• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      線蟲(chóng)轉(zhuǎn)型發(fā)育和寄主識(shí)別的化學(xué)通訊研究進(jìn)展

      2013-04-11 01:13:59胡春祥蔣麗雅湯宗斌石敬夫趙莉藺
      生態(tài)學(xué)報(bào) 2013年7期
      關(guān)鍵詞:蟲(chóng)態(tài)隱桿感器

      張 賓,胡春祥,石 進(jìn),蔣麗雅,湯宗斌,石敬夫,趙莉藺

      (1.東北林業(yè)大學(xué)林學(xué)院,哈爾濱 150040;2.中國(guó)科學(xué)院動(dòng)物研究所農(nóng)業(yè)蟲(chóng)害鼠害綜合治理研究國(guó)家重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100101;3.安徽省國(guó)有林管理局,合肥 230001;4.安徽省林業(yè)有害生物防治檢疫局,合肥 230031;5.合肥市森林病蟲(chóng)害防治檢疫站,合肥 230031;6.安徽省全椒縣森林病蟲(chóng)害防治檢疫站,全椒 239500)

      線蟲(chóng)是一類(lèi)低等無(wú)脊椎動(dòng)物,在自然界分布很廣,占據(jù)了陸地和海洋的大部分生境[1]。一部分線蟲(chóng)可以獨(dú)立生存,稱(chēng)為自由生活線蟲(chóng);另一部分采用寄生策略,以植物和動(dòng)物作為寄主。線蟲(chóng)通常生活在土壤或寄生物中,沒(méi)有適宜的視覺(jué)或聽(tīng)覺(jué)系統(tǒng),接收環(huán)境信號(hào)的重要途徑是其精細(xì)的化學(xué)感受系統(tǒng)[2-5]。面對(duì)錯(cuò)綜復(fù)雜的外部環(huán)境,線蟲(chóng)能夠充分利用周?chē)沫h(huán)境信息,采取多種多樣的生存策略,完成生活史。由此可見(jiàn),感受系統(tǒng)的形成對(duì)于線蟲(chóng)的生存至關(guān)重要[6]。研究表明,線蟲(chóng)能夠通過(guò)嗅覺(jué)感受(識(shí)別揮發(fā)性物質(zhì))來(lái)引導(dǎo)其一系列行為:取食、交配、產(chǎn)卵和驅(qū)避有毒物質(zhì)、避免高種群密度等,最終得以持續(xù)生存[3-5]。在進(jìn)化過(guò)程中,化學(xué)感受系統(tǒng)越來(lái)越精細(xì),并已經(jīng)成為重要的神經(jīng)感受工具,不僅能導(dǎo)致線蟲(chóng)行為的改變,還能調(diào)控線蟲(chóng)的發(fā)育途徑。在不良環(huán)境中,線蟲(chóng)選擇由繁殖周期蟲(chóng)態(tài)轉(zhuǎn)型發(fā)育為滯育周期蟲(chóng)態(tài),以提高對(duì)不利環(huán)境的抗性[2,4-5]。

      目前,對(duì)線蟲(chóng)化學(xué)感受機(jī)制的研究越來(lái)越被人們所重視,也取得了一些突破性進(jìn)展,包括發(fā)育調(diào)控機(jī)制、寄主識(shí)別機(jī)制、化學(xué)感受機(jī)理等。

      1 化學(xué)通訊與線蟲(chóng)轉(zhuǎn)型發(fā)育

      線蟲(chóng)可以通過(guò)識(shí)別環(huán)境信號(hào)決定進(jìn)入兩種不同的發(fā)育周期:繁殖周期和擴(kuò)散周期(植物寄生線蟲(chóng)一般稱(chēng)為寄生期)。在適宜的生存環(huán)境中,線蟲(chóng)進(jìn)入繁殖周期,經(jīng)過(guò)3—4次蛻皮,發(fā)育為成蟲(chóng)。隨著環(huán)境惡化,環(huán)境信號(hào)和信息物質(zhì)誘導(dǎo)線蟲(chóng)改變自身的發(fā)育模式,進(jìn)入擴(kuò)散周期,從而使線蟲(chóng)具備長(zhǎng)期生存或移動(dòng)擴(kuò)散的特性,有機(jī)會(huì)轉(zhuǎn)移到新寄主,增加生存機(jī)會(huì)[7-8]。進(jìn)入擴(kuò)散周期能夠從根本上使寄生線蟲(chóng)的發(fā)育與適宜寄主的季節(jié)變換相一致[9]。

      Sommerville和Davey認(rèn)為,線蟲(chóng)發(fā)育從繁殖周期向擴(kuò)散周期轉(zhuǎn)化,提高了線蟲(chóng)的生存機(jī)會(huì)[8]。擴(kuò)散周期蟲(chóng)態(tài)(植物寄生線蟲(chóng)一般稱(chēng)為寄生期幼蟲(chóng))是轉(zhuǎn)移寄主、完成侵染循環(huán)所必需的侵染蟲(chóng)態(tài),依靠激活線蟲(chóng)體內(nèi)一種生存增強(qiáng)型信號(hào)途徑而形成[10-11]。

      線蟲(chóng)是否轉(zhuǎn)型進(jìn)擴(kuò)散周期蟲(chóng)態(tài)的首要條件就是化學(xué)信息感應(yīng)[8]。在環(huán)境信號(hào)的誘導(dǎo)刺激下,線蟲(chóng)分泌化學(xué)信息物質(zhì),并在個(gè)體間進(jìn)行信息交流。環(huán)境信號(hào)包括化學(xué)信息、溫度、種群密度等[8,12-13]。是否進(jìn)入擴(kuò)散周期發(fā)育階段的決定性因素主要是化學(xué)信息物質(zhì)濃度和持續(xù)時(shí)間[7]。在足夠濃度化學(xué)信息物質(zhì)持續(xù)刺激下,線蟲(chóng)啟動(dòng)特殊信號(hào)傳導(dǎo)途徑,改變體內(nèi)激素水平,并使系統(tǒng)代謝降低和形態(tài)過(guò)程改變,從而進(jìn)入擴(kuò)散周期,提高對(duì)惡劣環(huán)境的抗性[7,14]。

      線蟲(chóng)轉(zhuǎn)型發(fā)育并進(jìn)入擴(kuò)散周期的基本原理是一致的,擴(kuò)散周期蟲(chóng)態(tài)因線蟲(chóng)種類(lèi)不同而不同。秀麗隱桿線蟲(chóng)(Caenorhabditis elegans)的擴(kuò)散周期蟲(chóng)態(tài)是三齡幼蟲(chóng)JⅢ,誘導(dǎo)信息物質(zhì)屬于種內(nèi)信息素,調(diào)控因子是高溫、種群密度和食物缺乏[7],在信息素刺激下,分散型二齡幼蟲(chóng)JⅡ直接蛻皮形成JⅢ。植物寄生線蟲(chóng)松材線蟲(chóng)(Brusaphelenchus xylophilus)采取了另一種特殊生存策略[7],與秀麗隱桿線蟲(chóng)相對(duì)應(yīng)的兩個(gè)侵染蟲(chóng)態(tài)分別為分散型三齡線蟲(chóng)JⅢ和持久性四齡線蟲(chóng)JⅣ。JⅢ形成的誘導(dǎo)信息素是種內(nèi)信息素,調(diào)控因子是低溫、種群密度和食物缺乏,并不直接形成JⅣ,但能長(zhǎng)期生存。JⅢ蛻皮形成JⅣ的誘導(dǎo)信息素是媒介天牛的特異種間信息物質(zhì)[15-16]。動(dòng)物寄生線蟲(chóng)圓形線蟲(chóng)(Pristionchus pacificus)的生活史與秀麗隱桿線蟲(chóng)相似,不同于C.elegans的是,它形成擴(kuò)散蟲(chóng)態(tài)后進(jìn)入金龜子科甲蟲(chóng)(scarab beetles)體內(nèi),一直到甲蟲(chóng)死亡后,再取食甲蟲(chóng)尸體上腐生的微生物并繼續(xù)發(fā)育[17-18]。

      20世紀(jì)80年代以來(lái),調(diào)控線蟲(chóng)擴(kuò)散蟲(chóng)態(tài)形成的信息物質(zhì)鑒定一直是人們研究的重點(diǎn),但是,由于線蟲(chóng)個(gè)體微小和生存環(huán)境的特殊,分離技術(shù)瓶頸難以突破。直到2005年,Jeong等才分離鑒定出第1個(gè)線蟲(chóng)誘導(dǎo)滯育信息素:秀麗隱桿線蟲(chóng)誘導(dǎo)侵染蟲(chóng)態(tài)JⅢ形成的信息素:(2)-(6R)-(3,5-dihydroxy-6-methyltetrahydropyran-2-yloxy)heptanoic acid,屬于一種脂肪酸衍生物。這篇論文的發(fā)表為今后的相關(guān)研究指引了方向,此后很多報(bào)道都證明了茴糖脂肪酸衍生物可以引起秀麗隱桿線蟲(chóng)轉(zhuǎn)型[19]。

      2 化學(xué)通訊與線蟲(chóng)寄主識(shí)別

      線蟲(chóng)具有復(fù)雜、獨(dú)特的化學(xué)感應(yīng)機(jī)制,能識(shí)別繁雜的化學(xué)物質(zhì),并做出多種相應(yīng)的行為反應(yīng)[4-5]。運(yùn)動(dòng)是線蟲(chóng)侵染和取食的必要條件。寄生線蟲(chóng)在環(huán)境惡化時(shí)會(huì)進(jìn)入擴(kuò)散周期,形成一個(gè)甚至更多的侵染蟲(chóng)態(tài),進(jìn)行轉(zhuǎn)移寄主[4]。

      侵染蟲(chóng)態(tài)能夠成功識(shí)別寄主,并選擇適宜進(jìn)攻部位,甚至能夠產(chǎn)生朝向新寄主的跳躍行為[20-21]。在此過(guò)程中,寄主化學(xué)信號(hào)以及線蟲(chóng)化學(xué)感受扮演了重要的角色。線蟲(chóng)可以從眾多物質(zhì)中識(shí)別出一種目標(biāo)氣味[3]。植物寄生線蟲(chóng)大多生活在充滿(mǎn)空氣、含一定水分的土壤環(huán)境中。因此,影響寄主識(shí)別的化學(xué)信號(hào)主要包括揮發(fā)性和水溶性?xún)深?lèi)化合物[4,20]。其中,水溶性化合物能在土壤中緩慢釋放,提供短距離化學(xué)感受信息;揮發(fā)性物質(zhì)傳播迅速,比水溶性物質(zhì)擴(kuò)散率高4個(gè)數(shù)量級(jí),提供遠(yuǎn)距離化學(xué)信息[21]。線蟲(chóng)與昆蟲(chóng)、脊椎動(dòng)物類(lèi)似,能感受脂肪和芳香族化合物,包括醛、酯、酮、醇、羧酸、胺類(lèi)、氯化物和硫化物[4,22]。

      線蟲(chóng)寄主識(shí)別具有高度特異性[23]。不同寄主植物的根泌物對(duì)線蟲(chóng)的吸引有一定專(zhuān)化性,并有一些特異的寄主定位次生代謝物質(zhì),如馬鈴薯根浸出液能夠引誘馬鈴薯線蟲(chóng)(Globodera rostochiensis),并引起該線蟲(chóng)化感器的電生理反應(yīng)[24]。不同種類(lèi)線蟲(chóng)的化學(xué)趨性也有所不同。昆蟲(chóng)寄生線蟲(chóng)——嗜菌異小桿線蟲(chóng)(Heterorhabditis bacteriophora)對(duì)強(qiáng)烈引誘自由生活線蟲(chóng)——秀麗隱桿線蟲(chóng)的物質(zhì)沒(méi)有趨向反應(yīng)[22]。同種線蟲(chóng)不同齡期有時(shí)會(huì)表現(xiàn)不同的趨性。嗜菌異小桿線蟲(chóng)繁殖周期的引誘物質(zhì)包括乙醇、尿酸和CO2,而擴(kuò)散周期的侵染蟲(chóng)態(tài)被1-庚醇 (1-heptanol),1-辛醇 (1-octanol)和1-壬醇 (1-nonanol)強(qiáng)烈吸引[22,25]。馬鈴薯根浸出液對(duì)馬鈴薯線蟲(chóng)(Globodera rostochiensis)寄生期幼蟲(chóng)具有引誘作用,雄蟲(chóng)能識(shí)別并趨向于雌蟲(chóng)性信息素[24-25]。可以看到,寄生性線蟲(chóng)的化學(xué)趨性,尤其是擴(kuò)散周期侵染蟲(chóng)態(tài)的寄主識(shí)別具有很高的特異性[3,22,26]。但是,目前大部分化學(xué)信息物質(zhì)研究結(jié)果仍局限在一些普遍的引誘劑如CO2、鹽類(lèi)、乙酰膽堿、氨基酸等[27-29],特異性信息物質(zhì)成分很少被分離鑒定。

      2.1 直接識(shí)別

      自由生活線蟲(chóng)能夠直接感受環(huán)境中寄主或食物的大量水溶性和揮發(fā)性化合物。秀麗隱桿線蟲(chóng)在土壤中的化學(xué)趨向研究已達(dá)30多年[22]。研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),引誘物質(zhì)包括鹽離子 Na+、Li+、Cl-、OH-,氨基酸 (amino acids):賴(lài)氨酸、組氨酸、半胱氨酸,核苷酸 (nucleotides):cAMP、cGMP,生物素和一些揮發(fā)性物質(zhì):吡嗪(pyrazine),聯(lián)乙醯 (diacetyl)、安息香醛 (benzaldehyde)、2,4,5-三甲基噻唑 (2,4,5-trimethylthiazole)、異戊基乙醇 (isoamylalcohol)和2,3-戊二酮 (2,3-pentanedione)等[22,30-31]。很多分解有機(jī)質(zhì)的細(xì)菌作為秀麗隱桿線蟲(chóng)的食物,其代謝產(chǎn)物:醛、酯、酮、醇、羧酸和碳水化合物對(duì)秀麗隱桿線蟲(chóng)也具有強(qiáng)烈的吸引作用[32]。

      與自由生活線蟲(chóng)不同的是,寄生線蟲(chóng)必須調(diào)整它們的化學(xué)感受系統(tǒng),對(duì)寄主特異性信號(hào)進(jìn)行準(zhǔn)確定位,具有更為復(fù)雜、專(zhuān)一的化學(xué)感受機(jī)制[3]。

      植物寄生線蟲(chóng),大多屬于專(zhuān)性寄生,包括3個(gè)較大的目:三矛目(Triplonchida)、矛線目(Dorylaimida)和墊刃目(Tylenchida)[33]。其中,前兩個(gè)目的線蟲(chóng)屬于根外寄生,墊刃目線蟲(chóng)屬于體內(nèi)寄生。體內(nèi)寄生線蟲(chóng)與寄主之間具有最密切、復(fù)雜的關(guān)系[33]。

      大部分植物寄生線蟲(chóng)通過(guò)直接侵染植物根系來(lái)轉(zhuǎn)移寄主。在進(jìn)化過(guò)程中,有的種類(lèi)已經(jīng)形成與寄主細(xì)胞之間以復(fù)雜的協(xié)同進(jìn)化關(guān)系來(lái)維持長(zhǎng)久的寄生生境[13]。植物寄生線蟲(chóng)寄生期幼蟲(chóng)能通過(guò)對(duì)寄主特異指紋化學(xué)信息物作出準(zhǔn)確而快速的反應(yīng),使自身的寄生生活史與寄主植物生活史保持協(xié)調(diào)一致。寄生期幼蟲(chóng)定位寄主行為雖種間有所不同,但大部分屬于一種被動(dòng)擴(kuò)散[34],主要的化學(xué)趨向因子來(lái)自寄主[35]。其中,寄主根的伸長(zhǎng)區(qū)對(duì)線蟲(chóng)具有引誘作用[3,26,36]。

      2.2 間接識(shí)別

      2.2.1 昆蟲(chóng)病原線蟲(chóng)對(duì)植物信號(hào)的利用

      昆蟲(chóng)病原線蟲(chóng)主要包括斯氏線蟲(chóng)屬(Steinernema)和異小桿線蟲(chóng)屬(Heterorhabditis),具有更為嚴(yán)密的化學(xué)感受系統(tǒng)[4,22]。當(dāng)處于同一生活環(huán)境中,這兩個(gè)屬的廣食性昆蟲(chóng)病原線蟲(chóng)采取各自不同的識(shí)別寄主策略[37-38]。斯氏線蟲(chóng)屬采取消極“埋伏”策略,如當(dāng)小地老虎(Agrotis ipsilon)在根表層取食時(shí)小卷蛾斯氏線蟲(chóng)(Steinernema carpocapsae)直接進(jìn)行侵染[37];而異小桿線蟲(chóng)屬采用積極“巡航策略”(cruiser strategy),如異小桿線蟲(chóng)(Heterorhabditis bacteriophora)等進(jìn)行寄主定位時(shí),并不直接趨向寄主昆蟲(chóng),而是在土壤中搜索遠(yuǎn)距離深土層的昆蟲(chóng)寄主葡萄根象甲(Otiorhynchus sulcatus)[37]。異小桿線蟲(chóng)能對(duì)植物以及植物與昆蟲(chóng)的混合體產(chǎn)生聚集反應(yīng),而對(duì)昆蟲(chóng)本身并無(wú)明顯反應(yīng),說(shuō)明昆蟲(chóng)寄生線蟲(chóng)首先遠(yuǎn)距離識(shí)別昆蟲(chóng)的寄主植物,尤其是昆蟲(chóng)取食過(guò)的寄主植物,然后近距離侵染寄生昆蟲(chóng)[39-40]。這樣,異小桿線蟲(chóng)把植物根作為一條“高速路”,接近并侵染深土層的多種昆蟲(chóng)[22]。

      2005年Rasmann等在《Nature》報(bào)道了植物根中對(duì)昆蟲(chóng)寄生線蟲(chóng)具有引誘作用的化學(xué)物質(zhì)。玉米根葉甲(Diabrotica virgifera virgifera LeConte)幼蟲(chóng)取食后,玉米根釋放出的石竹烯(E)-caryophyllene能夠吸引遠(yuǎn)距離異小桿線蟲(chóng),進(jìn)而能夠使線蟲(chóng)近距離侵染玉米根葉甲[41]。這是首次從化學(xué)分子水平闡明了昆蟲(chóng)寄生線蟲(chóng)、昆蟲(chóng)和植物之間的化學(xué)通訊。

      2.2.2 植物寄生線蟲(chóng)對(duì)昆蟲(chóng)信號(hào)的利用

      在動(dòng)物界,線蟲(chóng)和昆蟲(chóng)是種群數(shù)量占優(yōu)勢(shì)的兩大類(lèi)群。線蟲(chóng)與昆蟲(chóng)之間的相互關(guān)系也構(gòu)成了生態(tài)系統(tǒng)多樣性種間聯(lián)系的一個(gè)極其有意義的部分。大多數(shù)昆蟲(chóng)體內(nèi)具有一個(gè)適合線蟲(chóng)移動(dòng)的微環(huán)境,線蟲(chóng)可以在其中取食、移動(dòng)和棲息[42]。線蟲(chóng)和昆蟲(chóng)的關(guān)系,除了寄生(以昆蟲(chóng)為食物)之外,還包括攜帶關(guān)系(昆蟲(chóng)作為傳播媒介,并不提供營(yíng)養(yǎng))和攜帶兼營(yíng)養(yǎng)關(guān)系(昆蟲(chóng)作為傳播媒介,死亡后又為線蟲(chóng)提供營(yíng)養(yǎng))[42]。

      植物寄生線蟲(chóng)與昆蟲(chóng)之間的攜帶關(guān)系最為特殊,傘滑刃屬線蟲(chóng)的侵染需要鞘翅目昆蟲(chóng)作為攜帶者[43]。其中,松材線蟲(chóng)(Bursaphelenchus xylophilus(Steiner and Buhrer)Nickle)、擬松材線蟲(chóng)(B.mucronatus)、偽傘滑刃線蟲(chóng) (B.fraudulentus)和錐尾傘滑刃線蟲(chóng)(B.conicaudatus)被稱(chēng)為“xylophilus group”[44]。“xylophilus group”并不象大多數(shù)植物寄生線蟲(chóng),直接識(shí)別定位新寄主,進(jìn)行被動(dòng)擴(kuò)散,而是依靠溝脛天牛族 (Lamiini)天牛的攜帶,間接傳播到新寄主?!皒ylophilus group”寄生期四齡幼蟲(chóng)能夠準(zhǔn)確定位并大量聚集在天牛體內(nèi)。天牛作為傳播媒介并不提供營(yíng)養(yǎng)?!皒ylophilus group”起源于共同的祖先,并與溝脛天牛族之間形成特殊的共生關(guān)系[45-51]。

      生物之間的共生關(guān)系分為細(xì)胞內(nèi)共生、有機(jī)質(zhì)內(nèi)共生、種間共生和種群間共生關(guān)系[52]。從進(jìn)化角度上,種群間的共生關(guān)系屬于最為高級(jí)的共生關(guān)系[45]?!皒ylophilus group”與媒介天牛之間的互惠共利就屬于一類(lèi)種群間的共生關(guān)系[52]。Pristionchus屬線蟲(chóng)和金龜子、馬鈴薯甲蟲(chóng)之間是攜帶兼營(yíng)養(yǎng)關(guān)系[42]。人們?cè)谖锓N進(jìn)化領(lǐng)域?qū)@種關(guān)系的研究比較活躍[53]。這類(lèi)線蟲(chóng)嗅覺(jué)系統(tǒng)高度多樣化,涉及調(diào)控線蟲(chóng)、寄主之間的相互作用。Pristionchu屬線蟲(chóng)對(duì)昆蟲(chóng)特異信息物質(zhì)及環(huán)境中的植物揮發(fā)物表現(xiàn)出獨(dú)特的化學(xué)趨向,與秀麗隱桿線蟲(chóng)相比,無(wú)論是引誘劑的種類(lèi),還是線蟲(chóng)反應(yīng)速度、方式和反應(yīng)的濃度范圍都有所不同[42]。

      3 線蟲(chóng)化學(xué)感受機(jī)理與信號(hào)傳遞

      嗅覺(jué)系統(tǒng)能夠使生物發(fā)現(xiàn)并鑒別成千上萬(wàn)種分子,尤其是有機(jī)分子。無(wú)論是低等動(dòng)物——線蟲(chóng),還是高等動(dòng)物——人,對(duì)有機(jī)物具有相似的基本感受機(jī)制[54]。最近人們應(yīng)用電生理學(xué)技術(shù)分析線蟲(chóng)對(duì)不同化學(xué)刺激的反應(yīng)。電生理學(xué)分析表明,線蟲(chóng)對(duì)化學(xué)信息物質(zhì)識(shí)別的差異是由于化學(xué)感受反應(yīng)的差異造成的[55]。

      3.1 化學(xué)感受系統(tǒng)

      線蟲(chóng)化學(xué)感受器官主要包括化感器和尾感器。位于線蟲(chóng)尾部的尾感器在分類(lèi)學(xué)上非常重要。線蟲(chóng)因有無(wú)尾感器被分成兩個(gè)主要類(lèi)群:尾感器綱和無(wú)尾感器綱。大部分植物寄生線蟲(chóng)屬于尾感器綱,少數(shù)屬于無(wú)尾感器綱[4,22]。

      線蟲(chóng)頭部?jī)蓚?cè)唇的外側(cè)各具有一個(gè)側(cè)器,被稱(chēng)為化感器?;衅魇亲钪匾鴱?fù)雜的感覺(jué)器官,是線蟲(chóng)頭部側(cè)面特化的囊狀構(gòu)造,神經(jīng)末梢與腺細(xì)胞的聯(lián)合體,通過(guò)突出的孔與外界向通。每個(gè)化感器包括一個(gè)腺體鞘細(xì)胞、一個(gè)突出的孔和一些樹(shù)狀突。樹(shù)狀突浸泡在鞘細(xì)胞表面產(chǎn)生的分泌液中[4,22]。大多數(shù)線蟲(chóng)包含7個(gè)樹(shù)狀突。其中2—5個(gè)來(lái)自同一束化感器神經(jīng)元,并在線蟲(chóng)頭部形成其它結(jié)構(gòu)[54]。

      化感器孔是體表的一個(gè)內(nèi)陷物,呈囊狀、管狀、螺旋狀、圓盤(pán)狀等各種形態(tài),是線蟲(chóng)分類(lèi)的重要依據(jù)之一。

      化感器腺體鞘細(xì)胞可以產(chǎn)生分泌物。分泌物成分因線蟲(chóng)種類(lèi)不同而不同,包含各種特殊功能糖蛋白凝集素。寄生線蟲(chóng)分泌物中含有乙酰膽堿酶[55],是神經(jīng)生理學(xué)上重要的神經(jīng)脈沖傳導(dǎo)物質(zhì)。

      線蟲(chóng)神經(jīng)元的結(jié)構(gòu)簡(jiǎn)單,只有一個(gè)或兩個(gè)不分叉的突起。形成或接受突觸連結(jié),但其基本功能與其他動(dòng)物相似,具有主要的神經(jīng)遞質(zhì)(乙酰膽堿、五羥色胺、多巴胺、谷氨酰胺等)[56]。

      3.1.1 化學(xué)感受系統(tǒng)在線蟲(chóng)不同發(fā)育階段的變化

      Matsuura等認(rèn)為,隨著發(fā)育進(jìn)程的改變,線蟲(chóng)化學(xué)感受機(jī)制發(fā)生了相應(yīng)的改變。許多線蟲(chóng)化感器發(fā)生結(jié)構(gòu)改變能夠?yàn)殡A段性特殊功能服務(wù)。尤其是繁殖和擴(kuò)散等不同生活周期之間具有不同的化感器結(jié)構(gòu)和功能[57]。超微結(jié)構(gòu)能夠顯示出化感器結(jié)構(gòu)和功能的變化。人們可以把化感器發(fā)揮作用的齡期作為感覺(jué)干擾防治的目標(biāo)。例如馬鈴薯線蟲(chóng)(Globodera rostochiensis)沒(méi)有孵化時(shí)化感器沒(méi)有分泌物質(zhì),處于皺縮狀態(tài),對(duì)馬鈴薯根浸提液沒(méi)有反應(yīng)。一旦卵孵化,化感器便具備定位寄主的功能。秀麗隱桿線蟲(chóng)幼蟲(chóng)和成蟲(chóng)的神經(jīng)系統(tǒng)也是不同的[3,57]。

      3.1.2 化學(xué)感受系統(tǒng)控制線蟲(chóng)識(shí)別化學(xué)信息物質(zhì)

      秀麗隱桿線蟲(chóng)化感器包括11對(duì)化學(xué)感受神經(jīng)元[20,58]。通過(guò)激光突變鑒定針對(duì)揮發(fā)性和水溶性物質(zhì)的神經(jīng)元發(fā)現(xiàn),識(shí)別水溶性物質(zhì)的8對(duì)神經(jīng)元具有簡(jiǎn)單的單個(gè)或兩個(gè)感覺(jué)毛端,具有兩種不同的輸出途徑。識(shí)別大多數(shù)揮發(fā)性物質(zhì)的3對(duì)神經(jīng)元AWA、AWB、AWC,具有精細(xì)的類(lèi)似翅膀、平坦的感覺(jué)毛端,附在化感器腺體鞘細(xì)胞上。附屬纖毛對(duì)感受揮發(fā)性物質(zhì)起重要作用,較大的表面積使這3對(duì)神經(jīng)元能充分接收揮發(fā)性物質(zhì)信號(hào)。其中,AWA和AWC可以識(shí)別引誘物質(zhì),而AWB識(shí)別忌避物質(zhì)[54,59-60]。最近發(fā)現(xiàn)BAG神經(jīng)元負(fù)責(zé)部分寄主識(shí)別功能[29]。

      3.1.3 化學(xué)感受系統(tǒng)控制線蟲(chóng)進(jìn)入擴(kuò)散周期

      秀麗隱桿線蟲(chóng)控制擴(kuò)散蟲(chóng)態(tài)形成的基因缺失體在化感器超微結(jié)構(gòu)上受損,意味著化感器調(diào)節(jié)擴(kuò)散蟲(chóng)態(tài)的形成[61]。線蟲(chóng)通常利用化學(xué)感受和溫度感受來(lái)控制擴(kuò)散周期形成[62]。秀麗隱桿線蟲(chóng)侵染蟲(chóng)態(tài)形成過(guò)程的分子機(jī)制已得到廣泛研究[63],有兩類(lèi)神經(jīng)元發(fā)揮作用:一類(lèi)是化學(xué)感受神經(jīng)元,識(shí)別種內(nèi)信息物質(zhì);另一類(lèi)是溫度感受神經(jīng)元,同時(shí)也具有化感功能。犬鉤口線蟲(chóng)(Ancylostoma caninum)包含翅狀和指狀化感神經(jīng)元。指狀化感神經(jīng)元是主要的溫度感受器。翅狀神經(jīng)元ADF和ASI控制線蟲(chóng)侵染蟲(chóng)態(tài)形成并進(jìn)入擴(kuò)散周期。成對(duì)的ASJ神經(jīng)元控制從擴(kuò)散周期恢復(fù)發(fā)育狀態(tài),轉(zhuǎn)入繁殖周期[54]。ASI神經(jīng)元中有4種受體srbc-64、srbc-66、srg-36和 srg-37被鑒定參與感受轉(zhuǎn)型信息素[64-65]。

      3.2 信號(hào)傳遞過(guò)程

      線蟲(chóng)通過(guò)對(duì)外界化學(xué)信號(hào)的接收、傳遞,進(jìn)而改變自身的行為和發(fā)育。

      化學(xué)感受生理生化過(guò)程在秀麗隱桿線蟲(chóng)中研究的比較深入,包括以下兩個(gè)步驟[54]:(1)化學(xué)信號(hào)分子與化感器分泌蛋白相接觸并結(jié)合[3],這些分泌蛋白的特殊性質(zhì)能夠增強(qiáng)線蟲(chóng)嗅覺(jué)感受效果;(2)通過(guò)特殊轉(zhuǎn)換途徑,外界化學(xué)分子信息轉(zhuǎn)換為神經(jīng)信號(hào),被線蟲(chóng)化感器神經(jīng)元識(shí)別:神經(jīng)元和化學(xué)信息分子之間相互作用,刺激GTP聯(lián)接的蛋白(G蛋白)活性,通過(guò)G蛋白信號(hào)途徑轉(zhuǎn)換為神經(jīng)信號(hào)[4,22]。

      化學(xué)感受信號(hào)轉(zhuǎn)換途徑的第1步是化學(xué)配合基與受體蛋白的偶聯(lián)[54];第2步是7個(gè)跨膜域受體,如ODR-10與G蛋白相偶聯(lián)[66]。AWA中聯(lián)乙醯識(shí)別模型為:聯(lián)乙醯被ODR-10受體蛋白發(fā)現(xiàn),再通過(guò)ODR-3 G蛋白與包含OSM-9的通道相連。

      3.3 化學(xué)感受機(jī)理

      秀麗隱桿線蟲(chóng)具有簡(jiǎn)單而靈敏的化學(xué)感受系統(tǒng)。老鼠識(shí)別上千種化學(xué)物質(zhì)需要107個(gè)神經(jīng)元,果蠅發(fā)現(xiàn)同樣多的化學(xué)物質(zhì)需要1000個(gè)神經(jīng)元,而秀麗隱桿線蟲(chóng)能夠利用20—30個(gè)神經(jīng)元來(lái)發(fā)現(xiàn)上千種化學(xué)物質(zhì)[54]。

      很多受體蛋白都出現(xiàn)在感覺(jué)毛中。現(xiàn)在已經(jīng)發(fā)現(xiàn)odr基因系列是線蟲(chóng)識(shí)別揮發(fā)性物質(zhì)的受體蛋白特殊基因組,大部分涉及內(nèi)嗅覺(jué)神經(jīng)元的變化。

      秀麗隱桿線蟲(chóng)能夠鑒別同一個(gè)神經(jīng)元接收到的很多氣味信號(hào),單個(gè)神經(jīng)元能表達(dá)多種受體[54]。例如,聯(lián)乙醯和吡嗪都是秀麗隱桿線蟲(chóng)AWA神經(jīng)元能感受的引誘劑。吡嗪存在情況下,線蟲(chóng)依然能夠?qū)σ幌盗刑荻鹊穆?lián)乙醯產(chǎn)生反應(yīng),意味著聯(lián)乙醯和吡嗪各自具有特異受體[67]。

      秀麗隱桿線蟲(chóng)一種氣味分子被成對(duì)神經(jīng)元中表達(dá)的單個(gè)受體識(shí)別,來(lái)驅(qū)動(dòng)單一信號(hào)輸出。同樣的受體能夠在很多神經(jīng)元中表達(dá),單個(gè)氣味分子刺激具有多個(gè)受體識(shí)別。聯(lián)乙醯受體ODR-10能夠識(shí)別那些與聯(lián)乙醯結(jié)構(gòu)相同的物質(zhì),并且聯(lián)乙醯能夠被其它受體識(shí)別[67-68]。

      理論上來(lái)講,這樣一個(gè)“組合譯碼”方案應(yīng)該比單個(gè)受體識(shí)別提供更多的氣味信息?;瘜W(xué)感受是一個(gè)至關(guān)重要的收集信息的方式。因?yàn)榫€蟲(chóng)缺乏復(fù)雜的大腦,需在神經(jīng)外圍進(jìn)行更多的處理和控制。也許大量受體和G蛋白能夠使每一個(gè)單個(gè)神經(jīng)元在內(nèi)外環(huán)境聯(lián)系中更好地適應(yīng)外界環(huán)境。秀麗隱桿線蟲(chóng)很可能利用混合譯碼來(lái)翻譯自然混合氣味的刺激[54]。

      不同動(dòng)物之間化學(xué)感受機(jī)制很類(lèi)似。雖然精密度和復(fù)雜程度有所不同,但是哺乳動(dòng)物和秀麗隱桿線蟲(chóng)具有相近數(shù)量的受體[54]。隨著進(jìn)化,化學(xué)感受受體已經(jīng)各自成倍增加。這些受體基因能夠在基因組中成簇出現(xiàn),意味著它們的形成具有同樣的機(jī)制?;蚪M中G蛋白偶聯(lián)的受體基因首建者特別易于復(fù)制和突變[69]。隨著這些基因快速?gòu)?fù)制和多樣化,它們產(chǎn)生出大量不同的化學(xué)感受受體,為化學(xué)感受系統(tǒng)提供了很大的識(shí)別能力[54]。線蟲(chóng)和脊椎動(dòng)物會(huì)利用大量的G蛋白與繁多的族受體偶聯(lián)來(lái)發(fā)現(xiàn)化學(xué)信號(hào)。不同點(diǎn)在于受體種類(lèi),以及使用的能量分別為cGMP和cAMP[54]。

      與線蟲(chóng)相比,脊椎動(dòng)物每個(gè)神經(jīng)元只能表達(dá)一種嗅覺(jué)受體[70-71]。脊椎動(dòng)物受體在神經(jīng)元連接網(wǎng)絡(luò)中起作用。所有嗅覺(jué)神經(jīng)元對(duì)于同一種突觸后靶標(biāo)表達(dá)一種特殊的受體反應(yīng),通過(guò)受體表達(dá)的改變進(jìn)行調(diào)控[72-73]。而秀麗隱桿線蟲(chóng)受體還沒(méi)有發(fā)現(xiàn)在神經(jīng)元連接網(wǎng)絡(luò)起重要作用[54,60]。

      4 線蟲(chóng)化學(xué)通訊研究應(yīng)用

      植物寄生線蟲(chóng)在全世界范圍造成巨大經(jīng)濟(jì)損失。目前常用的防治線蟲(chóng)的方法包括間作輪作,殺線蟲(chóng)劑應(yīng)用和培育抗性品種,但都有一定局限性[74]。急需尋找和開(kāi)發(fā)新型的、更為有效的控制策略[75]。

      近年來(lái)隨著線蟲(chóng)化學(xué)感受機(jī)制研究的深入,讓人們?cè)絹?lái)越認(rèn)識(shí)到化學(xué)通訊應(yīng)用在線蟲(chóng)防治中的巨大潛力,認(rèn)為化學(xué)通訊觀念的應(yīng)用將引發(fā)一系列新的防治措施[3]。

      植物和寄生線蟲(chóng)之間互作機(jī)制研究的逐步深入,為防治線蟲(chóng)病害提供了許多新思路。在生活史的特殊時(shí)期例如寄主選擇、尋找食物源或?qū)ふ遗渑紩r(shí),線蟲(chóng)對(duì)化學(xué)感受干擾尤其敏感。結(jié)合線蟲(chóng)的獨(dú)特生活史,釋放天然化學(xué)信息物,如線蟲(chóng)性信息素或寄主釋放物,以達(dá)到人為干擾線蟲(chóng)行為的目的。性引誘劑香蘭酸作為田間生物控制因子來(lái)控制大豆孢囊線蟲(chóng)(Heterodera glycines);利用CO2的釋放來(lái)增加捕食線蟲(chóng)真菌顆粒劑的使用效率;調(diào)節(jié)溫度和CO2梯度來(lái)增加貝爾曼漏斗法的提取效率;應(yīng)用凝結(jié)素(lectins)來(lái)阻斷化學(xué)感受功能;利用硝酸銨(ammonium nitrate)和其它忌避劑鹽類(lèi)來(lái)保護(hù)植物的根;應(yīng)用引誘劑丹寧酸(tannic acid)放入土壤來(lái)作為線蟲(chóng)干擾劑;通過(guò)間作另一種植物,釋放的刺激物散發(fā)到生境中能夠擾亂線蟲(chóng)對(duì)寄主釋放氣味的識(shí)別。各種植物根滲出液的混合物能夠減少(R.reniformis)對(duì)番茄根的侵染[76]。

      線蟲(chóng)作為一類(lèi)簡(jiǎn)單的模式動(dòng)物,在進(jìn)化過(guò)程中形成了精細(xì)的化學(xué)感受系統(tǒng),能夠通過(guò)識(shí)別周?chē)沫h(huán)境信息物質(zhì)對(duì)行為和發(fā)育狀態(tài)進(jìn)行調(diào)整。其化學(xué)通訊研究對(duì)于揭示生物間聯(lián)系和個(gè)體發(fā)育機(jī)制具有特殊意義。但是線蟲(chóng)化學(xué)生態(tài)學(xué)整體研究發(fā)展緩慢,分離技術(shù)不成熟,種特異性信息物質(zhì)難以被鑒定。進(jìn)而使得神經(jīng)生物學(xué)研究遭到了一定的阻力,直到近兩年才有所突破。兩篇具有代表性的論文在《Nature》上的發(fā)表[12,41],充分表明了線蟲(chóng)化學(xué)通訊研究的重要意義,也說(shuō)明線蟲(chóng)化學(xué)生態(tài)學(xué)逐漸進(jìn)入了迅速發(fā)展時(shí)期,為今后的研究指引了方向,提供了必要的技術(shù)和理論參考。

      近年來(lái)化學(xué)通訊觀念被應(yīng)用于松材線蟲(chóng)(Bursaphelenchus xylophilus)的取樣和在樹(shù)體內(nèi)的空間分布研究中[77-79],為線蟲(chóng)的取樣提供了新的思路。盡管如此,化學(xué)通訊在線蟲(chóng)綜合治理措施中還沒(méi)有得到大面積應(yīng)用,在線蟲(chóng)調(diào)查、監(jiān)測(cè)、檢疫,甚至防治具有很大的發(fā)展空間和潛力。而且現(xiàn)有基礎(chǔ)研究和實(shí)驗(yàn)技術(shù)不能全面評(píng)價(jià)新型治理方法的潛力,還需要深入研究天然化學(xué)物質(zhì)對(duì)線蟲(chóng)神經(jīng)系統(tǒng)的影響,了解生物控制和環(huán)境生態(tài)機(jī)理,發(fā)展生物控制技術(shù)。

      線蟲(chóng)化學(xué)通訊研究的基礎(chǔ)和前提就是對(duì)特異性信息物質(zhì)的分離鑒定。這需要多學(xué)科的交叉,并引進(jìn)氣相色譜、高效液相色譜、質(zhì)譜和核磁共振等精密分析儀器用于昆蟲(chóng)信息素、神經(jīng)傳遞素、激素和類(lèi)固醇的分離鑒定,為線蟲(chóng)化學(xué)通訊研究服務(wù)。

      [1]Poinar G O Jr.The natural history of nematodes.Englewood Cliffs:Prentice-Hall,1983.

      [2]Huettel R N.Chemical communicators in Nematodes.Journal of Nematology,1986,18(1):3-8.

      [3]Perry R N.Chemoreception in plant parasitic nematodes.Annual Review of Phytopathology,1996,34(1):181-199.

      [4]O'Halloran D M,Burnell A M.An investigation of chemotaxis in the insect parasitic nematode Heterorhabditis bacteriophora.Parasitology,2003,127(4):375-385.

      [5]Bargmann C I.Chemosensation in C.elegans//The C.Elegans Research Community,ed.WormBook.2006.http://www.wormbook.org.

      [6]Lessing D,Carlson J R.Chemosensory behavior:the path from stimulus to response.Current Opinion in Neurobiology,1999,9(6):766-771.

      [7]Riddle D L,Georgi L L.Advances in research on Caenorhabditis elegans:application to plant parasitic nematodes.Annual Review of Phytopathology,1990,28(1):247-269.

      [8]Sommerville R I,Davey K G.Diapause in parasitic nematodes:a review.Canadian Journal of Zoology,2002,80(11):1817-1840.

      [9]Michel J F.Arrested development of nematodes and some related phenomena.Advances in Parasitology,1974,12:279-366.

      [10]Vanfleteren J R,Braeckman B P.Mechanisms of life span determination in Caenorhabditis elegans.Neurobiology of Aging,1999,20(5):487-502.

      [11]Braeckman B P,Vanfleteren J R.Genetic control of longevity in C.elegans.Experimental Gerontology,2007,42(1/2):90-98.

      [12]Jeong P Y,Jung M,Yim Y H,Kim H,Park M,Hong E,Lee W,Kim Y H,Kim K,PaikY K.Chemical structure and biological activity of the Caenorhabditis elegans dauer-inducing pheromone.Nature,2005,433(7025):541-545.

      [13]Olsen D P,Phu D,Libby L J M,Cormier J A,Montez K M,Ryder E F,Politz S M.Chemosensory control of surface antigen switching in the nematode Caenorhabditis elegans.Genes,Brain and Behavior,2007,6(3):240-252.

      [14]Rea S L.Metabolism in the Caenorhabditis elegans Mit mutants.Experimental Gerontology,2005,40(11):841-849.

      [15]Linit M J.Nematode-vector relationships in the pine wilt disease system.Journal of Nematology,1988,20(2):227-235.

      [16]Dwinell L D.The pinewood nematode:regulation and mitigation.Annual Review of Phytopathology,1997,35:153-166.

      [17]Ogawa A,Streit A,Antebi A,Sommer R J.A Conserved Endocrine mechanism controls the formation of dauer and infective larvae in nematodes.Current Biology,2009,19(1):67-71.

      [18]Kwon E S,Narasimhan S D,Yen K,Tissenbaum H A.A new DAF-16 isoform regulates longevity.Nature,2010,466(7305):498-502.

      [19]Butcher R A,F(xiàn)ujita M,Schoreder F C,Clardy J.Small-molecule pheromones that control dauer development in Caenorhabditis elegans.Nature Chemical Biology,2007,3(7):420-422.

      [20]Bargmann C I,Mori I.Chemotaxis and thermotaxis//Riddle D L,Blumenthal T,Meyer B J,Preiss J R,eds.C.Elegans II.Cold Spring,New York:Harbor Press,1997:717-738.

      [21]Chen Z X,Chen S Y,Dickson D W.Nemotology:Advance and prospect1:Morphology,physiology and ecology of nematode.Beijing:Tsinghua University Press,2004.

      [22]O'Halloran D M,F(xiàn)itzpatrick D A,Burnell A M.The chemosensory system of Caenorhabditis elegans and other nematodes//Dicke M,Takken W,eds.Chemical Ecology:From Gene to Ecosystem.Netherlands:Springer,2006:71-88.

      [23]Saux R L,Quénéhevé P.Differential chemotactic responses of two plant-parasitic nematodes,Meloidogyne incognita and Rotylenchulus reniformis,to some inorganic ions.Nematology,2002,4(1):99-105.

      [24]Clarke A J,Hennessy J.Movement of Globodera rostochiensis(Wollenweber)juveniles stimulated by potato-root exudate.Nematologica,1984,30(2):206-212.

      [25]Riga E,Perry R N,Barrett J,Johnston M R L.Electrophysiological responses of males of the potato cyst nematodes,Globodera rostochiensis and G.pallida,to their sex pheromones.Parasitology,1996,112(2):239-246.

      [26]Zuckerman B M,Jansson H B.Nematode chemotaxis and possible mechanisms of host/prey recognition.Annual Review of Phytopathology,1984,22:95-113.

      [27]Rolfe R N,Barrett J,Perry R N.Analysis of chemosensory responses of second stage juveniles of Globodera rostochiensis using electrophysiological techniques.Nematology,2000,2(5):523-533.

      [28]Brown F D,D'Anna I,Sommer R J.Host-finding behaviour in the nematode Pristionchus pacificus.Proceedings of the National Academy of Sciences,2011,278(1722):3260-3269.

      [29]Hallem E A,Dillman A R,Hong A V,Zhang Y J,Yano J M,DeMarco S F,Sternberg P W.A sensory code for host seeking in parasitic nematodes.Current Biology,2011,21(5):377-383.

      [30]Tajima T,Watanabe N,Kogawa Y,Takiguchi N,Kato J,Ikeda T,Kuroda A,Ohtake H.Chemotaxis of the nematode Caenorhabditis elegans toward cycloheximide and quinine hydrochloride.Journal of Bioscience and Bioengineering,2001,91(3):322-324.

      [31]Shingai R,Wakabayashi T,Sakata K,Matsuura T.Chemotaxis of Caenorhabditis elegans during simultaneous presentation of two water-soluble attractants,l-lysine and chloride ions.Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular and Integrative Physiology,2005,142(3):308-317.

      [32]Sch?ller C,Molin S,Wilkins K.Volatile metabolites from some gram-negative bacteria.Chemosphere,1997,35(7):1487-1495.

      [33]Tytgat T,De Meutter J,Gheysen G,Coomans A.Sedentary endoparasitic nematodes as a model for other plant parasitic nematodes.Nematology,2000,2(1):113-121.

      [34]Prot J C.Migration of plant-parasitic nematodes towards plant roots.Revue de Nématologie,1980,3(2):305-318.

      [35]Riga E.Sensory responses of plant parasitic nematodes to semiochemicals.Nematology Monographs and Perspectives,2004,2:695-706.

      [36]Zhao X W,Schmitt M,Hawes M C.Species-dependent effects of border cell and root tip exudates on nematode behavior.Phytopathology,2000,90(11):1239-1245.

      [37]Kaya H K,Burlando T M,Thruston G S.Two entomopathogenic nematode species with different search strategies for insect suppression.Environmental Entomology,1993,22(4):859-864.

      [38]Grewal P S,Lewis E E,Gaugler R,Campbell J F.Host finding behaviour as a predictor of foraging strategy in entomopathogenic nematodes.Parasitology,1994,108(2):207-215.

      [39]van Tol R W H M,van Der Sommen A T C,Boff M I C,van Bezooijen J,Sabelis M W,Smits P H.Plants protect their roots by alerting the enemies of grubs.Ecology Letters,2001,4(4):292-294.

      [40]Boff M I C,van Tol R H W M,Smits P H.Behavioural response of Heterorhabditis megidis towards plant roots and insect larvae.BioControl,2002,47(1):67-83

      [41]Rasmann S,K?llner T G,Degenhardt J,Hiltpold I,Toepfer S,Kuhlmann U,Gershenzon J,Turlings T C J.Recruitment of entomopathogenic nematodes by insect-damaged maize roots.Nature,2005,434(7034):732-737.

      [42]Hong R L,Sommer R J.Chemoattraction in Pristionchus nematodes and implications for insect recognition.Current Biology,2006,16(23):2359-2365.

      [43]Giblin R M.Association of Bursaphelenchus sp.(Nematoda:Aphefenchoididae)with nitidulid beetles(Coleoptera:Nitidulidae).Revue de Nématologie,1985,8(4):369-375.

      [44]Kanzaki N,F(xiàn)utai K.A PCR primer set for determination of phylogenetic relationship of Bursaphelenchus species within the xylophilus group.Nematology,2002,4(1):35-41.

      [45]Kanzaki N,F(xiàn)utai K.Life History of Bursaphelenchus conicaudatus(Nematoda:Aphelenchoididae)in relation to the yellow-spotted longicorn beetle,Psacothea hilaris(Coleoptera:Cerambycidae).Nematology,2001,3(5):473-479.

      [46]Giblin-Davis R M,Davies K A,Morris K,Thomas W K.Evolution of parasitism in insect-transmitted plant nematodes.Journal of Nematology,2003,35(2):133-141.

      [47]Michod R E.Individuality,immortality,and sex//Keller L,ed.Levels of Selection in Evolution:Monographs in Behavior and Ecology.New Jersey:Princeton University Press,1999:53-74.

      [48]Miyazaki M,Oda K,Yamaguchi A.Behavior of Bursaphelenchus lignicolus to unsaturated fatty acids.Journal of the Japan Wood Research Society,1977,23(5):254-261.

      [49]Bolla J A,Bramble J,Bolla R I.Attraction of Bursaphelenchus xylophilus,Pathotype MPS-1,to Monochamus carolinensis larvae.Japanese Journal of Nematology,1989,19:32-37.

      [50]Chen X Y,Xu R M,Xie B Y.The role of chemical communication in the infection and spread of pine wood nematodes(Bursaphelenchus xylophilus).Acta Ecologica Sinica,2005,25(2):339-345.

      [51]Necibi S,Linit M J.Effect of Monochamus carolinensis on Bursaphelenchus xylophilus dispersal stage formation.Journal of Nematology,1998,30(2):246-254.

      [52]Giblin-Davis R M.Nematodes as mutualists:where and how did these associations evolve?Nematology Monographs and Perspectives,2004,2:383-394.

      [53]Simpson P.Evolution of development in closely related species of flies and worms.Nature Reviews Genetics,2002,3(12):907-991.

      [54]Troemel E R.Chemosensory signaling in C.elegans.BioEssays,1999,21(12):1011-1020.

      [55]Duan YX,Wu G.Plant nematode disease prevention and control.Beijing:The Chinese Academy of Agricultural Sciences,2002.

      [56]Wang Y H.Caenorhabditis elegance-a simplest model for the study of nervous system.Chinese Journal of Neuroscience,2000,16(1):60-64.

      [57]Matsuura T,Endo S,Iwamoto R,Takahashi H,Ichinose M.Developmental changes in chemotactic response and choice of two attractants,sodium acetate and diacetyl,in the nematode Caenorhabditis elegans.Comparative Biochemistry and Physiology Part A:Molecular and Integrative Physiology,2007,147(4):920-927.

      [58]Bargmann C I,Horvitz H R.Control of larval development by chemosensory neurons in Caenorhabditis elegans.Science,1991,251(4998):1243-1246.

      [59]Bargmann C I,Hartwieg E,Horvitz H R.Odorant-selective genes and neurons mediate olfaction in C.elegans.Cell,1993,74(3):515-527.

      [60]Troemel E R,Kimmel B E,Bargmann C I.Reprogramming chemotaxis responses:sensory neurons define olfactory preferences in C.elegans.Cell,1997,91(2):161-169.

      [61]Liu W Z.Plant pathogenic nematodes.Beijing:China Agriculture Press,2000.

      [62]Sommer R J,Ogawa A.Hormone signaling and phenotypic plasticity in nematode development and evolution.Current Biology,2011,21(18):R758-R766.

      [63]Fielenbach N,Antebi A.C.elegans dauer formation and the molecular basis of plasticity.Genes Development,2008,22:2149-2165.

      [64]McGrath P T,Xu Y F,Ailion M,Garrison J L,Butcher R A,Bargmann C I.Parallel evolution of domesticated Caenorhabditis species targets pheromone receptor genes.Nature,2011,477(7364):321-325.

      [65]Kim K,Sato K,Shibuya M,Zeiger D M,Butcher R A,Ragains J R,Clardy J,Touhara K,Sengupta P.Two chemoreceptors mediate developmental effects of dauer pheromone in C.elegans.Science,2009,326(5955):994-998.

      [66]Zhang Y N,Chou J H,Bradley J,Bargmann C I,Zinn K.The C.elegans 7-transmembrane protein ODR-10 functions as an odorant receptor in mammalian cells.Proceedings of the National Academy of Sciences,1997,94(22):12162-12167.

      [67]Sengupta P,Chou J H,Bargmann C I.Odr-10 encodes a seven transmembrane domain olfactory receptor required for responses to the odorant diacetyl.Cell,1996,84(6):899-909.

      [68]Chou J H,Troemel E R,Sengupta P,Colbert H A,Tong L,Tobin D M,Roayaie K,Crump J G,Dwyer N D,Bargmann C I.Olfactory recognition and discrimination in Caenorhabditis elegans.Cold Spring Harbor Symposia on Quantitative Biology,1996,61:157-164.

      [69]The C.elegans Sequencing Consortium.Genome sequence of the nematode Caenorhabditis elegans:a platform for investigating biology.Science,1998,282(5396):2012-2018.

      [70]Buck L,Axel R.A novel multigene family may encode odorant receptors:a molecular basis for odor recognition.Cell,1991,65(1):175-187.

      [71]Malnic B,Hirono J,Sato T,Buck L B.Combinatorial receptor codes for odors.Cell,1999,96(5):713-723.

      [72]Mombaerts P,Wang F,Dulac C,Chao S K,Nemes A,Mendelsohn M,Edmondson J,Axel R.Visualizing an olfactory sensory map.Cell,1996,87(4):675-686.

      [73]Wang F,Nemes A,Mendelsohn M,Axel R.Odorant receptors govern the formation of a precise topographic map.Cell,1998,93(1):47-60.

      [74]Sasser J N,F(xiàn)reckman D W.A world perspective on nematology:the role of the society//Veeck J A,Dickson D W,Hyattsville M D,eds.Vistas on Nematology.Orlando:Society of Nematologists,1987:7-14.

      [75]Williamson V M.Plant nematode resistance genes.Current Opinion in Plant Biology,1999,2(4):327-331.

      [76]Chitwood D J.Phytochemical based strategies for nematode control.Annual Review of Phytopathology,2002,40:221-249.

      [77]Zhao L L,Jiang P,Humble L M,Sun J H.Within-tree distribution and attractant sampling of propagative pinewood nematode,Bursaphelenchus xylophilus:an early diagnosis approach.Forest Ecology and Management,2009,258(9):1932-1937.

      [78]Zhao L L,Wei W,Kang L,Sun J H.Chemotaxis of the pinewood nematode,Bursaphelenchus xylophilus,to volatiles associated with host pine,Pinus massoniana,and its vector Monochamus alternatus.Journal of Chemical Ecology,2007,33(6):1207-1216.

      [79]Zhao L L,Wei W,Liu X Z,Sun J H.A novel rapid sampling method for pinewood nematode,Bursaphelenchus xylophilus(Nematoda:Parasitaphelenchidae).Canadian Journal of Forest Research,2007,37(10):1867-1872.

      參考文獻(xiàn):

      [21]陳忠孝,陳森玉,迪克森D W.線蟲(chóng)學(xué):進(jìn)展和前景卷1:形態(tài)學(xué)、生理學(xué)和生態(tài)學(xué).北京:清華大學(xué)出版社,2004.

      [50]成新躍,徐汝梅,謝丙炎.化學(xué)通訊在松材線蟲(chóng)侵染和擴(kuò)散中的作用.生態(tài)學(xué)報(bào),2005,25(2):339-345.

      [55]段玉璽,吳剛.植物線蟲(chóng)病害防治.北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)科技出版社,2002.

      [56]王亞輝.秀麗隱桿線蟲(chóng)(Caenorhabditis elegans)——一個(gè)研究神經(jīng)系統(tǒng)的最簡(jiǎn)單模型.科學(xué)通報(bào),2000,16:60-64.

      [61]劉維志.植物病原線蟲(chóng)學(xué).北京:中國(guó)農(nóng)業(yè)出版社,2000.

      猜你喜歡
      蟲(chóng)態(tài)隱桿感器
      咖啡果小蠹成蟲(chóng)觸角感器的掃描電鏡觀察
      人參皂苷Ro延長(zhǎng)秀麗隱桿線蟲(chóng)的壽命并增強(qiáng)氧化應(yīng)激抵抗力
      低氧對(duì)幾種主要儲(chǔ)糧害蟲(chóng)蟲(chóng)態(tài)的致死效果
      松褐天牛不同蟲(chóng)態(tài)的營(yíng)養(yǎng)成分評(píng)價(jià)
      某型壓氣機(jī)溫度受感器恢復(fù)特性研究
      基于微流控芯片平臺(tái)的秀麗隱桿線蟲(chóng)衰老模型研究進(jìn)展
      薇甘菊頸盲蝽基礎(chǔ)生物學(xué)特性
      竹斑蛾觸角感器電鏡掃描觀察
      瘦肉精(硫酸沙丁胺醇)對(duì)秀麗隱桿線蟲(chóng)的毒性分析
      擬龜紋圓瓢蠟蟬觸角掃描電鏡觀察
      郧西县| 西城区| 怀远县| 东港市| 武宣县| 吐鲁番市| 高雄市| 江川县| 石台县| 涪陵区| 高平市| 商洛市| 清丰县| 广灵县| 濮阳市| 乐陵市| 长丰县| 保山市| 盐津县| 临沧市| 延安市| 玉田县| 内江市| 方城县| 纳雍县| 四川省| 彩票| 左权县| 施秉县| 伊宁县| 宁城县| 炉霍县| 沛县| 孝昌县| 东山县| 湖州市| 黑河市| 攀枝花市| 南部县| 金湖县| 马尔康县|