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      固態(tài)法發(fā)酵白酒中正丙醇產(chǎn)生的機(jī)理研究

      2014-04-12 06:08:54柏永昊熊小毛繆禮鴻陳文靜
      中國(guó)釀造 2014年2期
      關(guān)鍵詞:正丙醇純種小曲

      柏永昊,熊小毛,繆禮鴻 *,陳文靜

      (1.武漢輕工大學(xué)生物與制藥工程學(xué)院,湖北 武漢 430023;2.湖北白云邊酒業(yè)股份有限公司,湖北 松滋 434200)

      中國(guó)傳統(tǒng)白酒以谷物為原料,采用大曲或小曲提供糖化力和發(fā)酵力,經(jīng)過(guò)浸泡、蒸煮、堆積、發(fā)酵和蒸餾等工序制成。其制曲工藝多為敞開(kāi)式人工制曲,堆積培菌后進(jìn)入窖池,窖泥微生物參與到發(fā)酵過(guò)程中來(lái),因而固態(tài)法發(fā)酵白酒是一個(gè)由多種微生物參與的復(fù)雜轉(zhuǎn)化過(guò)程[1]。研究白酒中的微量組分與微生物之間的關(guān)系已成為熱點(diǎn)[2]。高級(jí)醇作為白酒呈香呈味的物質(zhì)之一,能襯托酯類的香氣,含量太低會(huì)導(dǎo)致口味淡薄,但含量太高會(huì)引起酒體辛辣苦澀,刺激神經(jīng),使人上頭易醉[3],因此我國(guó)白酒行業(yè)對(duì)高級(jí)醇含量有著嚴(yán)格的限制。正丙醇是高級(jí)醇的重要組分之一,在不同香型白酒中差異較大,兼香型白酒行業(yè)標(biāo)準(zhǔn)對(duì)其含量要求為0.2~1.0g/mL[4]。

      固態(tài)白酒發(fā)酵過(guò)程中高級(jí)醇的產(chǎn)生機(jī)理尚不清楚,因此目前國(guó)內(nèi)的研究主要從改變工藝條件對(duì)其加以控制,如改變投糧量、加曲量、加糠量、接種溫度等[5-7]。國(guó)外學(xué)者針對(duì)高級(jí)醇產(chǎn)生的機(jī)理,從細(xì)菌、酵母菌等菌種角度展開(kāi)了研究。JANSSEN P H[8]證實(shí)了一株厭氧梭菌(Anaerobic clostridium)能夠發(fā)酵蘇氨酸產(chǎn)生丙酸和正丙醇。CARRAN F M[9]發(fā)現(xiàn)在低氮水平下,一株葡萄酒酵母能產(chǎn)生更多高級(jí)醇。酵母菌的乙醇脫氫酶(alcohol dehydrogenase,ADH)活性與葡萄酒的高級(jí)醇產(chǎn)生量呈正相關(guān)[10]。而有關(guān)正丙醇的產(chǎn)生機(jī)理有2個(gè)推論:其一,蛋白質(zhì)分解機(jī)理,即蛋白質(zhì)分解為氨基酸,氨基酸被酵母菌或細(xì)菌利用,蘇氨酸脫胺基、脫羧基形成正丙醇;其二,糖的厭氧發(fā)酵機(jī)理,即氨基酸中間代謝產(chǎn)物α-酮丁酸脫羧、還原生成正丙醇[11]。受蛋白質(zhì)分解機(jī)理的影響,國(guó)內(nèi)白酒行業(yè)普遍懷疑正丙醇的產(chǎn)生與堆積料的耐高溫細(xì)菌有關(guān)。細(xì)菌是窖泥中的主要微生物,也被廣泛關(guān)注[12]。本課題組前期的研究已表明芽孢桿菌不是白酒中正丙醇產(chǎn)生的主要因子[13],在此基礎(chǔ)上,本研究旨在進(jìn)一步研究固態(tài)法發(fā)酵白酒中正丙醇產(chǎn)生的機(jī)理,為白酒釀造過(guò)程中正丙醇等高級(jí)醇產(chǎn)生量的調(diào)控提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      1.1.1 菌株來(lái)源

      根霉(Rhizopus)2-1:分離自“白云邊”小曲曲粉;釀酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)2-5M:分離自“白云邊”小曲出池酒醅。

      1.1.2 樣品來(lái)源

      “白云邊”大曲二輪入池酒醅、三輪出池上中下層酒醅及混合酒醅、“白云邊”小曲曲粉、高粱等均由白云邊酒業(yè)股份有限公司提供。

      1.1.3 培養(yǎng)基

      牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基:牛肉膏5g,蛋白胨10g,氯化鈉5g,水1 000mL,pH 7.2~7.4。

      虎紅培養(yǎng)基:北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司,取35g溶于1 000mL蒸餾水。

      酵母浸出粉胨葡萄糖培養(yǎng)基(yeast peptone dextrose medium,YPD)培養(yǎng)基:葡萄糖20g,蛋白胨10g,酵母粉10g,水1 000mL。

      1.1.4 試劑

      葡萄糖、氯化鈉:天津市科密歐化學(xué)試劑有限公司。牛肉膏、酵母粉、蛋白胨:英國(guó)OXOID公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      ZGP-2050普通生化培養(yǎng)箱:上海智誠(chéng)分析儀器制造有限公司;Nikon YS100顯微鏡:廣州頤騰貿(mào)易有限公司;7890A氣相色譜儀:美國(guó)安捷倫公司。

      1.3 實(shí)驗(yàn)方法

      1.3.1 酒醅中細(xì)菌、酵母菌活菌數(shù)的測(cè)定方法

      稱取10g酒醅樣品,加入裝有90mL無(wú)菌水的三角瓶中,170r/min搖床15min后,采用稀釋平板法[14]分別涂布于牛肉膏蛋白胨平板及虎紅平板上,置于30℃生化培養(yǎng)箱中培養(yǎng)2d,計(jì)數(shù),取單菌落劃線分離、鏡檢。

      1.3.2 工廠酒醅取樣及蒸餾方法

      分別取A、B兩個(gè)班組的“白云邊”大曲酒二輪入池酒醅、三輪出池酒醅(上、中、下層)樣品各50g用于酒精蒸餾。蒸餾液經(jīng)過(guò)濾后用氣相色譜法測(cè)定正丙醇含量。

      普通蒸餾操作:取50g酒醅,加入150mL蒸餾水,蒸餾取酒樣100mL。

      取頭酒蒸餾操作:取50g酒醅,加入100mL蒸餾水,蒸餾酒樣只取前15mL。

      1.3.3 實(shí)驗(yàn)室同步裝瓶發(fā)酵方法

      現(xiàn)場(chǎng)取工廠已堆積結(jié)束、即將入池的酒醅裝入750mL的玻璃菌種瓶中,裝滿后壓緊,用8層保鮮袋封口,置于生化培養(yǎng)箱28℃發(fā)酵30d,取出酒醅進(jìn)行蒸餾,過(guò)濾后用氣相色譜法測(cè)定正丙醇含量。

      1.3.4 實(shí)驗(yàn)室模擬小曲白酒發(fā)酵方法

      取600g高粱于60~70℃蒸餾水中浸泡24h后取出,放置于蒸鍋上層,用紗布?jí)|好,下層加水燒開(kāi),蒸粱1h。之后用100℃沸水浸泡燜粱0.5h,復(fù)蒸高粱1h,攤晾高粱,使之冷卻至30℃。接種小曲曲粉(接種量0.5%)后混勻。39~41℃堆積30h左右。將堆積料裝入750mL的玻璃菌種瓶中,裝滿后壓緊,用8層保鮮袋封口,置于生化培養(yǎng)箱28℃培養(yǎng)。發(fā)酵6d,取出酒醅蒸餾(普通蒸餾操作,同上),過(guò)濾后用氣相色譜測(cè)定蒸餾液中正丙醇含量及酒精度。

      1.3.5 實(shí)驗(yàn)室模擬小曲酒固態(tài)純種發(fā)酵方法

      基本方法同1.3.4,接種時(shí)用2%純種培養(yǎng)的種子液替代小曲曲粉。種子液培養(yǎng)方法:YPD平板活化根霉2-1和酵母菌2-5M,30℃培養(yǎng)36h后,轉(zhuǎn)接到Y(jié)PD液態(tài)培養(yǎng)基中,170r/min搖床培養(yǎng)12h。

      1.3.6 蒸餾液中正丙醇及酒精含量的測(cè)定方法

      蒸餾液中酒精、正丙醇、乙酸乙酯、丁酸乙酯、乳酸乙酯的含量測(cè)定均采用氣相色譜測(cè)定法[15]。

      1.3.7 色譜條件

      色譜柱:極性柱DB-WAXETR;載氣為高純氮?dú)猓涣魉贋?5mL/min,分流比為20∶l,氫氣流速為30mL/min,空氣流速為400mL/min。起始柱溫為60℃,保持2min,然后以5℃/min程序升溫至80℃。檢測(cè)器溫度:200℃;進(jìn)樣口溫度:200℃。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 工廠大曲入池和出池酒醅微生物數(shù)量測(cè)定結(jié)果

      圖1 大曲酒酒醅活菌數(shù)測(cè)定結(jié)果Fig.1 The count results of microorganism in Daqu fermented grains

      由圖1可知,大曲三輪出池酒醅中的細(xì)菌和酵母菌與二輪入池相比均大大降低,少量存活下來(lái)的為具有一定耐酒精能力的菌株。三輪出池下層酒醅的細(xì)菌數(shù)和酵母總數(shù)均高于中層和上層酒醅菌數(shù),可能是由于下層酒醅含水率相對(duì)較高,易于菌體生長(zhǎng)。

      2.2 工廠大曲酒醅與實(shí)驗(yàn)室同步模擬發(fā)酵酒醅結(jié)果比較

      表1 工廠A組大曲酒醅取樣蒸餾與實(shí)驗(yàn)室同步模擬發(fā)酵酒醅結(jié)果比較Table 1 Comparison of fermented distilled grains between samples from group A and synchronize simulate fermentation in lab

      如表1所示,對(duì)比“工廠二輪入池酒醅”與“工廠三輪出池酒醅”,前者正丙醇含量為0,即堆積后沒(méi)有正丙醇產(chǎn)生,而出池酒醅正丙醇含量為334.16mg/L,這表明正丙醇產(chǎn)生于入池發(fā)酵過(guò)程中,而不是在堆積過(guò)程中。與此相反,堆積后乙酸乙酯含量為312.1mg/L,遠(yuǎn)高于出池酒醅中的含量10.92mg/L,表明乙酸乙酯主要累積于堆積過(guò)程中。對(duì)比“工廠三輪出池酒醅”與“實(shí)驗(yàn)室同步三輪出池酒醅”,由于后者沒(méi)有窖泥微生物的參與,但正丙醇含量達(dá)820.80mg/L,甚至超過(guò)了前者的正丙醇含量334.16mg/L,這表明正丙醇的產(chǎn)生與窖泥微生物無(wú)關(guān)。其含量過(guò)高的原因,推測(cè)是由于實(shí)驗(yàn)室發(fā)酵條件比工廠更穩(wěn)定,優(yōu)勢(shì)菌種更早建立,因此乙酸乙酯、丁酸乙酯、乳酸乙酯的含量也有一定差異性。對(duì)比“實(shí)驗(yàn)室同步三輪出池酒醅”和其“取頭酒”的數(shù)據(jù),后者的正丙醇含量大幅增加,表明蒸餾酒樣品中正丙醇含量與蒸餾和收集方法直接相關(guān)。乙酸乙酯、丁酸乙酯和乳酸乙酯的含量也隨取頭酒操作而增加。

      如表2所示,工廠B組三輪出池的中、下層酒醅正丙醇含量均高于上層,而圖1反映了中、下層酒醅中的酵母菌活菌數(shù)也高于上層,由此可以看出,隨著取樣深度的增加,大曲酒醅的正丙醇含量和酵母菌數(shù)量呈正相關(guān)。與此相反地,下層酒醅的乙酸乙酯、丁酸乙酯和乳酸乙酯的含量卻低于上、中層,表明下層酒醅的發(fā)酵條件和環(huán)境抑制了產(chǎn)酯微生物的代謝,不利于優(yōu)質(zhì)白酒的產(chǎn)出。B組的實(shí)驗(yàn)室同步三輪出池酒醅正丙醇含量為4 808.86mg/L,同樣超過(guò)了工廠的三輪出池酒醅,與A組的結(jié)果一致。這也表明正丙醇的產(chǎn)生與窖泥微生物無(wú)關(guān)。但是實(shí)驗(yàn)室過(guò)于穩(wěn)定的發(fā)酵環(huán)境使參與發(fā)酵的微生物種類變少,酯類含量與工廠出池酒醅有差異。

      表2 大曲B組工廠取樣蒸餾與實(shí)驗(yàn)室同步裝瓶發(fā)酵酒醅結(jié)果(取頭酒)Table 2 Comparison of fermented distilled grains between samples from group B and synchronize bottle fermentation in lab(the first liquor)

      2.3 模擬小曲發(fā)酵過(guò)程中正丙醇產(chǎn)生時(shí)間及微生物數(shù)量的變化

      圖2 小曲酒模擬發(fā)酵過(guò)程中正丙醇與酒精度含量的變化Fig.2 The propanol content and alcohol content change during Xiaoqu simulated fermentation

      如圖2所示,在實(shí)驗(yàn)室模擬小曲發(fā)酵過(guò)程中,堆積結(jié)束時(shí)正丙醇的含量很低,與工廠堆積料的測(cè)定結(jié)果相一致,但堆積料在裝瓶發(fā)酵后的前24h,正丙醇含量激增,24h后增加速度趨于平緩,4d時(shí)正丙醇含量幾乎達(dá)到最大值,4d以后正丙醇含量增加十分緩慢。酒醅中酒精含量隨發(fā)酵時(shí)間延長(zhǎng)逐步提高。

      如圖3所示,裝瓶后酒醅中的細(xì)菌總活菌數(shù)在前24h內(nèi)急劇下降,2~4d內(nèi)趨于穩(wěn)定,4~6d細(xì)菌總數(shù)進(jìn)一步降低;而酵母菌總活菌數(shù)在前24h內(nèi)顯著增加,2~4d內(nèi)趨于穩(wěn)定,4~6d又有明顯增加,其變化趨勢(shì)與細(xì)菌恰恰相反。由此可以看出,酵母菌數(shù)量和正丙醇含量在實(shí)驗(yàn)室模擬小曲發(fā)酵過(guò)程中也是呈正相關(guān)的。因此可以推測(cè)固態(tài)法發(fā)酵白酒,無(wú)論是大曲酒還是小曲酒,正丙醇的含量與入池酒醅的酵母菌生態(tài)群落結(jié)構(gòu)有關(guān)。

      圖3 小曲酒模擬發(fā)酵過(guò)程中細(xì)菌總數(shù)和酵母總數(shù)的變化Fig.3 The total bacterial and yeast amount during Xiaoqu simulated fermentation

      2.4 模擬小曲固態(tài)純種發(fā)酵結(jié)果

      如圖4、圖5所示,以接種小曲曲粉為對(duì)照,在整個(gè)發(fā)酵過(guò)程中,實(shí)驗(yàn)室純種(僅接種根霉2-1和釀酒酵母2-5M)模擬小曲發(fā)酵的酒精產(chǎn)量與正丙醇產(chǎn)量均與對(duì)照組相近。表明釀酒酵母2-5M是模擬小曲發(fā)酵過(guò)程中正丙醇的主要產(chǎn)生菌株。

      圖4 釀酒酵母2-5M純種模擬小曲發(fā)酵中正丙醇含量隨時(shí)間變化圖Fig.4 The time-varying propanol content of Xiaoqu simulated fermentation by pure Saccharomyces cerevisiae 2-5M

      圖5 釀酒酵母2-5M純種模擬小曲發(fā)酵中酒精度隨時(shí)間變化圖Fig.5 The time-varying alcoholic content of Xiaoqu simulated fermentation by pure Saccharomyces cerevisiae 2-5M

      3 結(jié)論

      結(jié)果表明,酒醅中的酵母菌數(shù)量與其正丙醇含量成正相關(guān)。以不含窖泥的實(shí)驗(yàn)室同步模擬大曲酒醅發(fā)酵試驗(yàn)結(jié)果表明,固態(tài)發(fā)酵白酒酒醅中正丙醇的產(chǎn)生不依賴于窖泥微生物的存在。取頭酒的實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明蒸餾酒樣品中正丙醇含量與蒸餾和收集方式直接相關(guān)。

      實(shí)驗(yàn)室小曲模擬發(fā)酵實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,酒醅發(fā)酵過(guò)程中酵母菌總數(shù)與正丙醇含量成正相關(guān),而與細(xì)菌總數(shù)成負(fù)相關(guān)。堆積料在裝瓶發(fā)酵后24h內(nèi)正丙醇含量激增,4d時(shí)正丙醇含量達(dá)到最大值。采用僅含釀酒酵母和根霉的純種接種劑與含細(xì)菌的小曲曲粉進(jìn)行對(duì)比發(fā)酵試驗(yàn)表明,兩者發(fā)酵的酒精度和正丙醇含量均接近。表明酵母菌是白酒中正丙醇的主要產(chǎn)生菌。實(shí)驗(yàn)室接種小曲曲粉及純種發(fā)酵結(jié)果均表明,酒醅的酒精度與正丙醇含量基本呈正相關(guān)。由此可以推斷,固態(tài)法發(fā)酵白酒中正丙醇主要是在酵母菌進(jìn)行糖的厭氧發(fā)酵過(guò)程中作為酒精的副產(chǎn)物產(chǎn)生的,而不是細(xì)菌對(duì)蛋白質(zhì)分解導(dǎo)致的。

      為了控制正丙醇的含量,對(duì)于由多種微生物參與的固態(tài)法白酒發(fā)酵而言,可以首先篩選出入池發(fā)酵階段中的各種優(yōu)勢(shì)酵母菌,通過(guò)純種發(fā)酵和混合發(fā)酵的辦法找出產(chǎn)正丙醇高的酵母菌種類。進(jìn)而研究其代謝條件。在工廠實(shí)際生產(chǎn)中,可以采用改變發(fā)酵條件抑制此類酵母菌代謝,或是選擇產(chǎn)酯高而產(chǎn)正丙醇低的菌株制成強(qiáng)化曲添加到接種環(huán)節(jié)中,達(dá)到控制正丙醇含量、提升酯類香味物質(zhì)的目的。本研究為提高優(yōu)質(zhì)白酒的人工控制水平提供了理論依據(jù),對(duì)實(shí)際生產(chǎn)具有指導(dǎo)意義。

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