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      透明質酸鈉微球制備工藝的研究

      2014-12-03 03:06:44李丹初陽沈陽醫(yī)學院奉天醫(yī)院藥學部沈陽11004中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院藥學部沈陽11004
      中國藥房 2014年1期
      關鍵詞:混合油交聯劑透明質

      李丹,初陽(1.沈陽醫(yī)學院奉天醫(yī)院藥學部,沈陽11004;.中國醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院藥學部,沈陽11004)

      透明質酸(Hyaluronic acid,HA)及其鈉鹽是廣泛存在于人體及動物體內的一種黏多糖,是體內重要的生理活性物質,廣泛應用于食品、日化和醫(yī)藥領域[1-2];其在組織形成、細胞調控及血管生成方面都起著重要的作用[3]。HA本身具有良好的生物相容性、高黏彈性和毒副作用小等優(yōu)點,既可延緩皮膚衰老,補充皮膚水分;又可促進傷口愈合,防止疤痕產生[4-5]。雖然已有上市的含HA的化妝品[6],但其僅作為保濕劑出現,并非作為主要成分使用,因此藥用效果不明顯,也不適合大規(guī)模藥用。

      本文以透明質酸鈉為模型藥物,海藻酸鈉為骨架材料,采用乳化-交聯法制備了包載透明質酸鈉的海藻酸鈉微球。該制劑處方選擇和制備工藝的關鍵是利用微球所形成的不溶性骨架,以降低透明質酸鈉的釋放速度,延長釋藥時間,從而達到提高生物利用度的目的。本研究可為進一步制備透明質酸鈉緩釋制劑奠定基礎。

      1 材料

      DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器(鞏義市英峪予華儀器廠);FA1104電子天平(上海民橋精密科學儀器有限公司);UV-9100型紫外分光光度計(北京瑞利分析儀器有限公司);DMBA450生物數碼顯微鏡(麥克迪實業(yè)集團有限公司);LS320激光粒度儀(美國Beckman公司)。

      三乙醇胺(天津市博迪化工有限公司);透明質酸鈉(山東福瑞達生物醫(yī)藥有限公司,批號:0911062,藥用級,含量:99.5%);海藻酸鈉(河北大唐生物工程有限公司,藥用級);海藻酸鈉微球(沈陽醫(yī)學院奉天醫(yī)院藥學部);對羥基苯甲酸乙酯、氯化鈣、聚山梨酯80均為藥用級;二氯甲烷、異丙醇、液體石蠟、丙三醇、硬脂酸、白凡士林、阿利新藍均為分析純。

      2 方法與結果

      2.1 透明質酸鈉含量測定方法的建立

      精密稱量透明質酸鈉,用去離子水溶解后配成質量濃度為53.15、106.3、212.6、318.9、425.2 mg/L的標準溶液,搖勻。取上述標準溶液各1 ml,加入10 ml量瓶中,加6 ml阿利新藍染料染色,混合后用去離子水稀釋至刻度,作為顯色溶液。在510 nm波長處測定各溶液的吸光度值。以透明質酸鈉質量濃度(ρ)為橫坐標,標準溶液與顯色溶液的吸光度差值(A)為縱坐標繪制標準曲線,得回歸方程為:A=0.0017ρ+0.1848(r=0.9980,n=5)。結果表明,透明質酸鈉檢測質量濃度線性范圍為53.15~425.2 mg/L。低、中、高3個質量濃度(53.15、212.6、425.2 mg/L)的標準溶液的日內精密度RSD分別為1.88%、0.80%、0.63%(n=5);日間精密度RSD分別為2.57%、1.05%、0.84%(n=5);平均回收率為(97.9±1.80)%,RSD=1.84%(n=3)。

      2.2 透明質酸鈉微球的制備

      稱取適量透明質酸鈉,精密稱定,溶入蒸餾水中,超聲溶解后,將適量海藻酸鈉細粉溶于其中配成一定濃度的海藻酸鈉溶液,靜置除去氣泡,后用醫(yī)用9號注射器緩緩滴入攪拌的混合油相中。以一定的分散轉速磁力攪拌分散一定時間后,加入適量用氯化鈣飽和的交聯劑,固化[7]。將制得的微球分別用異丙醇洗滌2~3次,抽濾后,40℃干燥6 h,密封貯藏備用。

      2.3 透明質酸鈉包封率及載藥量的測定

      取制備的海藻酸鈉微球50 mg,置于蒸餾水5 ml中超聲10 min;37℃放置24 h,取上清液置于10 ml量瓶中,研磨微球至其破碎,離心15 min,將上清液吸取于量瓶中,用蒸餾水稀釋定容至10 ml;用0.45 μm微孔濾膜濾過。測定上清液中的藥物含量,計算微球中藥物的包封率及載藥量:包封率=微球中包裹的透明質酸鈉質量/透明質酸鈉加入量×100%;載藥量=微球中包裹的透明質酸鈉質量/微球的質量×100%。

      2.4 處方因素的考察

      經過多次預試驗,確定對包封率影響較大的幾個處方因素,考察結果如下。

      2.4.1 海藻酸鈉質量分數。固定其他的因素,考察海藻酸鈉的質量分數。分別配成含有1%透明質酸鈉的1%、2%、3%海藻酸鈉溶液,滴入二氯甲烷與植物油等比例組成的混合油相中,以300 r/min轉速分散15 min,加入交聯劑90 min后制備海藻酸鈉微球,其水相與交聯劑體積比為1∶1,透明質酸鈉與海澡酸鈉質量比為1∶2。結果顯示,當海藻酸鈉質量分數為1%時,黏度較低,無法成球;當海藻酸鈉質量分數為2%時,可成球,且干燥后球之間無粘連,鏡下觀察微球形態(tài)較好,包封率為(45.17±6.12)%(n=3);當海藻酸鈉質量分數為3%時,雖然包封率較高(57.28±5.54)%(n=3),但由于黏度較大,微球形態(tài)不佳。因此,選擇海藻酸鈉質量分數為2%。

      2.4.2 混合油相比例。固定海藻酸鈉質量分數為2%,制備方法同“2.4.1”項,選擇植物油與二氯甲烷的混合油相,體積比為3∶1、2∶2、1∶3,并加入2%油酸山梨坦作為油相的表面活性劑,制備海藻酸鈉微球。結果顯示,當體積比為3∶1和2∶2時,混合油相黏度大,干燥后微球粘連嚴重,微球形態(tài)不佳,包封率分別為(38.94±8.46)%(n=3)和(37.25±8.14)%(n=3)。因此,選擇體積比為1∶3,此時包封率為(45.17±6.12)%(n=3)。

      2.4.3 交聯劑加入體積。以2%海藻酸鈉溶液作為內水相,植物油與二氯甲烷體積比為1∶3的混合油為油相,令水相與加入交聯劑的體積比為2∶1、1∶1、1∶2,按“2.4.1”項下方法制備海藻酸鈉微球。結果包封率依次為(38.97±4.43)%、(45.17±6.12)%和(43.86±7.35)%(n=3),表明當體積比超過1∶1后,再提高交聯劑的量,微球的包封率基本不再變化,粒徑減小不明顯。因此,選擇水相與交聯劑體積比為1∶1。

      2.4.4 透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比。分別配制透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比為1∶4、1∶2、1∶1的溶液為水相,水相與交聯劑的體積比為1∶1,按“2.4.3”項下方法制備海藻酸鈉微球。結果包封率依次為(48.93±8.69)%、(45.17±6.12)%和(31.96±7.54)%(n=3),載藥量依次為(6.99±1.64)%、(11.29±2.16)%和(12.78±2.71)%(n=3),表明透明質酸鈉與海藻酸鈉比例增加,微球載藥量增加,包封率明顯降低。因此,綜合考慮,選擇質量比為1∶2。

      2.5 工藝因素的考察

      經過多次預試驗,確定了對包封率影響較大的幾個工藝因素,考察結果如下。

      2.5.1 分散時間。以2%海藻酸鈉溶液為水相,透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比為1∶2,含2%油酸山梨坦、混合油相比例為1∶3的混合油為油相,水相與交聯劑體積比為1∶1,以300 r/min轉速分散5、15、30 min,加入交聯劑90 min后制備海藻酸鈉微球,制備方法同“2.2”項。結果包封率分別為(37.4±4.37)%、(45.17±6.12)%和(46.26±8.49)%(n=3),表明隨著時間增加,包封率增加,但時間過長會使微球粘連。因此,選擇分散時間為15 min。

      2.5.2 分散轉速。固定分散時間為15 min,分別在100、300、500 r/min下按“2.4.1”項下方法制備海藻酸鈉微球。結果包封率分別為(56.48±8.96)%、(45.17±6.12)%和(34.32±7.34)%(n=3),表明隨轉速增加,包封率下降,但轉速過低微球粒徑大,分布不均。因此,選擇分散轉速為300 r/min。

      2.5.3 交聯時間。固定分散轉速為300 r/min,交聯時間分別為30、90、150 min下按“2.2”項下方法制備海藻酸鈉微球。結果包封率分別為(31.76±3.62)%、(45.17±6.12)%和(47.03±5.73)%(n=3),表明隨著交聯時間延長,包封率增加,但增加到90 min后,再延長交聯時間,包封率提高不明顯,且微球有粘連現象。因此,交聯時間選擇90 min。

      2.6 包載透明質酸鈉的海藻酸鈉微球處方的優(yōu)化

      根據單因素考察結果,選取透明質酸鈉質量分數、透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比、交聯時間和分散轉速為因素進行正交試驗,以包封率為指標對處方進行優(yōu)化,篩選出包封率高、形態(tài)好的微球最優(yōu)處方。影響因素及因素水平取值見表1,正交試驗設計及試驗結果見表2,極差分析見表3,方差分析見表4。

      表1 影響因素及因素水平取值Tab 1 Factors and levels

      表2 正交試驗設計及試驗結果Tab 2 Orthogonal design and results

      表3 正交試驗結果極差分析Tab 3 Results of analysis of range

      表4 正交試驗結果方差分析Tab 4 Results of analysis of variance

      由表2可見,各因素對指標的影響程度順序為C>A>B>D,最佳水平為A2B1C2D1,即海藻酸鈉質量分數為2%,透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比為1∶3,交聯時間為90 min,分散轉速為200 r/min。

      由表3可見,交聯時間對微球的包封率有顯著影響,而海藻酸鈉質量分數、透明質酸鈉與海藻酸鈉質量比及分散轉速對包封率影響不明顯。

      2.7 驗證試驗

      按最優(yōu)處方制備3批微球,其形態(tài)圓整、粒徑分布均勻,測得包封率為(58.92±3.06)%,載藥量為(10.96±1.12)%;將微球分散于水中,滴入激光粒度測定儀,測得微球平均粒徑為(107.8±5.51)μm。

      3 討論

      氯化鈣的水溶液相當于水相,其在油相中也以液滴形式被分散,因此與海藻酸鈉液滴接觸幾率很小,且液滴各點交聯不均,交聯效果不佳。用氯化鈣飽和的二氯甲烷可與油互溶,加入后,可以在海藻酸鈉液滴周圍形成均勻的交聯劑濃度,即液滴各點交聯均勻。故本文選擇氯化鈣溶液飽和的二氯甲烷為交聯劑。

      一次性加入交聯劑,只是在最初形成交聯劑的濃度梯度,隨著交聯劑的消耗,濃度梯度降低,交聯效果會變差,內層交聯不完全,所以包封率較低,粒徑稍大,但形態(tài)較好。分次加入交聯劑可以在不同時間點始終保持著濃度梯度,交聯效果好,交聯程度深,包封率高,粒徑小,形態(tài)好。

      分散轉速顯著影響微球粒徑及形態(tài)。當分散轉速為100 r/min時,提供的外力不足以降低水相的粒徑,使得微球大小不一;但由于轉速低,水相中藥物滲漏量小,包封率較高。當轉速為500 r/min時,粒徑雖小,但包封率降低,體系黏度增加,出現粘連現象。

      因本文中劑型為中間劑型,最終劑型為乳膏劑,故對粒徑考慮不多,僅是在驗證試驗時測量了粒徑,試驗時也只是在顯微鏡下觀察了微球的形態(tài),未照電鏡。

      [1]陳建英,汪敏,劉杰,等.注射用交聯透明質酸鈉凝膠的制備及其體外抗酶降解性的研究[J].中國生化藥物雜志,2008,29(4):262.

      [2]南艷微,鄭曉玲.多層海藻酸-殼聚糖聚電解質膜微球的制備與體外釋放特性研究[J].中國藥房,2013,24(17):1581.

      [3]凌沛學,賀艷麗,白若琬,等.玻璃酸鈉結構及理化性質的研究進展[J].中國生化藥物雜志,2000,21(3):152.

      [4]吳鋼,劉斐,張傳蕓,等.透明質酸鈉傷口愈合水凝膠促進體表膿腫切開引流術后殘腔愈合的研究[J].中國修復重建外科雜志,2008,22(9):1082.

      [5]賴曉文,何曉升,鐘曉春,等.不同時期增生性瘢痕組織內透明質酸含量與含水量的相關性[J].中國組織工程研究與臨床康復,2008,12(2):323.

      [6]劉彤.透明質酸及其在化妝品中的應用[J].廣州化工,2009,37(8):71.

      [7]Li R,Zhang X,Shi H.Effect of manufacturing parameters on the release profiles of casein-loaded alginate microspheres prepared by emulsification/internal gelation[J].J Control Release,2011,152(Suppl 1):e154.

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