山東寶來(lái)利來(lái)生物工程股份有限公司 汪孟娟 曹銀生 胡艷霞 王京京 辛國(guó)芹 徐海燕
動(dòng)物呼吸道疾病易造成動(dòng)物生長(zhǎng)減緩、料肉比增高、產(chǎn)蛋力降低、免疫力下降,更有甚者直接導(dǎo)致動(dòng)物死亡或者繼發(fā)其他疾病死亡,給養(yǎng)殖戶帶來(lái)巨大的損失。然而使用抗生素治療該病又會(huì)帶來(lái)一系列副作用,因此開(kāi)發(fā)一種通過(guò)恢復(fù)和調(diào)整動(dòng)物呼吸道內(nèi)菌群平衡,達(dá)到預(yù)防和治療動(dòng)物呼吸道感染的微生態(tài)制劑十分必要。Sullivan等(2001)認(rèn)為,正常的微生物菌群可以起到防止?jié)撛诘闹虏∥⑸锝ㄈ杭胺乐辜航?jīng)存在的機(jī)會(huì)菌過(guò)度生長(zhǎng)的作用。由此看來(lái),研究呼吸道正常菌群的演替次序和變化特征,是深入認(rèn)識(shí)炎癥本質(zhì)、開(kāi)發(fā)呼吸道益生菌的理論依據(jù)。
1993年Muzyer等首次將變性梯度凝膠電泳(DGGE)技術(shù)應(yīng)用于微生物生態(tài)學(xué)研究,并證實(shí)該技術(shù)在研究自然界微生物群落遺傳多樣性和種群差異方面具有明顯的優(yōu)越性。本試驗(yàn)通過(guò)PCR-DGGE技術(shù)分析了肉雞呼吸道細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu),并對(duì)優(yōu)勢(shì)菌進(jìn)行了鑒定,探討此方法在研究動(dòng)物呼吸道微生物多樣性的可行性。
1.1 材料
1.1.1 樣品的采集與處理 分別取 10、20、30、40日齡的肉雞(采自泰安某肉雞養(yǎng)殖場(chǎng)),于超凈臺(tái)下分別取喉管和氣管,剪碎放入無(wú)菌離心管中。
1.1.2 主要儀器 PCR儀、DGGE電泳儀(Bio-Rad)。
1.2 總DNA的提取 向裝有喉管和氣管的離心管中,分別加入5 mL無(wú)菌生理鹽水,振蕩5 min,800 r/min離心10 min,取上清于無(wú)菌1.5 mL EP管中,12000 r/min,離心 2 min,倒掉上清。DNA提取采用Mobile公司的BIO-101 DNA extraction Kit試劑盒,步驟按說(shuō)明書進(jìn)行。
1.3 16 S rDNA V3片段的PCR擴(kuò)增 將提取的DNA直接作為PCR模板,采用對(duì)大多數(shù)細(xì)菌的16 S rRNA基因V3區(qū)具有特異性的引物對(duì)(錢麗君,2007):341F(5’CGCCCGCCGCGCGCGGCGGGCGGGGCGGGGGCA- CGGGGGGCCTACGGGAGGCAGCAG-3’)和 534R(5’-ATTAC-CGCGGCTGCTGG-3’), 擴(kuò)增長(zhǎng)約 200 bp, 用于DGGE 分析。 PCR 反應(yīng)體系 (25 μL):2×Taq mix 12.5 μL,上下游引物(25 pmol/μL)各 1 μL,模板DNA 1 μL,無(wú)菌雙蒸水 9.5 μL。PCR 反應(yīng)條件:采用降落 PCR,94℃預(yù)變性 4 min;94℃ 1 min,65℃45 s,退火溫度每個(gè)循環(huán)降低0.5℃,當(dāng)退火溫度降至55℃后,再以該溫度擴(kuò)增15個(gè)循環(huán);最后72℃延伸8 min。PCR產(chǎn)物用1%的瓊脂糖凝膠進(jìn)行檢測(cè)。
1.4 變性梯度凝膠電泳(DGGE) DGGE變性梯度凝膠濃度為8%,變性梯度為30%~70%(7 mol/L尿素和40%甲酰胺為100%變性)。電泳時(shí),首先在220 V電壓下預(yù)電泳10 min,隨后在85 V的固定電壓下電泳16 h。電泳結(jié)束后,進(jìn)行硝酸銀染色(Bruck等,2003),用數(shù)碼相機(jī)對(duì)結(jié)果拍照,并采用 Quantity One軟件 (Bio-Rad)對(duì)DGGE圖譜進(jìn)行聚類分析。
1.5 DGGE圖譜中部分優(yōu)勢(shì)條帶的序列分析用無(wú)菌手術(shù)刀將DGGE圖譜中部分分離明顯、條帶清晰且亮度高的優(yōu)勢(shì)性條帶從凝膠上切下,加入40 μL去離子無(wú)菌水,將膠塊搗碎,4℃過(guò)夜。取液體做模板進(jìn)行PCR擴(kuò)增,引物為去掉“GC夾”的 341 F和 534 R,PCR體系和條件同上(Devillard等,2005)。擴(kuò)增產(chǎn)物送上海生工生物工程技術(shù)有限公司測(cè)序。
2.1 16S rDNA片段的擴(kuò)增 16S rDNA PCR產(chǎn)物瓊脂糖電泳結(jié)果見(jiàn)圖1。由圖1可見(jiàn),通用引物341 F及534 R對(duì)各樣品細(xì)菌16 S rRNA基因均得到較好擴(kuò)增。
2.2 DGGE指紋圖譜及圖譜分析結(jié)果 各樣品DGGE指紋圖譜見(jiàn)圖2。由圖2可見(jiàn),不同部位比較,肉雞的喉和氣管中細(xì)菌的DGGE圖譜的條帶數(shù)、條帶位置和亮度存在一定程度的差異,但總體來(lái)說(shuō),雖然樣品條帶數(shù)較多,但優(yōu)勢(shì)條帶變化不大,條帶A、B、C、D、E和F在整個(gè)養(yǎng)殖周期的喉和氣管中一直保持優(yōu)勢(shì)地位,經(jīng)鑒定分別為:Citrobacter sp.,Pseudomonas aeruqinosa,Pasteurellaceae bacterium,Uncultured bacterium,Gallibacterium anatis,Uncultured Enterobacteriaceae bacterium。G條帶只在肉雞養(yǎng)殖后期的喉中占優(yōu)勢(shì),鑒定為:Mycoplasma qallisepticum。
相同部位不同日齡樣品比較,養(yǎng)殖中、后期喉的樣品條帶數(shù)明顯多于養(yǎng)殖前期,其中條帶H和I在養(yǎng)殖中期出現(xiàn)后,便一直存在于整個(gè)養(yǎng)殖過(guò)程,并保持一定的亮度,經(jīng)鑒定為Klebsiella pneumoniae和 Uncultured bacterium,條帶 J雖然在養(yǎng)殖前期的喉管樣品中已被檢測(cè)到,但亮度較暗,在養(yǎng)殖中期的樣品中開(kāi)始變亮,經(jīng)鑒定為Klebsiella pneumoniae;對(duì)于氣管樣品來(lái)說(shuō),30日齡左右肉雞的氣管樣品條帶數(shù)明顯多于其他時(shí)期。
UPGMA相似性聚類結(jié)果表明,養(yǎng)殖前期樣品喉中的條帶與養(yǎng)殖中后期相似度較低,只有55%;養(yǎng)殖中、后期不同部位,同一時(shí)期的樣品相似度均達(dá)到了75%,說(shuō)明在整個(gè)養(yǎng)殖過(guò)程中,肉雞呼吸道中細(xì)菌菌群結(jié)構(gòu)是在發(fā)生變化的。
DGGE技術(shù)主要是利用梯度變性膠來(lái)分離DNA片段,理論上認(rèn)為,只要選擇的電泳條件,如變性劑梯度、電泳時(shí)間、電壓等足夠精細(xì),有一個(gè)堿基差異的DNA片段均可被分開(kāi)。DGGE具有傳統(tǒng)微生物分析方法無(wú)可比擬的優(yōu)勢(shì),在科學(xué)研究中廣泛應(yīng)用(Ferguson,2007)。
在本研究中,16S rDNA V3區(qū)的PCR-DGGE圖譜能夠很好地對(duì)肉雞呼吸道中的細(xì)菌進(jìn)行區(qū)分,雖然數(shù)據(jù)不能代表所有肉雞呼吸道內(nèi)細(xì)菌群落的情況,但可以說(shuō)明PCR-DGGE技術(shù)能夠有效地用于呼吸道菌群的分析。其DGGE圖譜可以反映菌群的組成情況,同時(shí)結(jié)合圖譜中條帶的序列分析,還可以了解具體的優(yōu)勢(shì)菌群的種類。
在畜禽養(yǎng)殖中,應(yīng)用PCR-DGGE技術(shù)可建立一種不依賴傳統(tǒng)分離培養(yǎng)技術(shù)而能原位揭示畜禽體內(nèi)細(xì)菌種群組成的分子診斷技術(shù)和病原菌分子診斷技術(shù)。通過(guò)檢測(cè)畜禽呼吸道正常微生物區(qū)系組成,建立基于機(jī)體內(nèi)優(yōu)勢(shì)菌群結(jié)構(gòu)的健康畜禽動(dòng)物評(píng)價(jià)技術(shù),還可檢測(cè)畜禽動(dòng)物呼吸道微生物的動(dòng)態(tài)變化和病害后微生物區(qū)系組成的差異,以及使用微生態(tài)制劑前后微生物區(qū)系組成的差異。通過(guò)對(duì)畜禽呼吸道內(nèi)細(xì)菌種群結(jié)構(gòu)的揭示,為新的畜禽微生物制劑菌株的開(kāi)發(fā)和應(yīng)用提供候選菌株和理論基礎(chǔ)。
[1]錢麗君,張德民,徐小紅.應(yīng)用DGGE分析三疣梭子蟹養(yǎng)殖塘底泥細(xì)菌的多樣性[J].水產(chǎn)學(xué)報(bào),2007,31(2):204 ~ 209.
[2]Bruck W M,Graverholt G,Gibson G R.A two-stage continuous culture system to study the effect of supplemental a-lactalbumin and glycomacropeptide on mixed cultures of human gut bacteria challenged with enteropathogenic Escherichia coli and Salmonella serotype Typhimur-ium[J].Applied Microbiology,2003,95(1):44 ~ 53.
[3]Devillard E,Burton J P,Reid G.Complexity of vaginal microflora as analyzed by PCR denatureing gradient gel electrophoresis in a patient with recurrent bacterial vaginosis [J].Infection Diseases in Obstetrics and Gynecology,2005,13(1):25 ~ 30.
[4]Ferguson A S,Huang W E,Lawson K A,et al.Microbial analysis of soil and groundwater from a gasworks site and comparison with a sequenced biological reactive barrier remediation process[J].J Appl Microbiol,2007,102(5):1227 ~ 1238.
[5]Lerman L S,F(xiàn)ischer S.G,Hurley I,et al.Sequence-determined DNA separations[J].Annu.Rev Biophys Bioeng,1984,13:399 ~ 423.
[6]Muyzer G,De-Waal E C,Uitterlinden A G.Profiling of complex microbial populations by denaturing gradient gel electrophoresis analysis of polymerase chain reaction-amplified genes coding for 16s rRNA[J].Appl Environ Microbiol,1993,59(3):695 ~ 700.
[7]Myer R M,F(xiàn)ischer S G,Lerman L S,et al.Nearly all single base substitutions in DNA fragments joined to a GC—clamp can be detected by denaturing gradient gel electrophoresis [J]Nucleic Acids Res,1985,13(9):3131~3145.
[8]Sullivan A,Edlund C,Nord C E.Effect of antimicrobial agents on the ecological balance of human microflora[J].Lancet Infect Dis,2001,1(2):101 ~104.