛋白質(zhì)(%)/[1-水分(%)]=[15.40%/(1-82.30%)]×100%=87.01%;
濾液的密度近似看成為1.0 g/ml。
可以看出濾渣中蛋白質(zhì)的純度竟達(dá)87.01%。濾液中仍含有較豐富的蛋白質(zhì),其干重可達(dá)0.18%,純度也相當(dāng)高,為69.23%,仍有很大的利用價(jià)值。
3.2.1 溶液中蛋白質(zhì)等電點(diǎn)的確定
經(jīng)測(cè)定,室溫下,溶液用磷酸為pH調(diào)節(jié)劑時(shí):當(dāng)pH值大于或等于6.28時(shí),溶液基本保持原狀,不出現(xiàn)混濁現(xiàn)象。pH值小于6.28時(shí),溶液隨著酸度的增加,溶液開始出現(xiàn)混濁現(xiàn)象了,溶液的混濁度先逐漸明顯后又漸漸變小了;當(dāng)pH值達(dá)5.28時(shí),溶液混濁現(xiàn)象隨酸度增加又開始消失。因此可以得出以下結(jié)論:濾液的等電點(diǎn)最接近管A5所配溶液,即pH值約為5.28。
以乙酸為調(diào)節(jié)劑的溶液A11~A20對(duì)應(yīng)的pH值如表1所示。
表1 溶液A11~A20(B11~B20)對(duì)應(yīng)的pH值(乙酸)
在室溫下,濾液在使用乙酸調(diào)節(jié)pH值時(shí),濾液的等電點(diǎn)接近于溶液A16的pH值,其值為5.35。
3.2.2 磷酸對(duì)提取效果的影響
①溶液在不同pH值下與離心后提取物質(zhì)量之間的關(guān)系圖:
圖1 pH值與離心提取物質(zhì)量關(guān)系
由圖1可得:空白樣本A1經(jīng)過離心提取物的百分含量P1為55.56%。
式中:MA1——溶液A1離心干燥提取的質(zhì)量,同理MA5、MB1等;
V溶液A——濾液的實(shí)際加入體積;
P理論——濾液中蛋白質(zhì)的理論百分含量。
當(dāng)pH值為5.28時(shí),即溶液在其蛋白質(zhì)的等電點(diǎn)下,離心提取最多的量P2為90.28%。
②產(chǎn)生明顯分層現(xiàn)象后(靜置約90 min),在溶液B1~B10中,選出分層的溶液,除去上清液,取絮狀沉淀物干燥后的質(zhì)量與對(duì)應(yīng)的pH值,如圖2可看出在pH值為5.28時(shí),即在等電點(diǎn)下,其沉淀量達(dá)到最大,提取率P3為83.33%。
圖2 絮狀沉淀物的質(zhì)量與pH值的關(guān)系
3.2.3 乙酸對(duì)提取效果的影響
①溶液A11~A20靜置,離心,干燥,提取物質(zhì)量與其對(duì)應(yīng)的pH值之間的關(guān)系見圖3。
圖3 pH值與離心干燥質(zhì)量的關(guān)系
由圖3可得:
在pH值為6.69的情況時(shí),空白式樣A1,離心后蛋白質(zhì)提取率P4為56.25%。
當(dāng)pH值為5.35時(shí),即等電點(diǎn)下,離心蛋白質(zhì)提取率P5為85.41%。
②產(chǎn)生明顯分層現(xiàn)象產(chǎn)生后(約100 min),在管B11~B20中,選出有分層現(xiàn)象的試管,去上清液,取絮狀沉淀物干燥后所得質(zhì)量與對(duì)應(yīng)的pH值的關(guān)系,見圖4。
由圖4中可看出,當(dāng)pH值為4.0~6.5之間,均有沉淀物出現(xiàn),在其等電點(diǎn)下(pH值為5.35),其沉淀量達(dá)到最大。其提取率P6為79.86%。
圖4 沉淀物質(zhì)量與pH值的關(guān)系
3.2.4 磷酸與乙酸對(duì)提取效果影響的對(duì)比分析
從提取率來看,磷酸的提取率略高于乙酸,并且在反應(yīng)沉淀出的速率上來看,磷酸的效果優(yōu)于乙酸。在提取物的質(zhì)量上基本都能保證安全,新鮮。
從以上對(duì)比中可得,以磷酸作酸度調(diào)節(jié)劑更適合。
3.3.1 三氯化鐵對(duì)提取效果的影響
以三氯化鐵為凝聚劑,加入溶液A21~A30,在時(shí)間為0、30、80 min時(shí)溶液的混濁情況見表2。
表2 三氯化鐵凝聚溶液的情況
從表2可看出,在一定范圍內(nèi),剛開始的混濁度隨著三氯化鐵的加入量的增加而增加,當(dāng)投入量達(dá)到一定量后漸趨于一個(gè)穩(wěn)定數(shù)值。剛開始越混濁的溶液到最后也就越清晰,越清晰則說明沉淀得越完全。去除上清液,將絮狀沉淀物干燥,所得的量與添加的三氯化鐵的量的關(guān)系見圖5。
圖5 三氯化鐵的量與提取物的量的關(guān)系
從圖5可看出,1.0 ml的1%的三氯化鐵溶液于每8.0 ml溶液中,加1 ml水,即達(dá)接近最大值的提取率 P7為79.86%。
3.3.2 氯化鋁對(duì)提取效果的影響
以氯化鋁為凝聚劑,加入 A31~A40溶液,經(jīng) 0、30、80 min,溶液的混濁情況見表3。
表3 氯化鋁凝聚溶液的混濁情況
從表3中可知,其混濁與澄清趨勢(shì)基本與添加三氯化鐵溶液的變化趨勢(shì)相同。
氯化鋁的量與提取物質(zhì)量的關(guān)系見圖6。
圖6 氯化鋁的量與提取物質(zhì)量的關(guān)系
如圖6可得1%的氯化鋁溶液為1.2 ml于8.0 ml濾液中,加0.8 ml水,其提取率P8為77.78%。
3.3.3 明礬對(duì)提取效果的影響
溶液A41~A50是以明礬作為凝聚劑,經(jīng)0、30、80 min,溶液的混濁情況見表4。
表4 明礬作凝聚劑時(shí)溶液的混濁情況
從表4中可看出,其混濁度與澄清趨勢(shì)與三氯化鐵和氯化鋁的變化趨勢(shì)基本相同。
將上清液去除,絮狀沉淀物直接進(jìn)行干燥,其量與沉淀物質(zhì)量的關(guān)系如圖7。
如圖7可見,明礬投入量為1.0mg時(shí),沉淀物P9得率基本趨于最大,P9為75.69%。
圖7 明礬加入量與沉淀物質(zhì)量的關(guān)系
3.3.4 使用各種凝聚劑的對(duì)比分析
以上三種凝聚劑,在其一定范圍內(nèi),沉淀物的質(zhì)量都隨著凝聚劑投入量的增加而增加,當(dāng)投放量達(dá)到一定數(shù)值后,可沉淀出的物質(zhì)基本趨于飽和。在最適點(diǎn)下提取率的高低順序?yàn)?三氯化鐵>氯化鋁>明礬。
由實(shí)驗(yàn)可知,魚糜漂洗液中蛋白質(zhì)的最適提取方法為等電點(diǎn)提取法,其提取條件在室溫下,以0.1%磷酸調(diào)節(jié)pH值,所加體積比為:V溶液:V磷酸=5:1,靜置時(shí)間約1 h,適當(dāng)延長靜置時(shí)間,沉淀效果更好,沉淀物中水分含量越少。
此方法操作簡單,提取率高,提取影響因素小,成本低,適合于大量的生產(chǎn)。
[1]王天林.酶法水解草魚魚肉蛋白最適條件的研究[J].哈爾濱市食品藥品監(jiān)督管理局,2009(8).
[2]殷學(xué)鋒.新編大學(xué)化學(xué)實(shí)驗(yàn)[M].北京:高等教育出版社,2002.
[3]韓喜平.測(cè)定純水pH值方法的改進(jìn)[J].浙江預(yù)防醫(yī)學(xué),2006(03).
[4]劉迎祥,張向京,許建成.從制藥廠廢醪中回收蛋白質(zhì)[J].化工環(huán)保,2000(02).
[5]Onodenalore A C,Shahidi F.Protein dispersions and hydrolysates from shark (Isurus oxyrinchus)[J].Aquat.Food Prod.Technol.,1996(5):43-59.
[6]周利平.菜籽蛋白水溶液的超濾行為及在線控制膜污染的研究[J].食品與機(jī)械,2006(01).
[7]Abdul2Hamid A,Bakar J,Bee G H.Nutritional quality of spray dried protein rolysate from Black Tilapia (Oreochromis mossambicus)[J].Food Chem.,2002(78):69-74.