李 匯,毛用敏,趙莉莉,崔讓莊,王佩顯
(1.天津醫(yī)科大學(xué) 300070;2.天津市胸科醫(yī)院 300051)
基質(zhì)金屬蛋白酶(matrix metalloproteinase,MMPs)是降解細(xì)胞外基質(zhì)(extracellular matrix,ECM)成分的主要酶系[1],金屬蛋白酶組織抑制劑(tissue inhibitor of metalloproteinase,TIMPs)是MMPs的內(nèi)源性特異性抑制劑[2]。近年研究發(fā)現(xiàn),MMPs/TIMPs的比例失衡與動(dòng)脈粥樣硬化、冠狀動(dòng)脈介入術(shù)后再狹窄以及心臟重塑等病理過程密切相關(guān)[3]。以腺病毒(adenovirus,AdV)為載體介導(dǎo)TIMP1到靶細(xì)胞,調(diào)節(jié)ECM的生成和降解,從而調(diào)節(jié)粥樣斑塊的穩(wěn)定性可能成為冠心病基因治療的新方法[4]。本研究構(gòu)建攜帶人基質(zhì)金屬蛋白酶組織抑制劑因子1(human tissue inhibitor of matrix melall oprolease-1,hTIMP1)基因片段的重組腺病毒 Ad-h(huán)TIMP1[5],并成功感染體外培養(yǎng)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞CRL-1730,從而為進(jìn)一步的在體實(shí)驗(yàn)提供平臺(tái),為基因治療動(dòng)脈粥樣硬化,穩(wěn)定粥樣斑塊提供靶基因的線索。
1.1 材料 AdEasy復(fù)制缺陷型腺病毒載體系統(tǒng)(穿梭質(zhì)粒pAd-Track-CMV和骨架質(zhì)粒pAdEasy-1)以及包裝細(xì)胞系人胚腎細(xì)胞(human embryonic kidney 293T,HEK293T)購自北京大學(xué)實(shí)驗(yàn)室;pUCm-T載體質(zhì)粒,BJ 5183菌株、JM109菌株和DH5α菌株均為本實(shí)驗(yàn)室保存。TaqDNA聚合酶為本實(shí)驗(yàn)室提取保存,限制性內(nèi)切酶BglⅡ、NotⅠ和DNA marker購自TakaRa生物工程(大連)有限公司,PacI購自NEB公司;T4 DNA連接酶、高純度質(zhì)粒柱式提取試劑盒和脂質(zhì)體購自Invitrogen公司,胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和 DMEM高糖培養(yǎng)液購自美國Gibco公司;PCR引物由上海生工公司合成。DNA測(cè)序由北京三博遠(yuǎn)志生物工程公司完成。
1.2 腺病毒重組質(zhì)粒的構(gòu)建
1.2.1 pUC-h(huán)TIMP1重組質(zhì)粒的構(gòu)建 Genebank中搜索人TIMP1序列,設(shè)計(jì)上游引物為:5′-AGA ACC CAC CAT GGC CCC CT-3′;下游引物為:5′-GAT TCA GGC TAT CTG GGA CCG-3′。從人心肌細(xì)胞中提取總RNA,反轉(zhuǎn)錄PCR(reverse transcription-PCR,RT-PCR)得到人 TIMP1的基因片段,連接到pUCm-T載體質(zhì)粒中,轉(zhuǎn)化入感受態(tài)JM109細(xì)胞,NcoI酶切鑒定正確后行二次轉(zhuǎn)化入JM109進(jìn)行擴(kuò)增,測(cè)序正確后提質(zhì)粒pUC-h(huán)TIMP1。
1.2.2 穿梭質(zhì)粒 pAdTrack-CMV-h(huán)TIMP1的構(gòu)建 分別用BglⅡ和NotⅠ雙酶切pUC-h(huán)TIMP1和穿梭質(zhì)粒pAdTrack-CMV并凝膠回收hTIMP1片段和開環(huán)質(zhì)粒pAdTrack-CMV,連接后轉(zhuǎn)化JM109感受態(tài)細(xì)胞,酶切鑒定正確后二次轉(zhuǎn)化JM109擴(kuò)增,PmeⅠ酶切使之線性化,命名為重組質(zhì)粒pAdTrack-CMV-h(huán)TIMP1。
1.2.3 同 源 重 組 構(gòu) 建 重 組 腺 病 毒 質(zhì) 粒 pAdEasy-GFP-h(huán)TIMP1 電穿孔法(2 500V,5ms)將PemⅠ酶切線性化的pAdTrack-CMV-h(huán)TIMP1重組質(zhì)粒和 pAdTrack-CMV(空載體陰性對(duì)照)分別轉(zhuǎn)化到含有pAdEasy-1的電感受態(tài)BJ5183中,篩選后BamHI和PacⅠ酶切鑒定。選取重組正確的質(zhì)粒(pAd-h(huán)TIMP1和pAd-Track)在DH5α菌中大量擴(kuò)增,高純度質(zhì)粒柱式提取試劑盒提取質(zhì)粒,PacⅠ酶切線性化后凝膠回收較大片段。
1.3 重組腺病毒在293T細(xì)胞中包裝和擴(kuò)增
1.3.1 陽離子脂質(zhì)體法將重組腺病毒轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞進(jìn)行包裝 轉(zhuǎn)染前1d,將2個(gè)60mm培養(yǎng)皿中HEK293T細(xì)胞調(diào)整為0.6×106個(gè)細(xì)胞/皿,轉(zhuǎn)染當(dāng)天應(yīng)用脂質(zhì)體lipofectamine 2000及Plus reagent將pAd-h(huán)TIMP1和pAd-Track轉(zhuǎn)染到兩皿中,24h后熒光顯微鏡下觀察綠色熒光蛋白(green fluorescent protein,GFP)表達(dá),倒置相差顯微鏡下觀察細(xì)胞病變效應(yīng)(cytopathogenic effect,CPE)。于轉(zhuǎn)染后第9天收集細(xì)胞,反復(fù)凍融法得到重組腺病毒Ad-h(huán)TIMP1和Ad-Track上清液。
1.3.2 包裝好的重組腺病毒感染293T細(xì)胞進(jìn)行擴(kuò)增 取病毒上清液的1/3感染293T細(xì)胞,感染后第3天反復(fù)凍融法收集重組腺病毒上清液,反復(fù)感染4次于293T細(xì)胞中擴(kuò)增病毒到所需滴度。
1.3.3 重組腺病毒的純化和觀察 CsCl密度梯度離心法純化重組腺病毒顆粒,采用OD260法測(cè)定腺病毒的滴度。并用透射電鏡觀察腺病毒形態(tài)。
1.4 腺病毒介導(dǎo)TIMP1在內(nèi)皮細(xì)胞中的表達(dá)
1.4.1 分組 體外培養(yǎng)人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞CRL-1730,將之分到6孔板中(2.4×105細(xì)胞/孔)。分為空白對(duì)照組、Track對(duì)照組和TIMP1實(shí)驗(yàn)組,每組4個(gè)復(fù)孔。Ad-Track感染Track對(duì)照組,Ad-h(huán)TIMP1感染TIMP1實(shí)驗(yàn)組。48h后觀察并收集細(xì)胞。
1.4.2 RT-PCR法擴(kuò)增細(xì)胞TIMP1基因片段,以GAPDH為內(nèi)參照 采用UNIQ-10柱總RNA抽提試劑盒提取各組人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞CRL-1730中的總RNA,反轉(zhuǎn)錄得到cDNA,PCR擴(kuò)增TIMP1基因片段。2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)PCR擴(kuò)增產(chǎn)物。以電泳條帶的灰度代表mRNA含量,目的基因與內(nèi)參電泳條帶灰度比值反應(yīng)目的基因的相對(duì)值。采用Gelpro3.1凝膠成像系統(tǒng)對(duì)結(jié)果進(jìn)行分析。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)處理 應(yīng)用SPSS17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料以表示。組間比較采用單因素方差分析和LSD檢驗(yàn),以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 pAdEasy-GFP-h(huán)TIMP1重組質(zhì)粒 PacⅠ酶切鑒定 RTPCR法從人心肌細(xì)胞中擴(kuò)增hTIMP1,可以得到637bp的特異帶。在pAd-Track-CMV上有2個(gè)PacⅠ的酶切位點(diǎn),將重組子切為一個(gè)大片段和一個(gè)約4.5kb的小片段(圖1)。
圖1 PacⅠ 酶切pAd-h(huán)TIMP1和pAd-Track重組質(zhì)粒
圖2 轉(zhuǎn)染Ad-h(huán)TIMP1重組腺病毒
2.2 293T細(xì)胞中包裝并擴(kuò)增腺病毒 重組腺病毒轉(zhuǎn)染293T細(xì)胞后,第4~5天熒光顯微鏡下可觀察到GFP呈“彗星狀”改變,感染293T細(xì)胞后第3天可以觀察到典型的CPE(圖2),純化后OD260法測(cè)得重組腺病毒 Ad-h(huán)TIMP1的滴度為1.9×1012v.p/mL,對(duì)照重組腺病毒pAd-Track的滴度為0.6×1012v.p/mL。透射電鏡下見病毒顆粒直徑約90nm,呈多面體形狀,絕大多數(shù)病毒顆粒完整(圖3)。腺病毒裂解液TIMP1 PCR,2%瓊脂糖凝膠電泳圖(圖4)。TIMP1實(shí)驗(yàn)組內(nèi)皮細(xì)胞TIMP1mRNA的表達(dá)(1.062±0.083)明顯高于空白對(duì)照組(0.449±0.128)和Track對(duì)照組(0.365±0.164),P<0.05,見圖5。重組腺病毒感染體外培養(yǎng)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞CRL-1730(圖6)。
圖3 Ad-h(huán)TIMP1病毒顆粒透射電鏡圖
圖4 腺病毒裂解液TIMP1PCR擴(kuò)增片段(可見637bp的特異條帶)
圖5 3組TIMP1 2%瓊脂糖凝膠水平電泳圖
圖6 重組腺病毒感染體外培養(yǎng)的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞CRL-1730熒光表達(dá)情況(倒置熒光顯微鏡)
MMPs是一類以Zn2+為輔助因子的蛋白水解酶家族,在體內(nèi)主要降解ECM。既往研究表明,AS斑塊損傷部位MMPs表達(dá)升高,包括屬于間質(zhì)膠原酶的 MMP1、屬于明膠酶的MMP2和MMP9,以及屬于基質(zhì)降解酶的 MMP3,而TIMP1和 TIMP2等表達(dá)減少[6-7]。Galis等[8]在冠狀 AS中檢測(cè)到MMPs與TIMPs的比例失調(diào),認(rèn)為調(diào)節(jié)兩者之間的比例可起到治療AS的作用。
Rouis等[9]報(bào)道腺病毒介導(dǎo)TIMP1過表達(dá)可以減輕ApoE-/-小鼠的頸動(dòng)脈粥樣硬化損傷程度,并推測(cè)此作用是由于TIMP1抑制MMPs活性保護(hù)了細(xì)胞外基質(zhì),進(jìn)而抑制了平滑肌細(xì)胞的移行所致。該研究中,小鼠喂食6周高膽固醇飲食后注射攜帶TIMP1的重組腺病毒,4周后加以評(píng)估。發(fā)現(xiàn)動(dòng)脈粥樣硬化斑塊的損傷面積明顯減小。這與之前研究小鼠轉(zhuǎn)基因過表達(dá)人TIMP1抑制 MMPs表達(dá)的結(jié)果相一致[10-11]。另外,轉(zhuǎn)染攜帶TIMP1的重組腺病毒(Ad.TIMP1)使豬主動(dòng)脈內(nèi)皮細(xì)胞過表達(dá)TIMP1,可以減少細(xì)胞移行及對(duì)細(xì)胞外基質(zhì)的侵襲[12]。隨著分子生物學(xué)技術(shù)的進(jìn)步,利用分子生物學(xué)技術(shù)使局部TIMP1過表達(dá),為人們治療AS帶來希望[13]。
本研究采用He等[5]于1998年建立的技術(shù)方案,成功地進(jìn)行了攜帶人TIMP1的重組腺病毒的構(gòu)建,并采用Zeng等[14]報(bào)道的兩步轉(zhuǎn)化法,即將pAdEsay-1質(zhì)粒先轉(zhuǎn)化入BJ5183大腸埃希菌,并制備其電轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞,再利用電轉(zhuǎn)化儀將pAd-Track-CMV轉(zhuǎn)入該菌,進(jìn)而與細(xì)胞內(nèi)的pAdEsay-1進(jìn)行同源重組。這種方法與一步轉(zhuǎn)化法相比,可以大大提高同源重組的效率,縮短實(shí)驗(yàn)時(shí)間[15]。
本研究發(fā)現(xiàn),重組Ad-h(huán)TIMP1可以成功感染內(nèi)皮細(xì)胞使實(shí)驗(yàn)組細(xì)胞內(nèi)TIMP1過表達(dá)。為TIMP1作為靶基因用于穩(wěn)定動(dòng)脈粥樣斑塊的基因治療奠定了基礎(chǔ)。
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