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      米糠蛋白抗氧化肽的制備及初步分離

      2012-10-16 08:52:54李喆翟愛(ài)華
      關(guān)鍵詞:米糠無(wú)水乙醇清除率

      李喆,翟愛(ài)華

      (黑龍江八一農(nóng)墾大學(xué)食品學(xué)院,大慶163319)

      米糠是大米加工的主要副產(chǎn)品,蛋白質(zhì)含量為12%~16%(大米中為7%左右),比普通精米高出1倍以上,因此聯(lián)合國(guó)工業(yè)發(fā)展組織把米糠稱(chēng)為一種未被充分利用的原料[1]。我國(guó)米糠資源豐富,年產(chǎn)米糠1 000萬(wàn)t以上,約占世界1/3[2],但米糠大多作為飼料被簡(jiǎn)單的利用,只有很小一部分被用做米糠油和天然活性成分的提取,利用效率不足20%[3],造成了嚴(yán)重的資源浪費(fèi),尤其是米糠中蛋白質(zhì)的浪費(fèi),與國(guó)外相比我國(guó)的米糠精深加工比較滯后。

      國(guó)外對(duì)稻米及副產(chǎn)品高效增值深加工已實(shí)現(xiàn)產(chǎn)業(yè)化,對(duì)于米糠的研究開(kāi)發(fā)非常廣泛和深入。據(jù)不完全統(tǒng)計(jì),國(guó)內(nèi)外迄今有關(guān)米糠深加工的專(zhuān)利有50多項(xiàng),以米糠為原料開(kāi)發(fā)的產(chǎn)品更是有上百種之多,產(chǎn)品主要集中在食品、日化和醫(yī)藥三大行業(yè)中[4]。

      自從英國(guó)學(xué)者Haman提出自由基理論以來(lái),人們開(kāi)始認(rèn)識(shí)到體內(nèi)氧化產(chǎn)生的自由基與人體衰老和許多疾病都有關(guān)[5]??寡趸瘎┯捎谀芮宄龣C(jī)體自由基而具有抗衰老、預(yù)防癌癥等的作用,因此可作為功能因子用于食品、藥品及保健品的開(kāi)發(fā)??寡趸淖鳛橐环N非酶類(lèi)自由基清除劑的研究正在興起[6],如大豆蛋白抗氧化肽、玉米蛋白抗氧化肽、小麥蛋白抗氧化肽等。國(guó)內(nèi)外對(duì)米糠蛋白抗氧化肽的研究報(bào)道較少,付巖松所在實(shí)驗(yàn)室利用AS1.398中性蛋白酶酶解米糠蛋白制得抗氧化肽對(duì)鄰苯三酚自氧化抑制達(dá)44.44%[7]。研究以米糠蛋白為原料,采用酶法提取功能性抗氧化活性肽,并研究了其初步分離工藝,旨在為米糠的精深加工及綜合利用提供理論基礎(chǔ)和實(shí)踐依據(jù)。試驗(yàn)采用堿性蛋白酶酶解米糠蛋白,以期獲得具有高抗氧化活性的肽,并采用超濾和Sephadex G-25柱層析初步分離純化米糠蛋白抗氧化肽。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      米糠蛋白:北大荒希杰食品科技公司。

      Sephades G-25:安瑪西亞生物技術(shù)(上海)有限公司。

      堿性蛋白酶(Alcalase):購(gòu)于諾維信(中國(guó))生物技術(shù)有限公司。

      DPPH購(gòu)于美國(guó)sigma公司,氫氧化鈉、磷酸氫二鈉、磷酸二氫鈉及其他試劑均為分析純購(gòu)于天津市大茂化學(xué)試劑廠生產(chǎn)。

      1.2 主要儀器

      紫外可見(jiàn)分光光度計(jì),T6新世紀(jì),北京普析通用儀器有限責(zé)任公司;電子天平,AR2140梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;低速離心機(jī),LD5-10B,北京京立離心機(jī)有限公司;臺(tái)式離心機(jī),上海安亭科學(xué)儀器廠;pH計(jì),PH-3C,上海安亭雷磁有限公司;電熱恒溫水浴鍋,DK-S24,上海森信試驗(yàn)儀器有限公司;試驗(yàn)用膜分離裝置中空纖維膜組件,NF-UF-4010,上海摩速科學(xué)器材有限公司;程控全自動(dòng)部分收集器,CBS-100A,上海青浦滬西儀器廠;恒流泵,HL-2S,上海青浦滬西儀器廠;電腦紫外檢測(cè)儀,HD-9707,上海精科實(shí)業(yè)有限公司。

      1.3 試驗(yàn)方法

      1.3.1 米糠蛋白抗氧化肽的制備

      米糠蛋白按一定底物濃度加水配成懸浮液,90℃加熱預(yù)處理10 min降溫至所需溫度后加1 mol·L-1氫氧化鈉溶液調(diào)pH,恒溫恒pH下攪拌15 min待pH穩(wěn)定后加入酶水解(水解過(guò)程中不斷加入氫氧化鈉溶液維持pH在規(guī)定范圍的±0.05內(nèi)),反應(yīng)結(jié)束后迅速加熱10min滅酶,離心(4 000 r·min-1,15min),收集上清液備用。

      1.3.2 清除DPPH自由基活性測(cè)定

      DPPH自由基在有機(jī)溶劑中呈紫色且非常穩(wěn)定,在517 nm附近有特征吸收,當(dāng)有自由基清除劑存在時(shí),在517 nm處的特征吸收吸收減弱或消失,則說(shuō)明被測(cè)物具有抗氧化活性[8]。

      取2mL待測(cè)樣品于EP管中,再加入2 mL濃度為0.01mmol·L-1的DPPH無(wú)水乙醇溶液,混合均勻,反應(yīng)20min,4 000 r·min-1下離心10 min,取上清液在波長(zhǎng)517 nm處,測(cè)其吸光度A1;另取2mL待測(cè)樣品于EP管中,加入無(wú)水乙醇2 mL,反應(yīng)20 min,4 000 r·min-1下離心10min,取上清液在波長(zhǎng)517 nm處測(cè)其吸光度A2;以2 mL濃度為0.01 mmol·L-1的DPPH無(wú)水乙醇和2 mL無(wú)水乙醇反應(yīng)做為參照,其吸光度記為A0[9]。按照下式計(jì)算待測(cè)樣品對(duì)DPPH自由基的清除率:

      式中,K——對(duì)DPPH自由基的清除率,%;

      A0——2 mL濃度為mmol·L-1的DPPH無(wú)水乙醇溶液加2 mL無(wú)水乙醇時(shí)的吸光度;

      A1——2 mL濃度為mmol·L-1的DPPH無(wú)水乙醇溶液加2mL待測(cè)樣品的吸光度;

      A2——2 mL無(wú)水乙醇加2 mL待測(cè)樣品的吸光度。

      1.3.3 正交試驗(yàn)

      在預(yù)試驗(yàn)基礎(chǔ)上,選擇5種因素(溫度、時(shí)間、底物濃度、pH、加酶量)進(jìn)行正交試驗(yàn),選擇正交表L18(37)進(jìn)行試驗(yàn)設(shè)計(jì)。

      正交試驗(yàn)的因素與水平設(shè)計(jì)見(jiàn)表1。

      表1 正交試驗(yàn)的因素與水平設(shè)計(jì)Table1 Factor and level design of orthogonal experiment

      1.3.4 超濾分離

      米糠蛋白酶解液分別選用截留分子量為10 KDa和5 KDa的中空纖維膜對(duì)其進(jìn)行超濾,經(jīng)過(guò)預(yù)試驗(yàn)確定超濾條件為壓力0.1 MPa,溫度40℃,物料濃度3%,pH為8.0;分別收集不同分子量肽段的分級(jí)產(chǎn)物,測(cè)定每一組分的DPPH自由基清除率。

      1.3.5 Sephades G-25凝膠過(guò)濾層析

      將處理好的Sephades G-25用蒸餾水平衡后裝柱(1.0 cm×100 cm),米糠肽溶液先過(guò)0.22μm的微濾膜。柱層析條件為:上樣量為1.0 mL,流速為0.5 mL·min-1,樣品濃度為100 mg·mL-1,洗脫液為蒸餾水,在波長(zhǎng)220 nm處檢測(cè),分管收集,每管2mL,分別測(cè)定各峰的抗氧化活性。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 正交試驗(yàn)分析

      以DPPH自由基清除率為評(píng)價(jià)指標(biāo),進(jìn)行正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)。

      正交試驗(yàn)結(jié)果與分析見(jiàn)表2。

      表2 正交試驗(yàn)結(jié)果與分析Table2 Orthogonal test results and analysis

      從表2可以看出,各因素的極差R明顯不同,A因素的R值最大,其次為C因素。E因素的R值最小,因此各因素對(duì)酶解產(chǎn)物抗氧化活性的影響從大到小的順序依次為:A(溫度)>C(時(shí)間)>B(pH)>D(底物濃度)>E(加酶量)。正交試驗(yàn)表明,各因素最優(yōu)組合為:A2B3C2D2E3。最佳的酶解條件是:酶解溫度45℃,pH 9.0,時(shí)間60min,底物濃度3%,加酶量3 000 U·g-1。采用最優(yōu)試驗(yàn)參數(shù)制備米糠蛋白酶解物,并對(duì)其進(jìn)行分離純化。

      2.2 超濾分離

      超濾是一種加壓膜分離技術(shù),即在一定的壓力下,使小分子溶質(zhì)和溶劑穿過(guò)一定孔徑的特制濾膜,而大分子物質(zhì)不能透過(guò),留在膜的一邊,使其得到分離[6]。采用超濾膜設(shè)備將米糠蛋白酶解產(chǎn)物分成Mr≥10 KDa,5 KDa≤Mr≤10 KDa,Mr≤5 KDa三個(gè)組分。分別測(cè)定其DPPH自由基清除率,如圖1所示。

      由圖1可知,Mr≥10 KDa,5 KDa≤Mr≤10 KDa和Mr≤5 KDa三種米糠蛋白酶解組分對(duì)DPPH自由基都具有一定的清除能力。但是組分C即分子量≤5 KD的肽混合物的清除能力明顯高于其他兩種組分。

      2.3 Sephades G-25凝膠層析

      將超濾分離得到的組分C再經(jīng)Sephades G-25柱層析進(jìn)一步分離純化。Sephades G-25分離米糠蛋白抗氧化肽的洗脫曲線見(jiàn)圖2,Sephades G-25純化所得組分對(duì)DPPH自由基的清除率見(jiàn)表3。

      從圖2可以看出,有4個(gè)混合組分被發(fā)現(xiàn)??寡趸囼?yàn)結(jié)果表明,各組分抗氧化活性由大到小順序依次為:混合組分Ⅱ>混合組分Ⅰ>混合組分Ⅳ>混合組分Ⅲ,且這4個(gè)混合組分的DPPH自由基清除率均為63%以上。

      表3 SephadesG-25純化所得組分對(duì)DPPH自由基的清除率Table3 Clearance rate of Sephades G-25 purification components on DPPH free radicals

      3 結(jié)論

      通過(guò)正交試驗(yàn),得到米糠蛋白抗氧化肽的最優(yōu)工藝條件為:酶解溫度45℃,pH 9.0,時(shí)間60min,底物濃度3%,加酶量3 000 U·g-1。在米糠蛋白酶解產(chǎn)物中,Mr≤5 KDa組分的抗氧化活性最強(qiáng),其對(duì)DPPH自由基清除率為68.7%。通過(guò)Sephades G-25凝膠層析柱進(jìn)一步分離得到4個(gè)組分,它們的抗氧化活性由大到小的順序依次為:組分Ⅱ>組分Ⅰ>組分Ⅳ>組分Ⅲ。

      [1]陳正行,姚惠源,周素梅.米蛋白和米糠蛋白開(kāi)發(fā)利用[J].糧食與油脂,2002(4):6-9.

      [2]姚惠源,周素梅,王立.米糠與米糠蛋白質(zhì)的開(kāi)發(fā)利用[J].無(wú)錫輕工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,21(3):312-316.

      [3]陳正行.米糠:一種潛在的健康食品優(yōu)質(zhì)原料[J].糧食與飼料工業(yè),1999,27(10):20-25.

      [4]呂瑩果,張暉,王立,等.米糠資源的綜合利用[J].糧食與飼料工業(yè),2009,37(4):19-22.

      [5]Haman D Aging.A theory based on free radical and radiation chemistry[J].JGerontol,1956,11:298-300.

      [6]王亞林,劉國(guó)志.蛋白活性肽的制備工藝研究[J].糧食與飼料工業(yè),2003(6):46.

      [7]付巖松.米糠抗氧化肽對(duì)D-半乳糖致衰小鼠線粒體損傷的影響[D].沈陽(yáng):沈陽(yáng)農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.

      [8]鄭建仙.功能性食品:第二卷[M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,1995.

      [9]張君慧.大米蛋白抗氧化肽的制備分離純化和結(jié)構(gòu)鑒定[D].無(wú)錫:江南大學(xué),2009.

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