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      發(fā)狀念珠藻胞外多糖體外免疫活性研究①

      2014-03-18 11:41:40郭金英李彤輝任國艷張玉先馮惠敏
      中國免疫學雜志 2014年12期
      關(guān)鍵詞:念珠淋巴細胞多糖

      郭金英 杜 潔 李彤輝 任國艷 王 萍 張玉先 馮惠敏

      (河南科技大學食品與生物工程學院,洛陽 471023)

      發(fā)狀念珠藻(Nostoc flagelliforme)是一種生活在干旱、半干旱地區(qū)的藍藻[1],在我國發(fā)現(xiàn)已有近兩千年的歷史。它富含蛋白質(zhì)、多糖、20 多種微量元素和19 種氨基酸,是一種重要的食品和藥品資源[2]。

      發(fā)狀念珠藻多糖是一種酸性雜多糖,由木糖、甘露糖、半乳糖、葡萄糖以及葡萄糖醛酸組成,是發(fā)狀念珠藻藻體正常的分泌物質(zhì),是一種極具開發(fā)潛力的天然藥物資源[3]。日本微細藻類綜合研究所和富山醫(yī)科藥科大學率先從發(fā)狀念珠藻藻體中分離出多糖,并對其結(jié)構(gòu)和生理活性進行了研究,發(fā)現(xiàn)發(fā)狀念珠藻在生長過程中向細胞外分泌的多糖具有抗病毒[4]、抗氧化和清除自由基[5]等功效。

      近年來發(fā)狀念珠藻多糖的研究多集中在多糖的分離純化、理化性質(zhì)及結(jié)構(gòu)等方面。Yu 等[6]研究獲得了發(fā)狀念珠藻胞外多糖和莢膜多糖的理想提取工藝,并得到了單一多糖,并論證了胞外多糖和莢膜多糖對幾種活性自由基均有清除能力。賈夢瑤等[7]對液體懸浮培養(yǎng)的發(fā)狀念珠藻產(chǎn)生的粗多糖進行了質(zhì)量分析。Dai 等[8]采用徑向流色譜法研究了發(fā)狀念珠藻多糖的純化。

      藻類多糖是一種免疫調(diào)節(jié)劑,對免疫系統(tǒng)具有重要的調(diào)節(jié)作用,它能激活淋巴細胞、自然殺傷細胞、細胞毒性T 細胞等免疫細胞,還能促進細胞因子生成,從而在抗腫瘤方面顯示出獨特功效。發(fā)狀念珠藻多糖作為一種非常有應(yīng)用前景的生物多糖,其生物活性的研究尚處于起步階段,未見多糖體外活性研究的報道。因此,本實驗選用液體懸浮培養(yǎng)發(fā)狀念珠藻為材料,在前期分離純化發(fā)狀念珠藻胞外多糖的基礎(chǔ)上,進行發(fā)狀念珠藻胞外多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖和轉(zhuǎn)化活性的研究,為發(fā)狀念珠藻的開發(fā)應(yīng)用提供科學依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 試劑 紅細胞裂解液、細胞培養(yǎng)液(RPMI1640)、胎牛血清和二甲基亞砜(北京康為世紀有限公司);刀豆蛋白A(ConA)和噻唑藍(MTT)(Sigma 公司)。

      1.2 實驗動物 ICR 小鼠,雄性,體重18~22 g(河南科技大學動物實驗中心)。

      1.3 儀器 R205 旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)器(上海申生科技有限公司);LG-5 真空冷凍干燥機(上海市離心機械研究所);722S 可見分光光度計(上海精密科學儀器有限公司);TGL-16G 離心機(上海安亭科學儀器廠);SW-CJ-1F 超凈工作臺(蘇州凈化設(shè)備有限公司);E191IR CO2培養(yǎng)箱(GOLD-SIM 公司);Stat Fax 2100 酶標儀(北京卓信偉業(yè)科技有限公司)。

      1.4 發(fā)狀念珠藻液體培養(yǎng) 活化后的發(fā)狀念珠藻無菌條件下懸浮于新鮮的100 ml BG-11 培養(yǎng)液中,調(diào)整懸浮液濃度,至A750 nm 約為1。于生化培養(yǎng)箱中在25℃和4 000 Lx 光照強度下進行擴大培養(yǎng),每20 d 為一個周期。

      1.5 發(fā)狀念珠藻胞外多糖制備 熱水提取-木瓜蛋白酶水解蛋白質(zhì)-乙醇沉淀-蒸餾水溶解-sevag 試劑脫蛋白-乙醇沉淀-蒸餾水溶解-冷凍干燥。通過硫酸-苯酚法測得胞外多糖純度為82.50%。

      1.6 小鼠脾淋巴細胞懸液制備 將ICR 小鼠脫頸椎處死,無菌摘取脾臟,過200 目網(wǎng)篩,用PBS 液洗滌2~3 次,1 500 r/min 離心10 min;加入紅細胞裂解液,冰上孵育15 min,450 r/min 離心10 min 收集白細胞,吸棄上清液;再用含10%胎牛血清的RPMI1640 培養(yǎng)液將細胞濃度調(diào)整到5×106個/ml,冷藏備用[9]。

      1.7 試驗設(shè)計 將多糖質(zhì)量濃度設(shè)定在100 μg/ml,設(shè)置7 個時間點(0、12、24、36、48、60 和72 h),測定不同培養(yǎng)時間下多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖轉(zhuǎn)化作用的影響。

      設(shè)置5 個多糖濃度梯度(0、25、50、100 和200 μg/ml),培養(yǎng)脾淋巴細胞60 h,測定不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖轉(zhuǎn)化作用的影響。

      1.8 小鼠脾淋巴細胞增殖試驗 實驗組96 孔細胞培養(yǎng)板每孔加入100 μl 脾淋巴細胞懸液及100 μl糖液;空白對照組加100 μl 脾淋巴細胞懸液和100 μl 細胞培養(yǎng)液。每組設(shè)5 復孔,在37℃、CO2濃度為5%的CO2培養(yǎng)箱培養(yǎng)對應(yīng)的一段時間后,每孔加入20 μl 5 μg/ml 的MTT 溶液,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,終止培養(yǎng)。每孔吸棄上清液,加入二甲基亞砜150 μl,震蕩10 min,使結(jié)晶物充分溶解[10]。酶標儀測其在492 nm 處吸光度。

      1.9 小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化試驗 取96 孔細胞培養(yǎng)板,實驗組每孔加100 μl 脾淋巴細胞懸液、100 μl糖液和20 μl 10 μg/ml ConA 溶液;ConA 對照組加100 μl 脾淋巴細胞懸液、100 μl 細胞培養(yǎng)液和20 μl 10 μg/ml ConA 溶液。其他操作方法同1.8。

      2 結(jié)果

      2.1 多糖在不同培養(yǎng)時間對小鼠脾淋巴細胞增殖活性的影響 由圖1 可見,隨著培養(yǎng)時間的延長,小鼠脾淋巴細胞增殖活性明顯提高,各實驗組之間差異顯著;與空白對照組相比,各實驗組小鼠脾淋巴細胞增殖活性顯著提高;隨著培養(yǎng)時間的延長,實驗組和空白對照組的脾淋巴細胞一直在增殖,A492nm呈上升趨勢,且在36、48、60 及72 h 時,淋巴細胞增殖反應(yīng)更加明顯,72 h 時A492nm 達最大值;隨著培養(yǎng)時間的延長,多糖促進脾淋巴細胞的增殖能力呈現(xiàn)一定的時間依賴性。

      圖1 多糖在不同培養(yǎng)時間對小鼠脾淋巴細胞增殖活性的影響Fig.1 Temporal-dependent effect of polysaccharose on proliferation of mouse spleen cells

      2.2 多糖在不同培養(yǎng)時間對小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性的影響

      ConA 具有強力的促有絲分裂作用,單獨作用于淋巴細胞時能夠促進淋巴細胞增殖轉(zhuǎn)化,而當ConA與某些抗原共同作用時,對淋巴細胞有絲分裂的促進作用便形成了特殊的協(xié)同作用。圖2 顯示,隨著培養(yǎng)時間的延長,小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性明顯提高,各實驗組之間差異顯著;各實驗組和ConA 對照組的A492 nm 隨培養(yǎng)時間的延長一直呈上升趨勢,且在36、48、60 及72 h 時,脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性明顯提高,72 h 時A492 nm 達最大值;與各實驗組的ConA 對照組相比,各實驗組小鼠脾淋巴細胞的轉(zhuǎn)化活性明顯提高,說明多糖與ConA 有協(xié)同作用,增強了淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力。

      2.3 不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖活性的影響 不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖活性的影響見圖3,可以看出,同糖液濃度為零的對照組相比,糖液濃度為25 μg/ml 實驗組的小鼠脾淋巴細胞增殖活性沒有顯著提高,而糖液濃度為50、100 和200 μg/ml 實驗組的小鼠脾淋巴細胞增殖活性極顯著提高,說明多糖可刺激小鼠脾淋巴細胞的增殖,并表現(xiàn)一定的劑量效應(yīng)。隨著多糖質(zhì)量濃度的提高,A492nm 先升后降,且在質(zhì)量濃度100 μg/ml 時取得最大值,其增殖效果最為明顯,而200μg/ml濃度時,A492nm 下降,說明多糖高于一定濃度后,反而對細胞分裂起一定抑制作用。

      圖2 多糖在不同培養(yǎng)時間對小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性的影響Fig.2 Temporal-dependent effects of polysaccharose on transformation of mouse spleen cells

      圖3 不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞增殖活性的影響Fig.3 Dose-dependent effect of polysaccharose on proliferation of mouse spleen cells

      圖4 不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性的影響Fig.4 Dose-dependent effect of polysaccharose on transformation of mouse spleen cells

      2.4 不同濃度多糖對小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性的影響 從圖4 可知,在一定劑量范圍內(nèi)多糖與ConA共同作用,能夠顯著提高脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力。同糖液濃度為零的對照組相比,糖液濃度為25 μg/ml實驗組的小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性顯著提高,糖液濃度為50、100 和200 μg/ml 實驗組的小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化活性極顯著提高。隨著多糖質(zhì)量濃度的增大,A492nm 呈先上升后下降趨勢,且在質(zhì)量濃度100 μg/ml 時,其轉(zhuǎn)化作用最強,大于100 μg/ml 濃度時,其轉(zhuǎn)化作用隨著多糖質(zhì)量濃度的增大而減弱。

      3 討論

      脾臟是機體內(nèi)重要的免疫器官,是體外試驗中淋巴細胞的重要來源。脾淋巴細胞包括T 淋巴細胞和B 淋巴細胞,并且ConA 及LPS 可以誘導它們活化。脾淋巴細胞增殖轉(zhuǎn)化活性的檢測在評價細胞免疫功能中具有重要意義,其增殖轉(zhuǎn)化效果決定了效應(yīng)淋巴細胞的數(shù)量,反映出機體免疫水平的高低,因此可作為測定體外免疫活性影響的指標。

      宋利華等[11]發(fā)現(xiàn)通過采用柱分離對人參酸性多糖進行逐級分離,各級分對脾淋巴細胞增殖都有不同程度的促進作用,其中GPA-4 刺激作用最強。本研究表明發(fā)狀念珠藻胞外多糖有促進小鼠脾淋巴細胞增殖轉(zhuǎn)化能力,并隨著時間的延長而增強,這可能是由于多糖與淋巴細胞共培養(yǎng)促進了淋巴細胞分泌細胞因子[12]。脾淋巴細胞在體外經(jīng)過不同物質(zhì)刺激后,可以在CO2培養(yǎng)箱72 h 內(nèi)檢測到其分裂活性,但由于刺激物質(zhì)不一樣,一般最佳培養(yǎng)時間也不一樣。

      周妍[13]研究了不同的海洋微藻對脾淋巴細胞的增殖作用,發(fā)現(xiàn)不同種類多糖對淋巴細胞增殖作用不同。周昌艷等[14]研究結(jié)果表明熱水提取的灰樹花子實體多糖與菌絲體多糖對體外培養(yǎng)的小鼠淋巴細胞的轉(zhuǎn)化增殖作用輕微;堿溶性灰樹花多糖對體外培養(yǎng)的小鼠淋巴細胞的促進增殖作用具有一定的量效關(guān)系。本研究則說明一定濃度范圍內(nèi)的發(fā)狀念珠藻胞外多糖對脾淋巴細胞增殖作用隨濃度上升而增大。不同物質(zhì)刺激同種類型的細胞,會產(chǎn)生不同的應(yīng)答效果,這種免疫應(yīng)答同分子的激活作用,可能與其對信號通路的開閉的影響有直接關(guān)系。

      ConA 為促細胞有絲分裂素,主要對T 淋巴細胞有激發(fā)作用。用ConA 刺激在CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)的脾淋巴細胞,淋巴細胞的體積會變大,代謝能力增強,并且蛋白質(zhì)和核酸的合成也有所增加。李江[15]研究了南極適冷菌胞外多糖對體外細胞免疫性的影響,結(jié)果表明南極適冷菌胞外多糖協(xié)同ConA 對脾淋巴細胞增殖的效果明顯高于單獨施用胞外多糖,且活性表現(xiàn)為劑量依賴關(guān)系。Chen 等[16]報道馬齒莧多糖對于ConA 誘導T 淋巴細胞和LPS 誘導B 淋巴細胞的增殖轉(zhuǎn)化均具有促進作用。石磊等[17]觀察巖藻多糖對小鼠細胞免疫功能的影響,發(fā)現(xiàn)巖藻多糖高、中劑量組淋巴細胞轉(zhuǎn)化值差明顯高于低劑量組,ConA 與多糖協(xié)同提高小鼠淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力。而本研究發(fā)現(xiàn)在ConA 協(xié)同作用下,發(fā)狀念珠藻胞外多糖顯著提高小鼠脾淋巴細胞轉(zhuǎn)化能力,并呈一定的劑量依賴性。

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