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      梓醇對缺糖缺氧誘導(dǎo)PC12細胞損傷的保護作用研究

      2014-10-10 02:14:12王瑩劉玉剛陳占法
      河北醫(yī)藥 2014年1期
      關(guān)鍵詞:梓醇亞硫酸鈉神經(jīng)細胞

      王瑩 劉玉剛 陳占法

      腦組織代謝旺盛,血流量豐富,因此腦缺血極易引起神經(jīng)細胞損害,致功能缺失。缺血、缺氧條件下,神經(jīng)元產(chǎn)生大量自由基,同時鈣離子(Ca2+)超載,損傷線粒體,從而誘導(dǎo)神經(jīng)元凋亡[1]。梓醇是一種環(huán)烯醚菇類的小分子化合物。研究表明,能促進PC12細胞軸突生長、保護海馬神經(jīng)元等[2,3]。文獻報道連二亞硫酸鈉聯(lián)合無糖Earle’s液損傷模型能較好地反映神經(jīng)細胞缺糖缺氧損傷[4],本研究以PC12細胞為基礎(chǔ)建立該模型,考察梓醇的干預(yù)作用,并從拮抗自由基損傷和減輕Ca2+超載探討其作用機制。

      1 材料與方法

      1.1 材料 大鼠腎上腺嗜鉻細胞瘤細胞(PC12)購自中科院上海細胞庫;梓醇購自上海同田生物技術(shù)公司,純度≥97%;連二亞硫酸鈉、RPMI1640培養(yǎng)基、噻唑藍MTT、胎牛血清均為 Gibco公司產(chǎn)品;乳酸脫氫酶(LDH)試劑盒、超氧化物歧化酶(SOD)試劑盒、谷胱甘肽過氧化物酶(GSH-Px)試劑盒、丙二醛(MDA)試劑盒購自南京建成生物公司。

      1.2 方法

      1.2.1 PC12細胞培養(yǎng)及分組:PC12細胞培養(yǎng)于含10%胎牛血清的RPMI1640培養(yǎng)基。細胞經(jīng)0.05%胰蛋白酶消化傳代后置含5%CO2的37℃培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng),取對數(shù)生長期的細胞進行實驗。實驗共分5組:正常對照組:不加任何藥物;缺糖、缺氧損傷組:加入終濃度含0.5 mmol/L連二亞硫酸鈉的無糖Earle’s液;梓醇高、中、低劑量組:梓醇終濃度分別為 10、1、0.1μmol/L,各濃度梓醇預(yù)處理細胞24 h后,加入連二亞硫酸鈉損傷,1 h后進行指標檢測。

      1.2.2 MTT法檢測細胞存活率:細胞以1×105個/ml接種于96孔板,每孔100μl。12 h后,按照實驗分組給予處理。檢測時每孔加5 mg/ml MTT溶液15μl,繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清后每孔加入150μl DMSO,振蕩10 min,用酶標儀在492 nm波長下測定各孔吸光度值(OD值)。細胞存活率(%)=處理組OD值/對照組OD值×100%。實驗重復(fù)3次。

      1.2.3 乳酸脫氫酶(LDH)漏出率檢測:細胞以4×105個/ml接種于24孔板,每孔500μl。12 h后,按照實驗分組給予處理。檢測時,按照試劑盒說明書進行操作。LDH釋放率(%)=上清LDH活性/(上清LDH活性+細胞溶解液LDH活性)×100%。

      1.2.4 SOD、GSH-Px活性及MDA含量測定:細胞以4×105個/ml接種于24孔板,每孔500μl。12 h后,按照實驗分組給予處理。檢測時,收集細胞,超聲裂解后低溫離心,取上清液按照試劑盒說明書測定SOD、GSH-Px活性及MDA含量。

      1.2.5 細胞內(nèi)游離 Ca2+濃度測定[5,6]:細胞以 7 ×104個/ml接種于25 cm2細胞培養(yǎng)瓶中,每瓶5 ml。12 h后,按照實驗分組給予處理。檢測時,收集細胞,應(yīng)用基礎(chǔ)培養(yǎng)基進行漂洗,加入1μmol/L Fura-2/AM,37℃避光恒溫震蕩45 min,漂洗,于雙波長熒光分光光度計上340 nm和380 nm處測F值,分別加入Triton X-100和EGTA,測F最大值(Fmax)及最小值(Fmin)。Ca2+=Kd(R-Rmin)/(Rmax-R)(Fmin/Fmax)。其中Kd是Fura-2與Ca2+的解離常數(shù),為224 nmol/L;R=F340/F380。

      1.3 統(tǒng)計學(xué)分析 應(yīng)用SPSS 16.0統(tǒng)計軟件,計量資料以±s表示,組間比較采用單因素方差分析檢驗,P<0.05為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

      2 結(jié)果

      2.1 PC12細胞生存率 與正常對照組比較,模型組細胞生存率顯著降低(P<0.01);與模型組比較,梓醇1μmol/L組、10μmol/L組細胞生存率顯著升高,差異有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.01)。見表1。

      表1 梓醇對PC12細胞生存率影響n=9,%,±s

      表1 梓醇對PC12細胞生存率影響n=9,%,±s

      注:與正常對照組比較,*P<0.01;與模型組比較,#P<0.01

      生存率正常對照組組別100模型組 46.8±1.9*梓醇0.1μmol/L組 49.1±3.6梓醇1μmol/L組 60.8±1.5#梓醇10μmol/L組 71.0±1.5#

      2.2 LDH漏出率 與正常對照組比較,模型組LDH漏出率顯著升高(P<0.01);與模型組比較,梓醇可劑量依賴性的降低LDH漏出率(P<0.05或<0.01)。見表2。

      2.3 SOD、GSH-Px的活性及MDA含量 與正常對照組比較,缺糖缺氧損傷降低了細胞上清SOD、GSH-Px的活性(P <0.01),而MDA含量顯著升高(P <0.01)。與模型組比較,梓醇1μmol/L組、10μmol/L組可劑量依賴性的升高SOD活性(P<0.01),升高GSH-Px活性(P <0.05或<0.01),梓醇10μmol/L組可降低MDA含量(P <0.05)。見表3。

      表2 梓醇對PC12細胞LDH漏出率影響

      表3 梓醇對PC12細胞SOD、GSH-Px活性及MDA含量影響

      2.4 細胞內(nèi)游離Ca2+濃度 與正常對照組相比,模型組細胞內(nèi)游離Ca2+濃度顯著增加(P<0.01)。與模型組比較,梓醇可劑量依賴性的降低細胞內(nèi)游離Ca2+濃度(P <0.05或 <0.01)。見表4。

      表4 梓醇對PC12細胞內(nèi)游離鈣離子濃度影響

      3 討論

      PC12細胞為大鼠腎上腺髓質(zhì)嗜鉻細胞瘤克隆化的細胞株,具有較典型的神經(jīng)內(nèi)分泌細胞特征,已廣泛用于細胞信號傳導(dǎo)與細胞內(nèi)信使、興奮性神經(jīng)毒性和神經(jīng)保護機制的研究[7,8]。

      缺血產(chǎn)生的腦細胞損傷在本質(zhì)上主要是腦組織氧、糖缺乏而引發(fā)的一系列事件的結(jié)果。體外常用缺氧低糖培養(yǎng)引起神經(jīng)細胞損傷模擬腦缺血模型[9]。實驗中主要選擇性的去除具有至關(guān)重要作用的葡萄糖以代表缺血所致的低營養(yǎng)條件。加入連二亞硫酸鈉清除培養(yǎng)基質(zhì)中的氧而達到使細胞發(fā)生化學(xué)性缺氧的目的,研究表明,含0.5 mmol/L連二亞硫酸鈉的無糖Earle’s液與PC12細胞共培養(yǎng)1 h,細胞活力下降。梓醇預(yù)給藥24 h,能減輕缺糖、缺氧對 PC12細胞的損傷。

      正常情況下LDH存在于細胞液中,一旦細胞膜通透性升高,即釋放到細胞外,因此LDH釋放是細胞膜通透性升高的一種標志性蛋白[10]。本實驗結(jié)果顯示,缺糖、缺氧導(dǎo)致PC12細胞膜通透性增加,LDH大量釋放。梓醇可劑量依賴性的減少細胞LDH的漏出,表明梓醇對缺糖、缺氧致細胞損傷具有一定的保護作用。

      正常代謝產(chǎn)生的自由基可被體內(nèi)相應(yīng)的自由基清除酶如SOD,GSH-Px及時清除,這對于保護細胞不受毒性氧自由基損傷有重要作用[11]。腦缺血再灌注時,產(chǎn)生大量氧自由基、激活興奮性氨基酸NMDA受體、促使內(nèi)源性谷氨酸大量釋放而引發(fā)神經(jīng)毒性,同時氧自由基防御系統(tǒng)功能受損,影響SOD、GSH-Px的活性,機體清除氧自由基的能力減弱,因此,測定SOD、GSHPx活性不僅可反映神經(jīng)細胞損傷的原因,而且還可以判斷細胞損傷的程度[12]。MDA是脂質(zhì)過氧化反應(yīng)中的重要產(chǎn)物,測定MDA生成可反映細胞膜結(jié)構(gòu)脂質(zhì)過氧化反應(yīng)的程度,間接反映氧自由基生成的情況以及細胞損傷的程度[13]。因此,我們分別檢測了SOD、GSH-Px及MDA在細胞中的活性及含量變化。

      本實驗表明,細胞損傷后,SOD、GSH-Px活性顯著下降,MDA含量顯著升高,表明缺血再灌注后氧自由基清除能力下降,氧自由基生成增加,脂質(zhì)過氧化程度加劇,提示所致細胞損傷與氧化損傷有關(guān)。缺血前加入梓醇,可劑量依賴性提高細胞中SOD、GSH-Px活性,降低MDA含量。提示梓醇可降低細胞脂質(zhì)過氧化反應(yīng),提高細胞清除超氧陰離子的能力,從而發(fā)揮抗自由基損傷的作用。

      Ca2+是神經(jīng)細胞信息傳遞的重要第二信使,對于維持神經(jīng)細胞正常代謝與功能起著重要的調(diào)控作用。細胞缺氧時,神經(jīng)元產(chǎn)生大量自由基,細胞線粒體功能障礙,能量供應(yīng)不足,鈣泵不能主動把細胞內(nèi)的Ca2+泵出細胞外,由于ATP不足,糖酵解代償性增強,使細胞內(nèi)[Ca2+]i升高,導(dǎo)致細胞Ca2+超載,啟動一系列病理生理機制,造成細胞損傷或死亡[14,15]。同時,Ca2+超載又會加重自由基的產(chǎn)生。體內(nèi)實驗已表明Ca2+在缺血缺氧性腦損傷中起著重要的作用[16]。本實驗也顯示,缺血缺氧神經(jīng)細胞內(nèi)Ca2+含量明顯高于正常對照組,說明PC12細胞在缺血缺氧的情況下,細胞膜受到損傷,其通透性發(fā)生了改變,出現(xiàn)了Ca2+內(nèi)流。梓醇可顯著降低受損PC12細胞內(nèi)的Ca2+含量,抑制Ca2+內(nèi)流,維持胞內(nèi)Ca2+穩(wěn)態(tài)平衡;提示其有可能通過抑制細胞內(nèi)Ca2+超載而對缺血缺氧損傷的PC12起到一定的保護作用。

      綜上所述,梓醇對連二亞硫酸鈉誘導(dǎo)的缺糖缺氧細胞損傷具有保護作用,該作用可能與其清除自由基和抑制鈣超載有關(guān)。

      1 蘭希發(fā),姚文秀,郭陽.腦缺血再灌注后神經(jīng)細胞凋亡的機制.中國臨床康復(fù),2003,7:2726-2727.

      2 Li DQ,Li Y,Liu Y,et al.Catalpol prevents the loss of CA1 hippocampal neurons and reduces working errors in gerbils after ischemia-reperfusion injury.Toxicon,2005,46:845-851.

      3 Jiang B,Liu JH,Bao YM,et al.Catalpol inhibits apoptosis in hydrogen peroxide-induced PC12 cells by preventing cytochrome release and inactivating of caspase cascade.Toxicon,2004,43:53-59.

      4 劉娜,左萍萍,周帆,等.連二亞硫酸鈉致PC12和NG108215細胞擬缺血損傷研究.中國藥理學(xué)通報,1998,14:525-529.

      5 Chen JG,Backus KH,Deitmer JW.Intracellular calcium transients and potassium current oscillations evoked by glutamate in cultured rat astrocytes.JNeurosci,1997,17:7278-7287.

      6 Grynkiewicz G,Poenie M,Tsien RY.A new generation of Ca2+indicators with greatly improved fluorescence properties.J Biol Chem,1985,260:3440-3450.

      7 Fukada K,Shoda T,Mima H,et al.Midazolam induces expression of c-Fos and EGR-1 by a non-GABA ergic mechanism.Anesth Analg,2002,95:373-378.

      8 Shinomiya N,Shinomiya M.Dichlorodiphenyltrichoethane suppresses neurite outgrowth and induces apoptosis in PC12 pheochromocytoma cells.Toxicol letters,2003,137:175-183.

      9 Otter D,Austin C.Hypoxia,metabolic inhibition,and isolated rat mesenteric tone:influence of arterial diameter.Microvascular Res,2000,59:107-114.

      10 Lobner D.Comparison of the LDH and MTT assays for quantifying cell death:validity for neuronal apoptosis.J Neurosci Methods,2000,96:147-152.

      11 Mugge A,Elwell J,Peterson TE,et al.Release of intact endothelium-derived relaxing factor depends on endothelial superoxide dismutase activity.Am JPhysiol,1991,260:219-255.

      12 Rodrigoa J,F(xiàn)emaez AP,Semanoa J,et al.The role of free radicals in cerebral hypoxia and ischemia.Free Radic Biol Med,2005,39:26-50.

      13 Kinnula VL,Everitt JI,Whorton AR,et al.Hydrogen peroxide productionby alverlar type Ⅱ cells,alveolar macrophages and endothelial cells.Am J Physiol,1999,261:84-91.

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