劉夢詩 黃玉偉
(上海市第一人民醫(yī)院寶山分院消化內(nèi)科,上海 200940)
結(jié)直腸癌(colorectal cancer,CRC)是臨床常見的惡性腫瘤之一。CRC發(fā)病率在全世界男女性惡性腫瘤中均位居第3。在我國,CRC的發(fā)病率呈上升趨勢,處于惡性腫瘤和致死因素的第4位。早在1993年Nemeth等[1]就在人類結(jié)腸癌組織中檢測到胃泌素原(progastrin),之后人們逐漸發(fā)現(xiàn)胃泌素原在CRC細(xì)胞的增殖、抗凋亡、侵襲、轉(zhuǎn)移方面發(fā)揮著重要作用,并有望成為CRC的生物學(xué)標(biāo)志物之一。
1.1 胃泌素原的生成及結(jié)構(gòu) 人類胃泌素基因位于17號染色體,轉(zhuǎn)錄生成的胃泌素mRNA在粗面內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中翻譯生成含有101個氨基酸的前胃泌素原,后者經(jīng)裂解去掉N-末端信號肽(21個氨基酸)后形成胃泌素原。胃泌素原的結(jié)構(gòu)相對簡單,其被2個雙精氨酸切割位點分成3個部分:第一部分是N端1~35的側(cè)翼片段;第二部分是位于中間的38~72氨基酸片段,由胃泌素-34和C端的甘氨酸組成;最后一部分是含6個氨基酸的C端側(cè)翼片段。
在前胃泌素原的C端胃泌素序列翻譯完成之前,其N端的信號肽就已經(jīng)被切除,所以生物體內(nèi)的前胃泌素原常不完整。而胃泌素原完整存在,并且可以被提取出來,被認(rèn)為是胃泌素基因的第1種蛋白產(chǎn)物[2]。
1.2 胃泌素原的加工及其衍生物 成熟胃泌素是胃泌素原經(jīng)激素酶原裂解、修飾等處理后形成的,主要由胃竇部的G細(xì)胞和十二指腸近端黏膜分泌。胃泌素原被轉(zhuǎn)運至高爾基體后由高爾基囊泡運輸?shù)紾細(xì)胞底部的分泌顆粒內(nèi),在此過程中,在胰蛋白酶、類羧基肽酶等作用下形成甘氨酸延伸型胃泌素34(glycine-extended gastrin 34,Gly-G34)。分泌顆粒內(nèi)的Gly-G34在肽酰甘氨酸α-羥單氧化酶(peptidyl α-amidating mono-oxygenase,PAM)的作用下形成酰胺化胃泌素34(G34),后者在激素轉(zhuǎn)化酶的作用下進(jìn)一步轉(zhuǎn)化為酰胺化胃泌素17(G17)。非內(nèi)分泌顆粒內(nèi)的Gly-G34在激素轉(zhuǎn)化酶作用下生成甘氨酸延伸型胃泌素17(glycine-extended gastrin 17,Gly-G17),而Gly-G17不能進(jìn)一步轉(zhuǎn)換為G17。G34、G17即為成熟胃泌素,其中G17是胃竇胃泌素的主要形式,也是膳食后血液循環(huán)中胃泌素的主要形式。G34是十二指腸中胃泌素的主要形式,半衰期較長,它是介于膳食之間的主要胃泌素形式。胃泌素原和甘氨酸延伸型胃泌素為不成熟的胃泌素,稱為非酰胺化胃泌素,其含量小于總分泌肽的10%[3]。而CRC患者血中非酰胺化胃泌素水平升高,可能是由于胃泌素基因相關(guān)CRC細(xì)胞中缺乏將前胃泌素轉(zhuǎn)化成酰胺化形式的酶。
目前,胃泌素原的作用受體仍存在爭議。相關(guān)研究認(rèn)為,胃泌素原通過膽囊收縮素2受體(cholecystokinin 2 receptor,CCK-2R)起作用;也有不少實驗證實胃泌素原可以和膜聯(lián)蛋白A2(annexin A2,AnxA2)結(jié)合后進(jìn)入細(xì)胞內(nèi),進(jìn)一步調(diào)節(jié)基因轉(zhuǎn)錄;還有學(xué)者[4]認(rèn)為,胃泌素原的作用機(jī)制與CRC細(xì)胞表面的鐵離子、黏多糖等有關(guān)。而這些作用機(jī)制仍有待進(jìn)一步證實。
2.1 CCK-2R CCK-2R不同于成熟胃泌素受體,主要表達(dá)于中樞神經(jīng)系統(tǒng)和胃腸道組織中。正常結(jié)腸組織中不表達(dá)該受體[5];在胃腸道腫瘤和肺腫瘤組織中,CCK-2R表達(dá)顯著升高[6]。相關(guān)體內(nèi)、體外實驗[6-7]均證實,胃泌素原可以通過CCK-2R依賴性通路來誘導(dǎo)結(jié)腸細(xì)胞增生,當(dāng)CCK-2R缺失或受抑制時,其作用減弱。但有研究[8]發(fā)現(xiàn),CCK-2R與胃泌素原在結(jié)腸癌細(xì)胞及纖維母細(xì)胞中的作用并無相關(guān)性。
2.2 AnxA2 AnxA2是鈣依賴性磷脂結(jié)合蛋白超基因家族中的成員,在人CRC組織中高表達(dá),可能與CRC的發(fā)生、發(fā)展密切相關(guān)。AnxA2不是胃泌素原的特異性受體,但下調(diào)細(xì)胞膜上AnxA2水平可以使胃泌素原對各類靶細(xì)胞的作用下降50%~80%[9]。用胃泌素原分別處理AnxA2+/+、AnxA2-/-小鼠,用0.9%氯化鈉液處理的AnxA2-/-小鼠,發(fā)現(xiàn)AnxA2+/+小鼠結(jié)腸隱窩細(xì)胞中CD44/DCAMKL+1陽性率較其他組高1.5~2倍,而另外2組差異無統(tǒng)計學(xué)意義,說明AnxA2在胃泌素原的促增殖過程中起重要作用。AnxA2缺失或功能受抑制時,小鼠結(jié)腸上皮的細(xì)胞分裂和增殖受到抑制[10]。進(jìn)一步研究[11-12]發(fā)現(xiàn),胃泌素原與AnxA2結(jié)合形成復(fù)合物,并迅速轉(zhuǎn)移至細(xì)胞內(nèi)發(fā)揮作用,但是,胃泌素原與AnxA2復(fù)合物進(jìn)入細(xì)胞內(nèi)的作用機(jī)制尚不明確,仍待進(jìn)一步研究。
早在上世紀(jì)90年代,Wang等[13]就發(fā)現(xiàn),表達(dá)人胃泌素基因的轉(zhuǎn)基因小鼠血液中胃泌素原水平明顯升高,且升高水平與結(jié)腸癌發(fā)生存在顯著相關(guān)性。無論是在體內(nèi)還是體外[14],胃泌素原均可以作用于結(jié)腸黏膜細(xì)胞,起到促進(jìn)增生、抗凋亡作用,且顯著增加結(jié)腸腫瘤的侵襲、轉(zhuǎn)移潛能。
3.1 胃泌素原促進(jìn)結(jié)腸細(xì)胞增生和抗凋亡 正常結(jié)腸上皮細(xì)胞的增生和凋亡處于平衡狀態(tài),胃泌素原對結(jié)腸細(xì)胞有促分裂、抗凋亡作用,破壞穩(wěn)態(tài)、增加結(jié)腸癌的易感性。對小鼠進(jìn)行DNA損傷處理后發(fā)現(xiàn),hGAS+小鼠的結(jié)腸上皮細(xì)胞中細(xì)胞周期蛋白依賴性激酶4(cyclin dependent kinase 4,CDK4)和細(xì)胞周期蛋白D1(cylin D1)水平明顯上升,且hGAS+小鼠的結(jié)腸組織中癌前病變的數(shù)量和大小均顯著高于對照組[15]。實驗[16-17]證實,在胃泌素原作用下,結(jié)腸黏膜細(xì)胞中腫瘤干細(xì)胞標(biāo)志物(CD44、DCLK1、Lgr5、CD133等)水平上升,據(jù)此推論,胃泌素原可以促進(jìn)結(jié)腸干細(xì)胞分裂,此外,提高動物模型的胃泌素原水平還可以促進(jìn)腫瘤抑制基因(APC/p53)突變,但該突變在結(jié)腸癌發(fā)生、發(fā)展中的作用機(jī)制還有待進(jìn)一步探究。
3.2 促進(jìn)腫瘤轉(zhuǎn)移 腫瘤細(xì)胞的侵襲和轉(zhuǎn)移是惡性腫瘤的又一重要特征。在正常情況下,細(xì)胞和細(xì)胞之間存在一些黏附連接結(jié)構(gòu),這些結(jié)構(gòu)對于保持細(xì)胞間信息交流和限制細(xì)胞遷移起著特殊的作用。Hollande等[18]實驗證實,胃泌素原可以激活Src激酶、磷脂酰肌醇-3激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3-K)和蛋白激酶Cα,使黏附連接及緊密連接復(fù)合物裂解,細(xì)胞更易于遷移;還可以增加細(xì)胞旁通透性、增加細(xì)胞流動性,使腫瘤更容易轉(zhuǎn)移。
4.1 Ras/MAPK/EPK通路 Ras/MAPK/EPK通路主要被絲裂原激活,如生長因子與受體結(jié)合后,能激活小G蛋白Ras,進(jìn)而激活該通路。胃泌素原可激活該通路,且該過程與結(jié)腸癌前病變的發(fā)生有關(guān)。增生性息肉和管狀腺瘤中胃泌素原陽性細(xì)胞所占比例顯著高于正常組織,過度表達(dá)胃泌素原的增生性息肉細(xì)胞中,EPK激活細(xì)胞占53%,而在低表達(dá)和中度表達(dá)胃泌素原的增生性息肉細(xì)胞中僅為29%和22%,表明胃泌素原水平與p-EPK激活存在顯著相關(guān)性(P=0.008)[19]。
與正常結(jié)腸上皮相比,結(jié)腸癌細(xì)胞中胰島素樣生長因子Ⅱ(insulin-like growth factor Ⅱ,IGFⅡ)過度表達(dá)[20]。Tao等[21]體外實驗發(fā)現(xiàn),胃泌素原可以刺激結(jié)腸纖維母細(xì)胞分泌IGFⅡ,后者可使IGF1受體磷酸化,刺激Ras蛋白,從而激活MAPK/EPK通路。
4.2 核因子κB(nuclear factor-kappa B,NF-κB) 在靜息細(xì)胞中,NF-κB與細(xì)胞質(zhì)中的抑制因子(inhibitory κB,IκB)形成復(fù)合體,以無活性形式存在于胞漿中。當(dāng)細(xì)胞受細(xì)胞外信號刺激后,IκB被蛋白酶降解,游離的NF-κB迅速移位到細(xì)胞核,與其對應(yīng)的啟動子結(jié)合,誘導(dǎo)相關(guān)基因轉(zhuǎn)錄[22]。致腫瘤性因素和炎性反應(yīng)誘導(dǎo)的NF-κB激活,可導(dǎo)致白血病和結(jié)腸癌的發(fā)生。
體外情況下,用胃泌素原處理小鼠結(jié)腸上皮細(xì)胞,15~30 min后觀察到NF-κB p65激活狀態(tài)的細(xì)胞百分?jǐn)?shù)上升約2~4倍[12],胃泌素原可以直接或間接激活NF-κB[23]。體內(nèi)實驗[11]發(fā)現(xiàn),胃泌素原可以使IκB激酶復(fù)合體α/β(IκB kinase α/β,IKKα/β)磷酸化、降解,促進(jìn)近端結(jié)腸中的NF-κB p65激活。IKKβ抑制物NEMO均可以阻斷胃泌素原的抗凋亡作用[24],這為結(jié)腸癌的治療提供一種選擇。
4.3 Wnt/β-catenin(Wnt/β鏈蛋白) Wnt配體與其跨膜受體結(jié)合,抑制β鏈蛋白降解復(fù)合物(APC、AXIN和GSK3)的活性,從而允許穩(wěn)定的β鏈蛋白進(jìn)行核轉(zhuǎn)移,促進(jìn)Wnt靶基因的轉(zhuǎn)錄激活。而CD44/CD133/Lgr5這幾個腫瘤干細(xì)胞標(biāo)志物,就是β-鏈蛋白/Tcf/Lef轉(zhuǎn)錄因子的靶基因之一[25];過度表達(dá)β鏈蛋白可引起腸黏膜細(xì)胞異常增生和腺瘤形成。胃泌素原可以與AnxA2結(jié)合,從而激活該通路,但胃泌素原對該通道的具體作用機(jī)制尚不明確。
Sarkar等[11-12]發(fā)現(xiàn),胃泌素原促進(jìn)結(jié)腸細(xì)胞增殖的作用與其調(diào)節(jié)β-catenin/Tcf-4的表達(dá)有關(guān)。內(nèi)源性胃泌素原缺失時,β-catenin/Tcf-4抑制物表達(dá)增加,導(dǎo)致結(jié)腸細(xì)胞增殖速度明顯下降,抑制腺瘤性息肉病突變[26]。但是,Do等[27]的實驗表明,胃泌素原過度表達(dá)的增生性息肉中,Wnt/β-catenin通道沒有激活。
4.4 JAK-STAT(just another kinase-STAT)通路 在多種腫瘤中檢測到了STAT3通路激活,但是結(jié)腸癌中鮮有報道。Do等[27]研究發(fā)現(xiàn),低級別和高級別腺瘤中STAT3陽性細(xì)胞的比例明顯高于正常細(xì)胞,而增生性息肉和正常結(jié)腸組織中的STAT3的活化差異無統(tǒng)計學(xué)意義,且STAT的活化與胃泌素原的表達(dá)之間也沒有顯著相關(guān)性。但是,目前有關(guān)胃泌素原與STAT3通路關(guān)系的文獻(xiàn)不多。
4.5 其他通路 有研究[28]發(fā)現(xiàn),在CCK2R、β-鏈蛋白參與下,胃泌素原可以抑制轉(zhuǎn)化生長因子β/骨形態(tài)發(fā)生蛋白(transforming growth factor-β/bone morphogenetic protein,TGF-β/BMP)通路,促進(jìn)CRC細(xì)胞增殖和轉(zhuǎn)移,且在CRC中的作用取決于腫瘤分期。在腫瘤發(fā)生的早期,該通路通過調(diào)節(jié)細(xì)胞分化、誘導(dǎo)腫瘤細(xì)胞凋亡而抑制腫瘤的發(fā)展;但在腫瘤的晚期促進(jìn)腫瘤的發(fā)生。Zhang等[29]提出,Notch通路激活的水平與結(jié)腸癌病理分級、侵襲范圍、有無轉(zhuǎn)移存在相關(guān)性。但是,目前關(guān)于胃泌素原與Notch等通路的關(guān)系仍有待進(jìn)一步研究。
結(jié)腸癌發(fā)病率呈逐年升高的趨勢,且大多數(shù)患者在發(fā)現(xiàn)時已經(jīng)處于癌癥晚期,病死率高。結(jié)腸腺瘤是公認(rèn)的結(jié)腸癌癌前病變,若能及時診斷腺瘤,則可以大大降低結(jié)腸癌的發(fā)生率。胃泌素原作為一種激素前體,對結(jié)腸細(xì)胞有著促增殖及抗凋亡、黏附、轉(zhuǎn)移的作用,其在結(jié)腸腺瘤、腺癌、增生性息肉中均有表達(dá)。增生性息肉中胃泌素原陽性細(xì)胞比例顯著高于正常結(jié)腸,且對息肉和癌癥有一定診斷意義。
綜上所述,胃泌素原有望成為CRC的新生物學(xué)標(biāo)志物,并應(yīng)用于結(jié)直腸增生性息肉篩查,提高癌前病變發(fā)現(xiàn)率,降低CRC發(fā)病率;也可直接用于CRC的篩查。
[1]Nemeth J,Taylor B,Pauwels S,et al.Identification of progastrin derived peptides in colorectal carcinoma extracts[J].Gut,1993,34(1):90-95.
[2]Rehfeld JF,Bundgaard JR,Goetze JP,et al.Naming progastrin-derived peptides[J].Regul Pept,2004,120(1-3):177-183.
[3]Ferrand A,Wang TC.Gastrin and cancer:a review[J].Cancer Lett,2006,238(1):15-29.
[4]Dubeykovskiy A,Nguyen T,Dubeykovskaya Z,et al.Flow cytometric detection of progastrin interaction with gastrointestinal cells[J].Regul Pept,2008,151(1-3):106-114.
[5]Smith AM,Watson SA.Gastrin and gastrin receptor activation:an early event in the adenoma-carcinoma sequence[J].Gut,2000,47(6):820-824.
[6]Jin G,Westphalen CB,Hayakawa Y,et al.Progastrin stimulates colonic cell proliferation via CCK2R- and β-arrestin-dependent suppression of BMP2[J].Gastroenterology,2013,145(4):820-830.
[7]Jin G,Ramanathan V,Quante M,et al.Inactivating cholecystokinin-2 receptor inhibits progastrin-dependent colonic crypt fission,proliferation,and colorectal cancer in mice[J].J Clin Invest,2009,119(9):2691-2701.
[8]Baldwin GS,Hollande F,Yang Z,et al.Biologically active recombinant human progastrin (6-80) contains a tightly bound calcium ion[J].J Biol Chem,2001,276(11):7791-7796.
[9]Singh P,Wu H,Clark C,et al.Annexin Ⅱ binds progastrin and gastrin-like peptides,and mediates growth factor effects of autocrine and exogenous gastrins on colon cancer and intestinal epithelial cells[J].Oncogene,2007,26(3):425-440.
[10]Chiang Y,Rizzino A,Sibenaller ZA,et al.Specific down-regulation of annexin Ⅱ expression in human cells interferes with cell proliferation[J].Mol Cell Biochem,1999,199(1-2):139-147.
[11]Sarkar S,Swiercz R,Kantara C,et al.Annexin A2 mediates up-regulation of NF-κB, β-catenin,and stem cell in response to progastrin in mice and HEK-293 cells[J].Gastroenterology,2011,140(2):583-595.
[12]Sarkar S,Kantara C,Singh P,et al.Clathrin mediates endocytosis of progastrin and activates MAPKs:role of cell surface annexin A2[J].Am J Physiol Gastrointest Liver Physiol,2012,302(7):G712-G722.
[13]Wang TC,Koh TJ,Varro A,et al.Processing and proliferative effects of human progastrin in transgenic mice[J].J Clin Invest,1996,98(8):1918-1929.
[14]Rengifo-Cam W,Singh P.Role of progastrins and gastrins and their receptors in GI and pancreatic cancers:targets for treatment[J].Curr Pharm Des,2004,10(19):2345-2358.
[15]Singh P,Velasco M,Given R,et al.Progastrin expression predisposes mice to colon carcinomas and adenomas in response to a chemical carcinogen[J].Gastroenterology,2000,119(1):162-171.
[16]Ferrand A,Sandrin MS,Shulkes A,et al.Expression of gastrin precursors by CD133-positive colorectal cancer cells is crucial for tumour growth[J].Biochim Biophys Acta,2009,1793(3):477-488.
[17]Ramanathan V,Jin G,Westphalen CB,et al.P53 gene mutation increases progastrin dependent colonic proliferation and colon cancer formation in mice[J].Cancer Invest,2012,30(4):275-286.
[18]Hollande F,Lee DJ,Choquet A,et al.Adherens junctions and tight junctions are regulated via different pathways by progastrin in epithelial cells[J].J Cell Sci,2003,116(Pt 7):1187-1197.
[19]Do C,Claudine Bertrand J,Delisle MB,et al.Activation of pro-oncogenic pathways in colorectal hyperplastic polyps[J].BMC Cancer,2013,13:531.
[20]Frasca F,Pandini G,Sciacca L,et al.The role of insulin receptors and IGF-I receptors in cancer and other diseases[J].Arch Physiol Biochem,2008,114(1):23-37.
[21]Tao Y,Pinzi V,Bourhis J,et al.Mechanisms of disease:signaling of the insulin-like growth factor 1 receptor pathway--therapeutic perspectives in cancer[J].Nat Clin Pract Oncol,2007,4(10):591-602.
[22]Dutta J,Fan Y,Gupta N,et al.Current insights into the regulation of programmed cell death by NF-kappaB[J].Oncogene,2006,25(51):6800-6816.
[23]Kunnumakkara AB,Diagaradjane P,Guha S,et al.Curcumin sensitizes human colorectal cancer xenografts in nude mice to gamma-radiation by targeting nuclear factor-kappaB-regulated gene products[J].Clin Cancer Res,2008,14(7):2128-2136.
[24]Rengifo-Cam W,Umar S,Sarkar S,et al.Antiapoptotic effects of progastrin on pancreatic cancer cells are mediated by sustained activation of nuclear factor-﹛kappaB﹜[J].Cancer Res,2007,67(15):7266-7274.
[25]Barker N,van Es JH,Kuipers J,et al.Identification of stem cells in small intestine and colon by marker gene Lgr5[J].Nature,2007,449(7165):1003-1007.
[26]Pannequin J,Bonnans C,Delaunay N,et al.The Wnt target jagged-1 mediates the activation of notch signaling by progastrin in human colorectal cancer cells[J].Cancer Res,2009,69(15):6065-6073.
[27]Do C,Bertrand C,Palasse J,et al.A new biomarker that predicts colonic neoplasia outcome in patients with hyperplastic colonic polyps[J].Cancer Prev Res (Phila),2012,5(4):675-684.
[28]Karagiannis GS,Berk A,Dimitromanolakis A,et al.Enrichment map profiling of the cancer invasion front suggests regulation of colorectal cancer progression by the bone morphogenetic protein antagonist,gremlin-1[J].Mol Oncol,2013,7(4):826-839.
[29]Zhang Y,Li B,Ji ZZ,et al.Notch1 regulates the growth of human colon cancers[J]. Cancer,2010,116(22):5207-5218.