劉志強(qiáng),程紅斌,劉建國(guó)*,景元海
(1.吉林大學(xué)白求恩第一醫(yī)院 骨關(guān)節(jié)二科,吉林 長(zhǎng)春 130021;2.武警總醫(yī)院 神經(jīng)干細(xì)胞移植科,北京 1000397;3.大慶總醫(yī)院集團(tuán)龍南醫(yī)院 骨科,黑龍江 大慶 163000)
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞在關(guān)節(jié)軟骨損傷中的應(yīng)用
劉志強(qiáng)1,程紅斌2,劉建國(guó)1*,景元海3
(1.吉林大學(xué)白求恩第一醫(yī)院 骨關(guān)節(jié)二科,吉林 長(zhǎng)春 130021;2.武警總醫(yī)院 神經(jīng)干細(xì)胞移植科,北京 1000397;3.大慶總醫(yī)院集團(tuán)龍南醫(yī)院 骨科,黑龍江 大慶 163000)
*通訊作者
隨著細(xì)胞生物學(xué)、分子生物學(xué)和材料學(xué)等基礎(chǔ)科學(xué)的快速發(fā)展,組織工程研究和應(yīng)用得以飛速發(fā)展,為軟骨缺損修復(fù)這個(gè)醫(yī)學(xué)難題開辟了全新領(lǐng)域。骨髓來源間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)在體外大量擴(kuò)增對(duì)其最終在體內(nèi)形成軟骨組織無明顯影響并可分化成軟骨和骨組織,正是由于這些特性,使之成為組織工程軟骨構(gòu)建中熱門的種子細(xì)胞。本文對(duì)BMSCs在軟骨損傷中的應(yīng)用進(jìn)展加以綜述。
關(guān)節(jié)軟骨的損傷根據(jù)損傷類型和修復(fù)反應(yīng)的不同,可以被區(qū)分為3個(gè)等級(jí):①軟骨表面完好的軟骨內(nèi)損傷,伴或不伴軟骨下骨損傷。②局限于關(guān)節(jié)軟骨的非全層軟骨缺損,未累及軟骨下骨。③關(guān)節(jié)軟骨并軟骨下骨的全層缺損。關(guān)節(jié)表面完好的軟骨內(nèi)損傷病理改變?yōu)檐浌腔|(zhì)斷裂,存活軟骨細(xì)胞可增強(qiáng)合成功能來修復(fù)組織。局限于關(guān)節(jié)軟骨的非全層缺損無法自愈,通常認(rèn)為損傷未及軟骨下骨,無法引出骨髓中的干細(xì)胞。累及軟骨和軟骨下骨的全層缺損,由于損傷貫通軟骨硬化區(qū)和軟骨下骨,骨髓中的間充質(zhì)干細(xì)胞等可遷至軟骨損傷處,生成修復(fù)性的纖維軟骨組織。這種修復(fù)組織在生物力學(xué)性能、耐久性等方面遠(yuǎn)不及健康軟骨,但可覆蓋、保護(hù)缺損區(qū)軟骨下骨,減少軟骨磨損和游離屑的形成。
其基本方法是將自體或異體的組織細(xì)胞經(jīng)體外培養(yǎng)擴(kuò)增后,接種到一種生物相容性良好可吸收的生物材料上,形成細(xì)胞生物材料復(fù)合物,再回植到體內(nèi)組織缺損部位,隨著生物材料逐漸被機(jī)體吸收,細(xì)胞分化生長(zhǎng)成新的有功能的組織,從而達(dá)到修復(fù)缺損的目的。主要涉及到種子細(xì)胞、支架材料和生長(zhǎng)因子3個(gè)基本要素。
骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(Bone mesenchymal stem cells,BMSCs)是目前研究最多、應(yīng)用最廣的種子細(xì)胞之一。它具有典型的干細(xì)胞特點(diǎn),終身存在于骨髓和其他組織器官中,負(fù)責(zé)組織的修復(fù)和更新,而且具有多向分化潛能,在不同的誘導(dǎo)條件下可以分化成許多不同的組織[1]。
2.1.1 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞特點(diǎn) 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞(BMSCs)具有多向分化潛能,在不同的誘導(dǎo)條件下可以分化成許多不同的組織,如骨組織、軟骨組織、脂肪組織、內(nèi)皮組織、肌肉組織等。由于BMSCs的自我復(fù)制和多向分化的能力,近年來在組織工程骨構(gòu)建過程中應(yīng)用廣泛。BMSCs取材方便、創(chuàng)傷小且易于從骨髓中分離及體外擴(kuò)增純化,不像滑膜、脂肪等來源的BMSCs原代培養(yǎng)需要酶消化預(yù)處理。骨髓BMSCs雖僅占有核細(xì)胞數(shù)的0.001%-0.01%,但始終穩(wěn)定保持分化成軟骨細(xì)胞的能力,是終身可用的軟骨前體細(xì)胞。骨髓BMSCs具有CD105(即TGF-β受體),細(xì)胞成軟骨潛能似與CD105表達(dá)有關(guān)。與滑膜、脂肪等來源的BMSCs相比,BMSCs標(biāo)志基因在平面培養(yǎng)時(shí)差異不明顯,而在三維高密度培養(yǎng)時(shí)基因差別顯著,有且只有BMSCs的軟骨分化才能獲得明顯的改善[2]。自體骨髓BMSCs不存在免疫排斥,且BMSCs體外基因轉(zhuǎn)染高并能穩(wěn)定高效表達(dá)外源基因等優(yōu)點(diǎn)[3]。
2.1.2 骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞獲得 隨著對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞深入廣泛的研究,目前已建立了多種分離純化的方法,為其在組織工程和基因工程上的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ)。常用的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞分離與純化方法有:①密度梯度離心法。②貼壁細(xì)胞分離法。③ 流式細(xì)胞儀分選法。④磁珠分選法。
至今尚無明確的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞鑒定方法,但利用骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的一些生物學(xué)特征、表面標(biāo)志物及特異性基因的表達(dá),再借助一些實(shí)驗(yàn)技術(shù),可基本達(dá)到區(qū)分它們的目的。關(guān)于骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞表面標(biāo)志物的報(bào)道很多,但研究結(jié)論極不一致,尚缺乏單一明確的表面標(biāo)志物[4,5]。
與BMSCs相關(guān)的細(xì)胞因子主要有轉(zhuǎn)化因子-β(TGF-β)、骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP)、胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(IGF-1)、成纖維生長(zhǎng)因子(FGF)、血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)、表皮生長(zhǎng)因子(EGF)等。
2.2.1 轉(zhuǎn)化因子-β(TGF-β) 轉(zhuǎn)化因子-β(TGF-β)是當(dāng)前最強(qiáng)的細(xì)胞促生長(zhǎng)因子。研究表明,TGF-β可以明顯促進(jìn)細(xì)胞外基質(zhì)的合成,刺激Ⅱ型膠原和蛋白多糖的表達(dá),增加成骨細(xì)胞數(shù)量。大多數(shù)離體研究表明TGF-β可增加成骨細(xì)胞分化標(biāo)志物,如堿性磷酸酶、I型膠原、骨粘連蛋白的表達(dá),還可增加堿性磷酸酶水平。另外,TGF-β1能減少膠原酶轉(zhuǎn)錄并加速膠原酶mRNA降解,這有利于維持骨中的膠原基質(zhì)[6]。一些實(shí)驗(yàn)也說明了不同濃度的TGF-β1對(duì)BMSCs具有不同的誘導(dǎo)效率,10μg/L TGF-β1可能BMSCs向軟骨細(xì)胞分化的最佳誘導(dǎo)濃度[7,8]。
2.2.2 骨形態(tài)發(fā)生蛋白(BMP) 骨形態(tài)發(fā)生蛋白(bone m0rphogenetic protein,BMP)是一組疏水性的酸性糖蛋白,屬于轉(zhuǎn)換生長(zhǎng)因子超家族。是目前唯一被確認(rèn)具有異位成骨能力的生長(zhǎng)因子。其中研究最多也是成骨活性最強(qiáng)的是BMP-2和BMP-7。Lin等[9]研究發(fā)現(xiàn):骨形態(tài)發(fā)生蛋白可以促進(jìn)MSCs向成骨方向轉(zhuǎn)化。
2.2.3 胰島素樣生長(zhǎng)因子-1(IGF-1) 胰島素樣生長(zhǎng)因子(IGF-1)是一種強(qiáng)有力的合成代謝刺激因子,是目前已知的調(diào)節(jié)軟骨代謝和維持軟骨內(nèi)環(huán)境諸多因素中最關(guān)鍵的生長(zhǎng)因子之一。研究表明胰島素樣生長(zhǎng)因子1可促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向軟骨細(xì)胞分化,還可抑制轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子p1引起的細(xì)胞外焦磷酸鹽的積聚,防止焦磷酸鈣結(jié)晶的形成和進(jìn)一步成骨,是轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1重要的輔助因子[10]。
2.2.4 堿性成纖維生長(zhǎng)因子(bFGF) 堿性成纖維生長(zhǎng)因子(bFGF)是一種肝素粘合多肽,在人體組織中廣泛存在,具有多種生物活性,包括促進(jìn)毛細(xì)血管增殖、細(xì)胞有絲分裂,從而影響細(xì)胞的增殖和分化。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)bFGF可明顯促進(jìn)BMSCs的增殖并能增加傳代的次數(shù)[11]。研究顯示bFGF和地塞米松對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖與分化的影響,結(jié)果顯示1.0-10.0ng/ml的bFGF可促進(jìn)BMSCs的增殖,濃度再高則促增殖作用無明顯提高甚至下降。這說明bFGF對(duì)BMSCs的增殖有劑量依賴性[12]。
2.2.5 血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF) 血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子(VEGF)又稱血管通透因子(VPF)或(VAS)。近年來研究表明,血管內(nèi)皮生長(zhǎng)因子對(duì)中胚層細(xì)胞分化有作用,可以使骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞向成骨分化。
2.2.6 多種生長(zhǎng)因子聯(lián)合應(yīng)用 軟骨生長(zhǎng)的微環(huán)境有很多生長(zhǎng)因子,不同的生長(zhǎng)因子相互影響,彼此形成復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)關(guān)系,軟骨生長(zhǎng)、代謝需要多種生長(zhǎng)因子共同參與。目前研究者關(guān)注多個(gè)因子的聯(lián)合應(yīng)用以及其他因素與因子間的相互作用。
Ozono[13]分別將bFGF與IGF、17β-雌二醇(E2)聯(lián)合應(yīng)用,結(jié)果表明聯(lián)合使用能更有效地促進(jìn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的成骨性分化。TGF-β1、BMP-2聯(lián)合作用更能促進(jìn) BMSCs向軟骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化,分泌軟骨特異性基質(zhì)[14]。多個(gè)因子的聯(lián)合應(yīng)用可以更好地修復(fù)軟骨缺損使其成為當(dāng)今組織工程的研究熱點(diǎn),但并非所有的生長(zhǎng)因子之間的組合都是有利的,研究發(fā)現(xiàn)胰島素樣生長(zhǎng)因子1、轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β聯(lián)合應(yīng)用修復(fù)軟骨并沒有得到明顯的改善,機(jī)械強(qiáng)度也沒達(dá)到理想強(qiáng)度[21]。
組織工程中支架材料即人工的細(xì)胞外基質(zhì)。理想的軟骨組織工程支架材料應(yīng)具有:① 良好的生物相容性,利于細(xì)胞貼附,無毒性,不引起炎性反應(yīng),不能引起宿主的排異反應(yīng)。②可塑性和一定的力學(xué)強(qiáng)度:可預(yù)先制作成一定形狀并為新生組織提供一定強(qiáng)度的支撐,且可保持至新生組織具有自身生物力學(xué)特性。③良好的生物降解性:材料降解速率與種植入的細(xì)胞組織形成的速率匹配,組織再生后則被完全降解吸收,同時(shí)降解產(chǎn)物無毒,能及時(shí)排出體外。④具有三維立體多孔結(jié)構(gòu)且至少達(dá)90%大小合適的孔隙,為大量種子細(xì)胞的黏附、生長(zhǎng)、營(yíng)養(yǎng)、代謝等提供良好條件,同時(shí)還能讓血管長(zhǎng)入支架。⑤良好的表面活性:激活細(xì)胞特異基因表達(dá),維持細(xì)胞表型正常表達(dá)。⑥價(jià)格低廉,來源廣泛,可以大量重復(fù)生產(chǎn)。目前與骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞復(fù)合應(yīng)用得較多的支架材料有以下幾種。
2.3.1 多孔生物降解聚合物 多孔生物降解聚合物中較常用的是聚乳酸(PLA)、聚羥基乙酸(PGA)及其共聚物(PLGA)。其中,PLGA是目前應(yīng)用比較廣泛,具有低降解度和高藥物滲透性的特點(diǎn),具有良好可吸收性的生物降解可植入高分子材料。有學(xué)者通過將骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞接種到PLGA納米纖維支架上,發(fā)現(xiàn)兩周后骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞能持續(xù)分化成成骨細(xì)胞及成軟骨細(xì)胞[15]。
2.3.2 膠原 膠原是多種組織的主要成分和細(xì)胞外基質(zhì)蛋白,在體內(nèi)以膠原纖維的形式存在,其纖維狀結(jié)構(gòu)利于組織培養(yǎng)中細(xì)胞的黏附生長(zhǎng)繁殖。膠原不論是作為皮膚、骨胳替代品,生物工程膜,或組織培養(yǎng)系統(tǒng)支架,應(yīng)用都越來越廣泛。研究表明骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞為種子細(xì)胞,復(fù)合膠原凝膠移植,修復(fù)關(guān)節(jié)軟骨缺損,確定良好效果。
2.3.3 殼聚糖 殼聚糖(chitosan,CS)通過甲殼素殼聚糖β-(1-4)聚-2-乙酰胺基-D-葡糖脫乙?;纬?,具有良好的生物相容性、可降解性,近年來成為生物醫(yī)學(xué)工程領(lǐng)域研究較多的材料之一。實(shí)驗(yàn)發(fā)現(xiàn)將骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞放在殼聚糖-珊瑚復(fù)合支架上培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞的貼附、增殖和成骨分化能力都優(yōu)于單純的殼聚糖支架[16]。
2.3.4 種子細(xì)胞-支架復(fù)合物 BMSCs復(fù)合三維PLGA支架應(yīng)用顯示:用兔自體骨髓血分離出骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞種植于三維PLGA支架,共同體外培養(yǎng)2周后移植修復(fù)兔膝關(guān)節(jié)軟骨缺損。術(shù)后4周,骨軟骨缺損被新形成的光滑白色組織所填充,但是邊緣與周圍正常軟骨組織有顏色不同的界限。組織學(xué)觀察有培養(yǎng)的細(xì)胞和細(xì)胞外基質(zhì)。術(shù)后12周,缺損處填充以光滑、白色并有光澤的組織,類似完整的關(guān)節(jié)軟骨邊緣與正常軟骨組織模糊。組織學(xué)觀察有再生的類透明軟骨和大量細(xì)胞外基質(zhì)[17]。
2.3.5 種子細(xì)胞-支架-細(xì)胞因子復(fù)合物 將攜帶 TGF-β1凝膠微球(MS-TGFβ1)的多孔水凝膠-軟骨素-透明質(zhì)酸支架復(fù)合自體BMSCs培養(yǎng)后修復(fù)兔全層關(guān)節(jié)軟骨缺損,通過觀察,再生軟骨細(xì)胞在形態(tài)學(xué)、整合性、與軟骨下骨的連續(xù)性及再生軟骨層的厚度方面均獲得了更好的修復(fù)[18]。
同時(shí)力學(xué)環(huán)境也起到一定促進(jìn)分化作用。適當(dāng)?shù)膭?dòng)態(tài)壓縮和由纖維蛋白與彈性PLCL混合成的支架三維環(huán)境下,可以促進(jìn)BMSCs分化成軟骨細(xì)胞,保持其表型和促進(jìn)聚糖的產(chǎn)生,從而改善軟骨組織在體內(nèi)和體外的質(zhì)量[19]。振動(dòng)拉伸載荷的差異能夠影響三維纖維蛋白凝膠對(duì)關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞亞群的構(gòu)造,暴露于特定拉伸載荷的細(xì)胞被分成了向深層區(qū)域發(fā)展和淺層的軟骨細(xì)胞,這可能表明了細(xì)胞對(duì)新的力學(xué)環(huán)境的適應(yīng)。單一周期(40min,2 000με)的機(jī)械張力提高其堿性磷酸酶的活性,顯著上調(diào)TGF-β和IGF-Ⅱ的表達(dá),還可促進(jìn)BMSCs增殖[20]。目前,已證實(shí)了應(yīng)力刺激確實(shí)有利于BMSCs向軟骨細(xì)胞的誘導(dǎo)分化,但在體外誘導(dǎo)中最佳的施力大小,施力方式及作用時(shí)間等尚不明確,需要進(jìn)一步研究探索[21]。
用基因芯片技術(shù)建立妊娠胎鼠肢芽軟骨發(fā)育過程的基因表達(dá)譜,分析MAPK信號(hào)通路中bFGF在軟骨發(fā)育過程中的基因表達(dá)規(guī)律,發(fā)現(xiàn)FGF能夠啟動(dòng)MAPK信號(hào)通路從而促進(jìn)軟骨形成。bFGF質(zhì)粒轉(zhuǎn)染BMSCs后促進(jìn)BMSCs的增殖,細(xì)胞有向軟骨細(xì)胞分化趨勢(shì)。
龍華等[22]以腺病毒AdEasy為基因轉(zhuǎn)移載體,制備攜帶轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1和骨形態(tài)發(fā)生蛋白7基因的高滴度腺病毒感染兔間充質(zhì)干細(xì)胞與骨基質(zhì)明膠(BMG)支架相復(fù)合體外構(gòu)建組織工程化軟骨,移植修復(fù)同種異體兔關(guān)節(jié)軟骨缺損,經(jīng)組織染色和電鏡觀察可見前體軟骨細(xì)胞大量增殖,在體移植修復(fù)實(shí)驗(yàn)組新生組織為類透明軟骨,修復(fù)效果明顯優(yōu)于各對(duì)照組。得出間充質(zhì)干細(xì)胞經(jīng)攜帶轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1和骨形態(tài)發(fā)生蛋白7基因的腺病毒感染后,體外能向軟骨細(xì)胞作定向分化,可用于制備組織工程化軟骨,使提高關(guān)節(jié)軟骨缺損的修復(fù)質(zhì)量成為可能。
基因治療現(xiàn)在還處在實(shí)驗(yàn)探索階段,還存在許多問題如安全性能問題,基因調(diào)控性差,轉(zhuǎn)染率較低等問題,但隨著對(duì)軟骨細(xì)胞損傷機(jī)制研究深入,基因轉(zhuǎn)染技術(shù)的改進(jìn),基因治療將會(huì)在軟骨細(xì)胞修復(fù)中廣泛應(yīng)用。
以干細(xì)胞工程為代表的現(xiàn)代組織工程學(xué)是近年來迅猛發(fā)展的新領(lǐng)域,干細(xì)胞工程作為組織工程的前沿研究,對(duì)未來的組織器官修復(fù)與替代具有極其重要的作用和深遠(yuǎn)的影響。盡管還有許多問題需要進(jìn)一步研究,但骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞使關(guān)節(jié)軟骨缺損的修復(fù)已跨入了臨床應(yīng)用干細(xì)胞治療的時(shí)代,有理由相信隨著研究的深入和應(yīng)用的推廣,一定會(huì)將組織工程化軟骨更好的應(yīng)用于臨床。
[1]Kassem M,Kristiansen M,AbdaUah BM.Mesenchymal stem cells:cell biology and potential use intherapy[J].Basic Clin Pharmacol Toxico1,2004,5:209.
[2]胡蘊(yùn)玉.現(xiàn)代骨科基礎(chǔ)與臨床[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2006:168.
[3]Bosnakovsk lD,MIzuno M,Kim G,et al.Gene expression profile of bovinebo ne marrow mesenchymaI stem celI during spo ntaneous chondrogenic differentiation in peget culture system[J].Jpn Vet Res,2006,4:127.
[4]馬 力,劉大軍,李德天,等.不同分離方法及培養(yǎng)條件對(duì)兔骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞生長(zhǎng)增殖及生物學(xué)特性的影響[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2008,12(38):7401.
[5]Wagner W,wein F,Seekinger A,et al.Comparative characteristics ofmesenehymal stem cells from human bone marrow,adipose tissue,andumbilical cord blood[J].Exp Hematol,2005,33(11):1402.
[6]Wang X,Hisha H,Taketani S,et al.Characterization of mesenchyrmalstem cells isolated from mouse fetal bone marrow[J].Stem Cells,2006,24(3):482.
[7]王運(yùn)濤,吳小濤,鄭啟新,等.轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1/Smad3促進(jìn)大鼠骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞成骨分化的實(shí)驗(yàn)研究[J].醫(yī)學(xué)研究生學(xué)報(bào),2007,7(20):689.
[8]鄧 進(jìn),彭吾訓(xùn),王 蕾,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞二維培養(yǎng)條件下向軟骨細(xì)胞誘導(dǎo)分化的實(shí)驗(yàn)研究[J].中國(guó)現(xiàn)代醫(yī)學(xué)雜志,2008,18(16):2340.
[9]Lin L,Shen Q,Wei X,et al.Comparis onofosteo genicpotentialso fBMP4ransduced stem cells from auto logous bone marro wand fattissueinar abbit model of calvarial defects[J].Calcif Tissue Int,2009,85(1):55.
[10]Madry H,Kaul G,Cucchiarini M,et al.Enhanced repairof articular cartilage defects in vivo by transplanted ehondrocytesover expressing insulin-like growth factor I(IGF-I)[J].Gene Ther,2005,12(5);117I.
[11]鄭有華,蔣柳宏,張志光.等.轉(zhuǎn)染堿性成纖維生長(zhǎng)因子基因的骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞在珊瑚骨表面生長(zhǎng)狀況(英文)[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2009,(21):4105.
[12]俞 猛,夏仁云,高 飆,等.bFGF和地塞米松對(duì)骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞增殖與分化的影響[J].中國(guó)康復(fù),2006,21(1):12.
[13]Ozono S,F(xiàn)ujita T,Matsuo M,et al.Co-treatmen twith basic fibrob last growth factor and 17beta-estradio lin the presence of dexamethasone accelerates bone formation by rat bone marrow stromal cell culture[J].Nihon Hotetsu Shika Gakkai Zasshi,2008,52(3):366.
[14]張清林,呂惠成,吳一民.TGF-β1、BMP-2聯(lián)合誘導(dǎo) BMSCs向軟骨細(xì)胞分化的體外研究[J].中國(guó)組織工程研究與臨床康復(fù),2010,14(24):4371.
[15]Xin X J,Hussain M,Mao J J.Continuing differentiation of human mesenchymal stem cells and induced chondrogenic and osteogenic lineages in electrospun PLGA nanofiber scaffold[J].Biomaterials,2007,28:316.
[16]Gravel M,Gross T,Vago R,et al.Responses of mesenchymalstem cell to chitosan-coralline composites microstructured using coralline as gas forming agent[J].Biomaterials,2006,27:1899.
[17]Uematsu K,Hattori K,Ishimoto Y,et al.Cartilage regeneration as ingmesenchymal stem cell sathree dimensi on alpoly lacticglycolicacid(PLGA)scafold[J].Biomaterials,2005,20:4273.
[18]Fan H,Hu Y,Qin L,et al.Porous gelatin-chondmitin-hyalumnatetri-co po lymer scaf old containing microspheres loaded with TGFbetalinduces diferentiation of mesenchymal stem cells in vivo for enhan-cing cartilage repair[J].J Biomed Mater Res A,2006,4:785.
[19]JungY,KimSH,KimYH,et al.The effects of dynamic and threedimensional environments on chondrogenic differentiation of bone marrow stromal cells[J].Biomed Mater,2009,4(5):55.
[20]Vanderploeg EJ,Wilson CG,Levenston ME.Articular chondrocytes derived from distinct tissue zones differentially respond to in vitro Oscillatory tensile loading[J].Osteoarthritis Cartilage,2008,16(10):1228.
[21]韓立赤,戚 孟,春孫紅,等.骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞對(duì)機(jī)械張應(yīng)力刺激的反應(yīng)及轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子-β和胰島素樣生長(zhǎng)因子-Ⅱ的基因表達(dá)[J].華西口腔醫(yī)學(xué)雜志,2009,27(4):381.
[22]龍 華,袁 華,馬保安,等.腺病毒介導(dǎo)TGFB.1及BMP.7基因共表達(dá)感染骨髓間充質(zhì)干細(xì)胞修復(fù)兔關(guān)節(jié)軟骨缺損[J].中國(guó)骨與關(guān)節(jié)損傷雜志,2008,23(6):471.
1007-4287(2012)02-0373-03
2011-04-01)