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      釀酒酵母線粒體NADH激酶功能相關表型研究

      2010-08-27 11:13:00李志君史鋒廖祥儒
      食品與生物技術學報 2010年1期
      關鍵詞:細胞質(zhì)精氨酸脫氫酶

      李志君, 史鋒*, 廖祥儒

      (1.食品科學與技術國家重點實驗室,江南大學,江蘇無錫 214122;2.江南大學工業(yè)生物技術教育部重點實驗室,江蘇無錫 214122)

      釀酒酵母線粒體NADH激酶功能相關表型研究

      李志君1,2, 史鋒*1,2, 廖祥儒2

      (1.食品科學與技術國家重點實驗室,江南大學,江蘇無錫 214122;2.江南大學工業(yè)生物技術教育部重點實驗室,江蘇無錫 214122)

      NADH激酶是輔酶NADP(H)從頭合成的關鍵途徑。釀酒酵母中由POS5基因編碼的線粒體NADH激酶是線粒體NADPH供應的重要來源之一。由IDP1基因編碼的一種關鍵的NADP+依賴性脫氫酶也能夠供應線粒體NADPH。通過對POS5單缺失體、IDP1單缺失體、POS5IDP1雙缺失體關鍵的表型研究,包括它們的生長性能、溫度敏感性、對非發(fā)酵性碳源的利用能力、線粒體及細胞質(zhì)內(nèi)代表性氨基酸的合成性能,初步解析釀酒酵母線粒體中NADPH的主要供應方式及NADH激酶在線粒體中的功能。

      NADH激酶;NADPH;表型;釀酒酵母

      NAD(H)和NADP(H)作為兩種重要的輔酶,參與細胞內(nèi)多種氧化還原反應,是生物體最重要的遞氫體。前者主要涉及一些氧化性生物降解反應,后者主要參與還原性生物合成反應。除此之外,近年來的研究表明,它們還涉及多種不同的生化過程。NAD參與蛋白質(zhì)的ADP核糖基化修飾,從而調(diào)控多種生化過程[1],而NADPH則參與細胞內(nèi)的抗氧化防御系統(tǒng),它在細胞抵抗活性氧分子(ROS)攻擊的過程中處于核心地位[2-3]。基于NAD(H)和NADP(H)截然不同的生理功能,它們在細胞內(nèi)的水平必然會受到嚴格的控制,NADH激酶就是控制它們相互轉(zhuǎn)變的一種關鍵酶。

      NADH激酶利用A TP作為磷酸供體,催化NAD+和NADH發(fā)生磷酸化,生成NADP+和NADPH。這構(gòu)成了NADP(H)從頭生物合成的最后一步,也是目前已知的惟一一個催化NAD(H)生成NADP(H)的反應[4]。除此之外,NADPH還可以通過細胞內(nèi)多種NADP+依賴性脫氫酶循環(huán)再生。

      在釀酒酵母細胞中,線粒體和細胞質(zhì)存在不同的NADH激酶和NADP+依賴性脫氫酶體系。線粒體中的NADH激酶由POS5基因編碼[3,5];而關鍵的一種NADP+依賴性脫氫酶由IDP1基因編碼,即NADP+依賴性異檸檬酸脫氫酶[6]。細胞質(zhì)中存在兩種NADH激酶,分別由U TR1和YEF1基因編碼[7];而細胞質(zhì)中關鍵的NADP+依賴性脫氫酶由ZWF1基因編碼,即葡萄糖-6-磷酸脫氫酶,它催化戊糖磷酸途徑的第一步反應。

      另外,有研究發(fā)現(xiàn),釀酒酵母細胞質(zhì)中的NADH可通過外膜復合體借助離子通道轉(zhuǎn)運至線粒體,NAD+可通過YIA6(NDT1)和YEA6 (NDT2)基因產(chǎn)物轉(zhuǎn)運至線粒體。但是迄今為止還未發(fā)現(xiàn)任何機制能夠?qū)⑨劸平湍讣毎|(zhì)中的NADP+/NADPH轉(zhuǎn)運至線粒體。因此,酵母線粒體中NADPH的供應完全依賴于線粒體內(nèi)的NADH激酶或NADP+依賴性脫氫酶[8-10]。

      鑒于NADPH具有不同于NADH的重要生理功能,以及它在釀酒酵母線粒體內(nèi)獨立的供應方式,作者擬通過表型研究探討線粒體內(nèi)NADH激酶的功能,關鍵是它對線粒體NADPH庫的供應能力及對線粒體功能的維持能力。通過構(gòu)建釀酒酵母線粒體NADH激酶及NADP+依賴性脫氫酶基因缺失株,包括單基因缺失株pos5Δ、idp1Δ,以及雙基因缺失株pos5idp1Δ,研究它們在不同培養(yǎng)條件下NADPH依賴性表型及線粒體功能相關表型,從而初步解析釀酒酵母線粒體中NADPH的主要供應方式及NADH激酶在線粒體中的功能。

      1 材料與方法

      1.1 培養(yǎng)基

      預培養(yǎng)基(YPD):酵母膏1 g/dL,蛋白胨2 g/dL,葡萄糖2 g/dL,p H 5.0,G418 0.2 mg/mL。固體培養(yǎng)基中加入2 g/dL瓊脂。

      SD培養(yǎng)基:氨基酸酵母氮基礎0.67 g/dL,葡萄糖2 g/dL,所需氨基酸和抗生素,p H 5.0。固體培養(yǎng)基中加入2 g/dL瓊脂。

      1.2 釀酒酵母菌株的篩選及培養(yǎng)

      實驗中所使用的釀酒酵母菌株列于表1。突變株的初步篩選采用SD選擇性平板。構(gòu)建好的各酵母菌株在YPD培養(yǎng)基中30℃預培養(yǎng),用超純水洗滌后,以終密度OD600=0.05轉(zhuǎn)移至不同碳源的培養(yǎng)基中培養(yǎng),并監(jiān)測其在不同培養(yǎng)時間的生長密度,直至達到飽和期[11]。為了驗證野生型和突變型酵母菌株在固體培養(yǎng)基中的生長表型,各酵母菌株在YPD培養(yǎng)基中以30℃預培養(yǎng),收集并洗滌3次后,分別稀釋至OD600為2.0、0.2、0.02。稀釋后的細胞懸液各取5μL點在合適的固體培養(yǎng)基上, 30℃培養(yǎng)3~5 d后拍照記錄。

      1.3 NADH激酶和NADP+依賴性脫氫酶雙基因缺失株的構(gòu)建

      對照細胞BY4742,NADH激酶單基因敲除株utr1Δ、pos5Δ、yef1Δ和ZW F1、ID P1基因敲除株zw f1Δ、idp1Δ來自EUROSCARF,見表1。NADH激酶雙基因缺失株utr1yef1Δ、pos5utr1Δ、pos5yef1Δ來自Feng Shi[12]。NADH激酶和脫氫酶雙基因缺失株pos5idp1Δ、pos5zw f1Δ采用同源置換法構(gòu)建[13]。以質(zhì)粒pFA6a-His3MX6(釀酒酵母基因敲除載體,HIS3,氨芐青霉素抗性)為模板, pos5hisf和pos5hisr為嵌合引物,通過PCR擴增出兩端各帶有POS5基因上游和下游約40 bp的嵌合HIS3基因(pos5-HIS3),將此PCR擴增產(chǎn)物純化后分別轉(zhuǎn)化idp1Δ和zw f1Δ細胞,以使HIS3基因置換idp1Δ或zw f1Δ細胞染色體上的POS5基因,通過His-平板篩選陽性轉(zhuǎn)化體idp1pos5:: HIS3或zw f l pos5::H IS3,并經(jīng)菌落PCR驗證后得到雙缺失體pos5idp1Δ或pos5zw f1Δ,驗證用引物為pos5upf、pf ahis3r、pf ahis3f和pos5dnr,見表2。

      2 結(jié)果與討論

      為了研究釀酒酵母線粒體NADH激酶的功能,尤其是它對線粒體中NADPH的供應能力,及線粒體正常功能的維持能力、及其它關鍵NADP+依賴性脫氫酶對NADPH的供應能力,了解線粒體內(nèi)NADPH的優(yōu)勢供應途徑,作者比較了野生菌和不同突變菌在液體培養(yǎng)基中的生長狀況,及它們在不同固體培養(yǎng)基中的生長表型,包括對溫度的敏感性、對非發(fā)酵碳源的利用能力、氨基酸合成能力以及抗氧化能力等。

      表1 釀酒酵母菌株Tab.1 S.cerevisiaestrains used in this study

      表2 引物Tab.2 Primers used in this study

      2.1 基因缺失株在液體培養(yǎng)基中的生長情況

      將釀酒酵母細胞中POS5和/或IDP1基因敲除后,生長狀況與野生菌BY4742相比,在YPD和SD液體培養(yǎng)基中的生長表現(xiàn)出明顯的不同,見圖1。

      圖1 BY4742和突變株生長至飽和態(tài)時的生長密度及生長倍增時間Fig.1 Cell density and doubling time of BY4742 and mutants growing in liquid medium

      不管是在YPD培養(yǎng)基還是在SD培養(yǎng)基中,突變株的生長倍增時間均高于野生型,且雙基因缺失株,即pos5idp1Δ、pos5utr1Δ、pos5yef1Δ與野生型或單基因缺失株相比,所用的倍增時間更長。pos5idp1Δ與pos5utr1Δ在飽和態(tài)時細胞密度相對較低。從圖1可以看出,POS5和ID P1基因產(chǎn)物對于維持釀酒酵母正常生長(生長速度和細胞密度)均起到一定作用,其中POS5的作用更大,而雙基因的敲除會減弱細胞的生長能力。

      2.2 基因缺失株對溫度的敏感性

      當釀酒酵母在最適溫度30℃下培養(yǎng)時,野生型和突變型酵母均能表現(xiàn)出正常的生長狀態(tài)。而將溫度提高至37℃時,pos5Δ突變株(pos5Δ,pos5idp1Δ)表現(xiàn)出一定的生長缺陷,其中,pos5idp1Δ雙基因缺失株的生長缺陷更為明顯。說明POS5基因的敲除會增加細胞對不適宜溫度的敏感性,當同時伴隨ID P1基因缺失時,這種敏感性會增加,見圖2。

      圖2 BY4742和突變株對溫度的敏感性Fig.2 Temperature sensitivity of BY4742 and mutants

      2.3 基因缺失株對非發(fā)酵性碳源的利用能力

      為了考察突變株對非發(fā)酵性碳源的利用能力,作者改變了培養(yǎng)基中的碳源,見圖3。之前已有報道稱pos5Δ突變株在以甘油作為惟一碳源的培養(yǎng)基中存在生長缺陷[14]。由于呼吸缺陷型酵母不能利用非發(fā)酵性碳源如乳酸、甘油、乙酸等,因此pos5Δ突變株很可能存在一定程度的呼吸障礙。于是,作者對比了pos5Δ、idp5Δ、pos5idp1Δ對甘油、乙酸的利用能力,結(jié)果表明,idp1Δ對非發(fā)酵性碳源的利用能力明顯強于pos5Δ,而pos5idp1Δ表現(xiàn)出非常嚴重的缺陷。從表型觀察的結(jié)果可以推斷,在釀酒酵母線粒體中,POS5基因編碼的NADH激酶對線粒體正常功能的維持,尤其是呼吸鏈上電子傳遞過程的正常進行起到一定作用。

      圖3 BY4742和突變株在不同碳源中的生長情況Fig.3 G rowth of BY4742 and mutants in different media with indicated carbon sources

      2.4 基因缺失株的細胞質(zhì)和線粒體氨基酸合成能力

      pos5Δ突變株表現(xiàn)出精氨酸營養(yǎng)缺陷[2]。這是由于線粒體NADPH是精氨酸合成所必需的,它為谷氨酸生成精氨酸的第三步反應提供還原力,見圖4[15]。而細胞質(zhì)中NADPH則是甲硫氨酸合成所必需的[16,17]。

      圖4 谷氨酸生成精氨酸過程的第三步反應Fig.4 The third step in the conversion of glutamate to arginine

      另有報道稱,在哺乳動物細胞中,線粒體NADP+依賴性異檸檬酸脫氫酶(NADP-IDHm)是線粒體中NADPH的重要供應源[18]。然而釀酒酵母的idp1Δ突變株并不存在顯著的精氨酸合成缺陷。pos5Δ存在明顯的精氨酸合成缺陷,且pos5idp1Δ未表現(xiàn)出比pos5Δ更強烈的精氨酸合成缺陷,見圖5。

      圖5 BY4742和突變株對精氨酸和甲硫氨酸的合成能力Fig.5 Arginine and methionine biosynthesis of BY4742 and mutants

      pos5Δ在精氨酸合成上的缺陷,也說明細胞質(zhì)中NADPH的正常供應不能緩解線粒體中NADPH的缺陷。另外由于pos5Δ突變株不存在甲硫氨酸合成上的缺陷,說明供應線粒體NADPH的相關基因的敲除不影響細胞質(zhì)中NADPH的供應,再次證明了釀酒酵母線粒體NADPH庫和細胞質(zhì)NADPH庫是相互獨立。zw f1Δ的精氨酸原養(yǎng)型和甲硫氨酸異養(yǎng)型也證明了這一點,見圖6。pos5zw f1Δ既存在精氨酸營養(yǎng)缺陷,又存在甲硫氨酸營養(yǎng)缺陷,說明其線粒體NADPH和細胞質(zhì)NAD-PH的供應均存在障礙。而pos5utr1Δ僅為精氨酸營養(yǎng)缺陷型,說明它的線粒體NADPH供應有明顯障礙,而細胞質(zhì)NADPH的供應未受顯著影響。

      圖6 BY4742和突變株在精氨酸和甲硫氨酸合成上的缺陷Fig.6 Arginine and methionine biosynthesis defect of BY4742 and mutants

      2.5 基因缺失株的抗氧化能力

      生物有機體抵抗活性氧分子的能力取決于它們抗氧化系統(tǒng)的正常運行。NADPH對于維持細胞氧化還原體系平衡,保障細胞抗氧化能力非常重要。因此,NADPH的缺乏往往會引起細胞對氧化壓力的敏感。從圖7,8可見,pos5Δ突變株(包含pos5Δ、pos5idp1Δ、pos5utr1Δ、pos5zw f1Δ)對CuSO4和H2O2都很敏感,雙突變株(pos5idp1Δ、pos5utr1Δ、pos5zw f1Δ)對于CuSO4的敏感性更高于單突變株(pos5Δ、idp1Δ、utr1Δ、zw f1Δ)。對于線粒體內(nèi)的一種代表性NADP+依賴性脫氫酶Idp1p,其基因突變株idp1Δ可以同野生菌一樣正常抵御這兩種氧化壓力,這說明它對于釀酒酵母抵抗氧化壓力沒有貢獻。細胞質(zhì)NADH激酶突變株utr1Δ和細胞質(zhì)葡萄糖-6-磷酸脫氫酶突變株zw f1Δ對這兩種氧化壓力也比較敏感,說明它們對于對抗氧化壓力(很可能是細胞質(zhì)內(nèi)的活性氧)具有一定的功能。

      3 結(jié) 語

      圖7 BY4742和突變株的抗氧化能力Fig.7 The anti-oxidation ability of BY4742 and mutants

      圖8 BY4742、zwf1Δ、utr1Δ、及其與POS5基因的雙突變株的抗氧化能力Fig.8 The anti-oxidation ability of BY4742 and mutants

      對釀酒酵母的表型研究表明,在最優(yōu)培養(yǎng)基、最適培養(yǎng)溫度的條件下,野生型和突變型都能生長,但pos5Δ,尤其是pos5idp1Δ雙基因缺失株在YPD和SD液體培養(yǎng)基中的生長速率變慢,細胞密度降低。當改變培養(yǎng)溫度,或培養(yǎng)基成分時,突變株尤其是pos5Δ表現(xiàn)出明顯的溫度敏感性,對非發(fā)酵性碳源的利用能力出現(xiàn)障礙,氨基酸合成能力以及抗氧化能力也存在缺陷,而pos5idp1Δ在特定情況下會加劇。

      從表型比較的結(jié)果中還發(fā)現(xiàn),POS5基因編碼的NADH激酶是線粒體NADPH的主要供應來源;ID P1基因編碼的異檸檬酸脫氫酶對于線粒體中NADPH的供應也能起到一定作用,但其貢獻不如Pos5p。pos5idp1Δ雙基因缺失株在一些特定條件下的生命表征弱于pos5Δ單基因缺失株。線粒體和細胞質(zhì)中NADPH存在于兩個相互獨立的體系中。

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      (責任編輯:李春麗)

      Function and Phenotype of Mitochondrial NADH Kinase inSaccharomyces cerevisiae

      LI Zhi-jun1,2, SHI Feng*1,2, LIAO Xiang-ru2
      (1.State Key Laboratory of Food Science and Technology,Jiangnan University,Wuxi 214036,China;2.Key Laboratory of Industrial Biotechnology,Ministy of Education,Jiangnan University,Wuxi 214036,China)

      NADH kinase is the critical pathway for NADP(H)biosynthesis in yeast.InS accharomyces cerevisiae,mitochondrial NADPH is mainly supplied by a mitochondrial NADH kinaseencodedbyPOS5gene.However,amitochondrialNADP+-specificisocitrate dehydrogenase encoded by IDP1 gene could also supply mitochondrial NADPH.Here,through the phenotypic study of POS5 single mutant,IDP1 single mutant,POS5IDP1 double mutant, including their growth ability,temperature sensitivity,non-fermentable carbon sources usage ability,amino acid synthetic ability and anti-oxidation,supplying mode of mitochondrial NADPH and function of NADH kinase in mitochondria were investigated.

      NADH kinase,NADPH,phenotype,S accharomyces cerevisiae

      Q 55

      :A

      1673-1689(2010)01-0128-06

      2009-03-10

      國家自然科學基金項目(30770019,30870056)。

      *通訊作者:史鋒(1970-),女,江蘇丹陽人,工學博士,副教授,碩士生導師,主要從事微生物與生物化學方面的研究。Email:shifeng@jiangnan.edu.cn

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