張華 綜述 馮永 審校
Waardenburg綜合征(Waardenburg Syndrome,WS)是最常見的綜合征型聾,又稱聽力-色素綜合征,主要遺傳方式為單基因致病的染色體顯性遺傳伴不全外顯。其病因主要是由于神經(jīng)嵴(neural crest,NC)發(fā)育異常而導(dǎo)致其分化的黑素細(xì)胞發(fā)育障礙所致[1],PAX3(Pair Box 3,配對盒基因3)是NC生長發(fā)育的關(guān)鍵調(diào)控基因之一。WS人群發(fā)病率為1/42 000,占先天性聾的2%~5%,聾啞人群中其發(fā)病率為0.9%~2.8%[2]。該綜合征主要臨床特征為感音神經(jīng)性聾及虹膜、頭發(fā)和皮膚的色素分布異常。WS具有高度的臨床和遺傳異質(zhì)性,依據(jù)不同的伴隨表型將其分為4型(WS1-4)[3],其中以WS1和WS2最多見。已證實有6種基因與WS有關(guān)[3],PAX3是其主要的致病基因之一,其突變可導(dǎo)致WS1和WS3。本文就PAX3基因在WS發(fā)病機(jī)制中的作用研究進(jìn)展予以綜述。
1PAX3基因簡述
1.1PAX3基因結(jié)構(gòu)與分布表達(dá) PAX3基因定位于2q35-2q37,包含10個外顯子,cDNA全長1.4 kb,其編碼的PAX3蛋白是配對盒轉(zhuǎn)錄因子PAX家族成員之一。人和小鼠PAX蛋白家族共有九個成員,PAX3蛋白在脊椎動物高度保守,人和小鼠的PAX3蛋白氨基酸序列高度保守,同源性達(dá)98%[3]。PAX3在人和小鼠神經(jīng)、心血管、內(nèi)分泌和骨骼肌系統(tǒng)的正常形成和發(fā)育中起關(guān)鍵作用[4,5]。PAX3在小鼠胚胎期第8.5天(E8.5)時開始表達(dá),在第9~12天(E9~E12)達(dá)高峰,第13天(E13)時開始下降,到第17天(E17)表達(dá)最低。PAX3最早于NC遷徙前在背神經(jīng)管表達(dá),后隨神經(jīng)管的遷徙發(fā)育而逐漸開始在中樞神經(jīng)系統(tǒng)、關(guān)節(jié)、骨骼肌以及NC源性組織如周圍神經(jīng)系統(tǒng)(感覺和運動神經(jīng)節(jié)、脊神經(jīng)后根、交感神經(jīng)節(jié)、胃腸道神經(jīng)節(jié))、心肌間質(zhì)、平滑肌、胸腺、腎上腺髓質(zhì)細(xì)胞、皮膚毛發(fā)和內(nèi)耳的黑素細(xì)胞中廣泛表達(dá),調(diào)控胚胎的生長發(fā)育,在骨骼肌、腫瘤及黑色素的形成過程中發(fā)揮重要作用。
1.2PAX3基因蛋白結(jié)構(gòu)與功能域 PAX3蛋白由479個氨基酸組成,分子量約53 kD,主要特征是含有4個高度保守的結(jié)構(gòu)域[4]:配對盒結(jié)構(gòu)域(paired box domain,PD)、同源結(jié)構(gòu)域(homeodomain,HD)、高度保守的鋅肽序列和富含絲氨酸-蘇氨酸-脯氨酸的轉(zhuǎn)錄激活域,其中PD和HD是PAX3蛋白的重要功能域,具有高度的保守性,主要作用是與特異DNA結(jié)合。GTTCC或GTTAC及ATTA分別是PD和HD結(jié)合DNA的核心序列[6]。
PD在PAX3的氨基末端區(qū),由第34~161位共128個氨基酸組成,包括2~4號外顯子,含有2個亞結(jié)構(gòu)域PAI和RED,分別位于PD的N端和C端。每個PAI域和RED域各有一個螺旋-轉(zhuǎn)角-螺旋(helix-turn-helix,HTH)結(jié)構(gòu),每個HTH序列均由3個α-螺旋組成[4]。PAI的作用是結(jié)合DNA以及促進(jìn)PAX3與其他蛋白的相互作用,RED亞區(qū)在PAX3蛋白中的作用還不是很清楚。體外實驗[7,8]顯示PD促進(jìn)PAX3與DNA結(jié)合以及與其他蛋白相互作用,如與含有高遷移組功能域(high mobility group,HMG)的SOX10蛋白[SRY (sex determining region Y)-box 10,性別區(qū)決定盒10]和CIB1蛋白(calcium and integrin binding 1, 鈣粘和蛋白1)相互作用。通過PD域,PAX3與SOX10可協(xié)同激活在黑素細(xì)胞中起重要調(diào)控作用的MITF基因(microphthalmia-associtated transcription factor,小眼畸形相關(guān)轉(zhuǎn)錄因子)和c-RET基因(cret receptor tyrosine kinase,酪氨酸蛋白激酶受體)轉(zhuǎn)錄。HD是PAX3蛋白與DNA結(jié)合以及與其他蛋白相互作用的另一個功能域,由第220~277位共58個氨基酸組成,包括5、6號外顯子,包含3個α-螺旋結(jié)構(gòu):螺旋Ⅰ、Ⅱ和Ⅲ。同PD一樣,HD可與其它蛋白作用以調(diào)控PAX3活性[4],也可調(diào)節(jié)PD與DNA的結(jié)合[9]。二者在功能上并非相互獨立,而是可以相互作用促進(jìn)PAX3蛋白與DNA結(jié)合。PD的突變可以影響HD與DNA的結(jié)合,HD的突變也可以影響PD與DNA的結(jié)合[10]。
1992年Tassabegji和Baldwin首次在WS1患者檢測到PAX3基因雜合突變,使得PAX3成為WS的第一個致病基因,揭開了從分子水平研究WS發(fā)病機(jī)制的序幕。1993年Hoth在WS3患者中檢測到PAX3基因雜合突變[11],同年P(guān)AX3突變小鼠模型Sploth(Spl)小鼠建立[12],純合突變Pax3小鼠Spl(-/-)由于神經(jīng)管發(fā)育缺陷如脊柱裂、腦膨出和先天性心臟缺陷而在胚胎期、妊娠中期或出生后不久就死亡。雜合突變Pax3小鼠Spl(+/-)主要特征是腹部、尾部和足部出現(xiàn)斑片狀色素缺失。人的PAX3雜合突變導(dǎo)致輕度的WS1表型,而純合或復(fù)合雜合PAX3突變則導(dǎo)致嚴(yán)重的WS3表型,如腦膨出、脊柱裂和上肢發(fā)育畸形,部分病例導(dǎo)致患兒在胚胎期或嬰兒期死亡[13]。PAX3基因突變包括錯義突變、無義突變、移碼突變、小的堿基插入和缺失、剪切位點改變。目前已經(jīng)報道的致WS的PAX3基因突變共有98種(http://hearing.harvard.edu/genepages/pax3dream.html),其中致WS1基因突變80種,致WS3基因突變18種,一半是錯義突變,一半是無義或移碼突變,也有部分或全基因缺失突變報道[2]。約95%的突變位點位于2~5號外顯子,其中2號外顯子的突變發(fā)生率最高,其次為5、6號外顯子[3]。90%的WS1患者和50%的WS3患者中能檢測到PAX3突變[3]。
NC由神經(jīng)嵴細(xì)胞(neural crest cell,NCC)組成,是起源于背神經(jīng)管的多潛能細(xì)胞群。脊椎動物NCC在胚胎發(fā)育早期即出現(xiàn)在背神經(jīng)管中,在沿背神經(jīng)管遷徙的過程中逐漸分化為黑素細(xì)胞、神經(jīng)元細(xì)胞、神經(jīng)膠質(zhì)細(xì)胞、骨和軟骨細(xì)胞以及內(nèi)分泌細(xì)胞,參與許多組織的發(fā)育并逐漸分化為NC源性衍生物,包括肌肉骨骼系統(tǒng)、循環(huán)系統(tǒng)、內(nèi)分泌腺、周圍神經(jīng)系統(tǒng)和黑素細(xì)胞[14,15]。由于NCC發(fā)育不全導(dǎo)致的這些組織和細(xì)胞的病變統(tǒng)稱為神經(jīng)嵴病,約有20余種,WS即為其中之一。從NC分化為黑素細(xì)胞是一較為復(fù)雜的過程,NCC通過增殖、遷徙、生存、分化等過程逐漸演變?yōu)楹谒厍绑w細(xì)胞后到達(dá)真皮、表皮、內(nèi)耳血管紋和眼睛的脈絡(luò)膜,并開始發(fā)育為黑素細(xì)胞[16~18]。黑素細(xì)胞最重要的功能是產(chǎn)生黑色素以確保毛發(fā)和皮膚的色素沉著[19~21]。PAX3參與上述生理過程并在NC的發(fā)育中發(fā)揮重要的調(diào)控作用[3]。PAX3基因突變必然會造成NC、NC源性組織和細(xì)胞的發(fā)育異常,進(jìn)而導(dǎo)致黑素細(xì)胞發(fā)育不良,黑色素合成減少,表現(xiàn)為皮膚、毛發(fā)、虹膜低色素。血管紋是內(nèi)耳耳蝸結(jié)構(gòu)之一,在內(nèi)淋巴生成過程中起重要作用,動物模型研究[22]顯示黑素細(xì)胞發(fā)育不良會引起血管紋中黑素細(xì)胞源性的中間細(xì)胞缺乏進(jìn)而造成柯蒂器退化變性,最終導(dǎo)致感音神經(jīng)性聾。同時由于顱面骨、四肢骨骼肌肉均來源于胚胎的NC,因此NC的發(fā)育異常必然會導(dǎo)致這些組織和器官的發(fā)育異常,從而產(chǎn)生了WS的一系列伴隨癥狀。
3.1PAX3基因?qū)C發(fā)育的調(diào)控 PAX3基因在胚胎NC的發(fā)育中起關(guān)鍵作用,NC的發(fā)育依賴PAX3的正常功能。人和小鼠的PAX3基因表達(dá)水平下調(diào)時就會影響NC的正常發(fā)育。PAX3主要通過調(diào)控c-RET、Wnt1和轉(zhuǎn)化生長因子β2(transforming growth factor β2,TGF-β2)的表達(dá)促進(jìn)NC遷徙、生存和增殖[4,7,23,24],c-RET、Wnt1和TGF-β2是NC發(fā)育的關(guān)鍵調(diào)控因子。c-RET跨越NCC源性細(xì)胞胞膜,參與NCC的遷徙與增殖[5,25]。Wnt1參與神經(jīng)嵴分化[26],缺乏PAX3表達(dá)的小鼠胚胎背神經(jīng)管中的Wnt1表達(dá)減少。TFG-β2參與NCC分化與凋亡[27],TGF-β2純和突變小鼠可出現(xiàn)神經(jīng)嵴病,影響心臟、顱面骨結(jié)構(gòu)、泌尿生殖系統(tǒng)和內(nèi)耳發(fā)育,PAX3敲除小鼠胚胎的TGF-β2表達(dá)明顯減少。
3.2PAX3對黑素細(xì)胞發(fā)育的調(diào)控 PAX3在黑素細(xì)胞增殖、抗凋亡、遷徙、細(xì)胞系特異分化中起重要作用[4]。MITF、酪氨酸酶相關(guān)蛋白1(tyrosinase related protein 1,TRP1)和多巴色素異構(gòu)酶(dopachrome tautomerase,DCT)是黑素細(xì)胞發(fā)育和黑色素合成中關(guān)鍵性和標(biāo)志性調(diào)控因子。在黑素細(xì)胞的發(fā)育中,PAX3主要通過直接或與其它轉(zhuǎn)錄因子協(xié)同作用激活或抑制MITF、DCT和TRP1的表達(dá),參與調(diào)控黑素細(xì)胞的生長、發(fā)育與分化[4,28],既能促進(jìn)也能抑制黑色素合成。MITF和TYRP1是PAX3直接調(diào)控的下游靶基因,PAX3可直接上調(diào)TYRP1表達(dá)[29],使黑素細(xì)胞產(chǎn)生黑色素。PAX3單獨上調(diào)MITF表達(dá)的能力較弱,需與SOX10相互作用協(xié)同激活并上調(diào)MITF轉(zhuǎn)錄,二者在MITF啟動子上的DNA結(jié)合位點僅相差一個堿基[8,30]。PAX3通過PD域和HD域與MITF轉(zhuǎn)錄起始點上游的順式作用元件結(jié)合后調(diào)控MITF的表達(dá)來影響成黑素細(xì)胞向黑素細(xì)胞發(fā)展[29]。PAX3基因通過和淋巴增強(qiáng)因子1(lymphoid enhancer factor 1,LEF1)及Groucho相關(guān)蛋白4(Groucho-related protein 4,Grg4)在DCT增強(qiáng)子上形成復(fù)合體阻止MITF與DCT的結(jié)合而抑制DCT表達(dá)[4],PAX3基因通過抑制DCT表達(dá)、阻止MITF與DCT啟動子結(jié)合來防止終末分化因子的表達(dá)。但當(dāng)β-catenin存在時,LEF1與MITF形成蛋白復(fù)合體并使PAX3基因離開DCT增強(qiáng)子,MITF進(jìn)而上調(diào)DCT表達(dá)。盡管黑素細(xì)胞發(fā)育調(diào)控機(jī)制的整個分子途徑還不清楚,但PAX3對MITF、DCT和TYRP1三個基因的調(diào)控代表了整個機(jī)制的一部分,其作用在于使黑素干細(xì)胞向黑素細(xì)胞分化的同時阻止其終末分化并保證黑素細(xì)胞的增殖,維持其生長。
PAX3基因還可通過與其他蛋白相互作用來完成對下游基因轉(zhuǎn)錄的抑制或激活而影響它們的表達(dá)[7,31],進(jìn)而影響黑素細(xì)胞的發(fā)育。SOX10和TAZ蛋白(tafazzin,亦稱WW domain-containing transcriptional regulator 1,WWTR1,雙W域轉(zhuǎn)錄調(diào)控因子1)可以增強(qiáng)PAX3的轉(zhuǎn)錄活性,PAX3和SOX10通過他們的DNA結(jié)合位點直接作用協(xié)同激活MITF和c-RET的表達(dá)。
3.3PAX3基因突變致WS發(fā)病的分子機(jī)制研究 多數(shù)研究[8,10,29,32]認(rèn)為突變影響PAX3與DNA結(jié)合活性,導(dǎo)致PAX3蛋白功能降低或喪失,最終以單倍體劑量不足效應(yīng)(haploinsufficiency)導(dǎo)致WS。目前發(fā)現(xiàn)的30多個錯義突變位點幾乎全部位于PD域和HD域,PD域突變通過影響PAX3與DNA的結(jié)合而導(dǎo)致PAX3蛋白功能減弱或喪失,使得其下調(diào)或失去對靶基因表達(dá)的調(diào)控作用[10]。HD域突變通過破壞維持HD域構(gòu)象而影響HD域折疊的穩(wěn)定性,進(jìn)而影響其與DNA結(jié)合[33,34]。無義突變或移碼突變影響PAX3與SOX10相互作用而下調(diào)靶基因MITF表達(dá),進(jìn)而影響黑色素合成[7]。Matsunaga[32]通過分析PAX3-DNA復(fù)合體的三維晶體結(jié)構(gòu)預(yù)測PD域的無義突變可使PAX3與DNA的結(jié)合力減弱或喪失而影響PAX3蛋白功能,進(jìn)而導(dǎo)致WS1。也有研究[8,35]認(rèn)為位于PD和HD的突變可使PAX3蛋白入核動力及亞細(xì)胞定位發(fā)生改變而致蛋白功能下降或喪失,最終導(dǎo)致WS。而位于PD和HD之外的突變不影響PAX3亞細(xì)胞定位,而是通過異位剪切導(dǎo)致PAX3功能不良而致WS。
目前PAX3基因?qū)е耊S的發(fā)病機(jī)制還不是很清楚,相關(guān)研究主要以體外實驗分子水平研究為主,不能完全模擬和反映機(jī)體內(nèi)WS的發(fā)生,這需要在體內(nèi)實驗動物水平進(jìn)一步研究WS發(fā)病的分子機(jī)制。NC及NC源性細(xì)胞和組織的發(fā)育是一個十分復(fù)雜的網(wǎng)絡(luò)調(diào)控體系,盡管PAX3在NC和黑素細(xì)胞發(fā)育過程中調(diào)控作用開始逐步被認(rèn)識,仍有許多問題有待解決,PAX3基因調(diào)控NC發(fā)育的具體機(jī)制、PAX3轉(zhuǎn)錄活性被調(diào)控的機(jī)制、PAX3蛋白化學(xué)修飾對其功能的影響、潛在的PAX3基因調(diào)控的下游靶基因、PAX3基因劑量在WS發(fā)病中的生理病理作用等,有待于逐步闡明,以便更明確地認(rèn)識PAX3基因在NC發(fā)育與WS發(fā)生中的作用。
5 參考文獻(xiàn)
1 Kochhar A, Hildebrand MS, Smith RJ. Clinical aspects of hereditary hearing loss[J]. Genet Med, 2007,9:393.
2 Milunsky JM, Maher TA, Ito M, et al. The value of MLPA in Waardenburg syndrome[J]. Genet Test, 2007,11:179.
3 Pingault V, Ente D, Dastot-Le Moal F, et al. Review and update of mutations causing Waardenburg syndrome[J]. Hum Mutat, 2010,31:391.
4 Kubic JD, Young KP, Plummer RS, et al. Pigmentation PAX-ways: the role of Pax3 in melanogenesis, melanocyte stem cell maintenance, and disease[J]. Pigment Cell Melanoma Res, 2008,21:627.
5 Wu M, Li J, Engleka KA, et al. Persistent expression of Pax3 in the neural crest causes cleft palate and defective osteogenesis in mice[J]. J Clin Invest, 2008,118:2 076.
6 Potterf SB, Furumura M, Dunn KJ, et al. Transcription factor hierarchy in Waardenburg syndrome: regulation of MITF expression by SOX10 and PAX3[J]. Hum Genet, 2000,107:1.
7 Lang D, Epstein JA. Sox10 and Pax3 physically interact to mediate activation of a conserved c-RET enhancer[J]. Hum Mol Genet, 2003,12:937.
8 Zhang H, Chen H, Luo H, et al. Functional analysis of Waardenburg syndrome-associated PAX3 and SOX10 mutations: report of a dominant-negative SOX10 mutation in Waardenburg syndrome type II[J]. Hum Genet, 2012,131:491.
9 Cao Y, Wang C. The COOH-terminal transactivation domain plays a key role in regulating the in vitro and in vivo function of Pax3 homeodomain[J]. J Biol Chem, 2000,275:9 854.
10 Corry GN, Raghuram N, Missiaen KK, et al. The PAX3 paired domain and homeodomain function as a single binding module in vivo to regulate subnuclear localization and mobility by a mechanism that requires base-specific recognition[J]. J Mol Biol, 2010,402:178.
11 Hoth CF, Milunsky A, Lipsky N, et al. Mutations in the paired domain of the human PAX3 gene cause Klein-Waardenburg syndrome (WS-III) as well as Waardenburg syndrome type I (WS-I) [J]. Am J Hum Genet, 1993,52:455.
12 Epstein DJ, Vogan KJ, Trasler DG, et al. A mutation within intron 3 of the Pax-3 gene produces aberrantly spliced mRNA transcripts in the splotch (Sp) mouse mutant[J]. Proc Natl Acad Sci USA, 1993,90:532.
13 Wollnik B, Tukel T, Uyguner O, et al. Homozygous and heterozygous inheritance of PAX3 mutations causes different types of Waardenburg syndrome[J]. Am J Med Genet A, 2003,122A:42.
14 Le Douarin NM, Creuzet S, Couly G, et al. Neural crest cell plasticity and its limits[J]. Development, 2004,131:4 637.
15 Trainor PA. Specification and patterning of neural crest cells during craniofacial development[J]. Brain Behav Evol, 2005,66:266.
16 Crane JF, Trainor PA. Neural crest stem and progenitor cells[J]. Annu Rev Cell Dev Biol, 2006,22:267.
17 Dupin E, Le Douarin NM. Development of melanocyte precursors from the vertebrate neural crest[J]. Oncogene, 2003,22:3 016.
18 Sauka-Spengler T, Bronner-Fraser M. Development and evolution of the migratory neural crest: a gene regulatory perspective[J]. Curr Opin Genet Dev, 2006,16:360.
19 Brito FC, Kos L. Timeline and distribution of melanocyte precursors in the mouse heart[J]. Pigment Cell Melanoma Res, 2008,21:464.
20 Steingrimsson E, Copeland NG, Jenkins NA. Melanocytes and the microphthalmia transcription factor network[J]. Annu Rev Genet, 2004,38:365.
21 Yajima I, Larue L. The location of heart melanocytes is specified and the level of pigmentation in the heart may correlate with coat color[J]. Pigment Cell Melanoma Res, 2008,21:471.
22 Tachibana M, Kobayashi Y, Matsushima Y. Mouse models for four types of Waardenburg syndrome[J]. Pigment Cell Res, 2003,16:448.
23 Fenby BT, Fotaki V, Mason JO. Pax3 regulates Wnt1 expression via a conserved binding site in the 5' proximal promoter[J]. Biochim Biophys Acta, 2008,1779:115.
24 Mayanil CS, Pool A, Nakazaki H, et al. Regulation of murine TGFbeta2 by Pax3 during early embryonic development[J]. J Biol Chem, 2006,281:24 544.
25 de Groot JW, Links TP, Plukker JT, et al. RET as a diagnostic and therapeutic target in sporadic and hereditary endocrine tumors[J]. Endocr Rev, 2006,27:535.
26 Wu J, Saint-Jeannet JP, Klein PS. Wnt-frizzled signaling in neural crest formation[J]. Trends Neurosci, 2003,26:40.
27 Soma T, Tsuji Y, Hibino T. Involvement of transforming growth factor-beta2 in catagen induction during the human hair cycle[J]. J Invest Dermatol, 2002,118:993.
28 Lang D, Lu MM, Huang L, et al. Pax3 functions at a nodal point in melanocyte stem cell differentiation[J]. Nature, 2005,433:884.
29 Corry GN, Underhill DA. Pax3 target gene recognition occurs through distinct modes that are differentially affected by disease-associated mutations[J]. Pigment Cell Res, 2005,18:427.
30 Bondurand N, Pingault V, Goerich DE, et al. Interaction among SOX10, PAX3 and MITF, three genes altered in Waardenburg syndrome[J]. Hum Mol Genet, 2000,9:1 907.
31 Smit DJ, Smith AG, Parsons PG, et al. Domains of Brn-2 that mediate homodimerization and interaction with general and melanocytic transcription factors[J]. Eur J Biochem, 2000,267:6 413.
32 Matsunaga T, Mutai H, Namba K, et al. Genetic analysis of PAX3 for diagnosis of Waardenburg syndrome[J]. Acta Otolaryngol, 2013,133:345.
33 Birrane G, Soni A, Ladias JA. Structural basis for DNA recognition by the human PAX3 homeodomain[J]. Biochemistry, 2009,48:1 148.
34 Chi YI. Homeodomain revisited: a lesson from disease-causing mutations[J]. Hum Genet, 2005,116:433.
35 Corry GN, Hendzel MJ, Underhill DA. Subnuclear localization and mobility are key indicators of PAX3 dysfunction in Waardenburg syndrome[J]. Hum Mol Genet, 2008,17:1 825.