• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      125I粒子持續(xù)低劑量率照射和60Co γ射線高劑量率照射對H1299細胞生物學效應的比較研究

      2015-11-01 06:24:02趙真真王忠敏茅愛武劉芬菊
      介入放射學雜志 2015年8期
      關(guān)鍵詞:電離輻射劑量率射線

      趙真真, 王忠敏, 陸 健, 茅愛武, 劉芬菊

      目前美國癌癥統(tǒng)計學數(shù)據(jù)表明,肺癌發(fā)病率位居惡性腫瘤第2位、死亡率居惡性腫瘤之首[1],其中非小細胞肺癌(NSCLC)占所有肺癌的 80%~85%[2]。除放射治療、化學治療外,手術(shù)治療仍是早期NSCLC患者治愈的主要手段,但相當一部分NSCLC患者確診時病情已至中晚期,喪失了手術(shù)根治切除機會,5年生存率約為15%[3]。對這部分NSCLC患者,放射治療發(fā)揮著重要作用。本研究采用125I粒子持續(xù)低劑量率(CLDR)內(nèi)照射和60Co γ射線高劑量率(HDR)外照射方式照射NSCLC細胞株,探討照射后細胞生物學效應之間的差異。

      1 材料與方法

      1.1 細胞培養(yǎng)和細胞照射

      NSCLC細胞株H1299由蘇州大學醫(yī)學部放射與防護學院放射生物學實驗室惠贈,在含有10%胎牛血清(FBS)、100 U/ml青霉素、100 mg/ml鏈霉素的DMEM高糖完全培養(yǎng)基中培養(yǎng),在37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中孵育。125I粒子組BT-125-1型125I粒子購于上海欣科醫(yī)藥有限公司,采用室內(nèi)125I粒子照射模型,CLDR照射初始劑量率為18.32 cGy/h,照射期間125I粒子模型始終置于細胞培養(yǎng)箱中;60Co γ射線組采用蘇州大學輻照中心鈷源60Co γ射線,HDR照射初始劑量率為0.5 Gy/min;空白對照組實驗條件與照射組相同。所有實驗均在蘇州大學醫(yī)學部放射醫(yī)學與防護重點實驗室完成,并在細胞指數(shù)生長期進行;實驗組以不同劑量125I粒子和60Co γ射線分別作CLDR照射和HDR照射,對照組照射劑量為0 Gy。

      1.2 克隆形成實驗

      取指數(shù)生長期H1299細胞,經(jīng)胰酶消化后以不同細胞數(shù)接種于35 mm培養(yǎng)皿中。接種24 h后分別以 0、2、4、6、8 Gy 劑量行125I粒子 CLDR 照射和60Co γ射線HDR照射,照射后繼續(xù)置于培養(yǎng)箱中孵育10~14 d。然后經(jīng)甲醇固定、結(jié)晶紫染色,計算克隆數(shù)。

      1.3 流式細胞術(shù)檢測細胞周期

      取指數(shù)生長期 H1299 細胞,分別以 0、2、4、6、8 Gy劑量行125I粒子 CLDR照射和60Co γ射線HDR照射。照射后將細胞繼續(xù)置于細胞培養(yǎng)箱中孵育 24 h,經(jīng)胰酶消化、離心、冰磷酸緩沖液(PBS)清洗,70%乙醇4℃固定過夜,再次離心、PBS清洗,加10 mg/ml RNA 酶、1 500 μg/ml碘化丙啶(PI)300 U室溫避光染色15~30 min后,采用流式細胞術(shù)檢測照射后細胞周期分布情況。

      1.4 流式細胞術(shù)檢測細胞凋亡

      H1299 細胞接種 24 h 后,分別以 0、2、4、6、8 Gy劑量行125I粒子CLDR照射和60Co γ射線HDR照射。照射后48 h按照膜聯(lián)蛋白(annexin)Ⅴ-異硫氰酸熒光素(FITC)/PI雙染凋亡試劑盒(南京鉑優(yōu)生物技術(shù)有限公司)說明書,依次加入500 μl緩沖液重懸細胞、5 μl annexinⅤ-FITC、5 μl PI室溫避光染色15~30 min,然后用流式細胞術(shù)檢測照射后細胞凋亡率變化。細胞受到電離輻射損傷后,一旦DNA損傷修復失敗或不可逆損傷積累到一定程度,將誘導細胞凋亡[4]。

      1.5 Western blot檢測 Bax、Bcl-2蛋白表達

      取指數(shù)生長期H1299細胞,分別以0、4、8 Gy劑量行125I粒子CLDR照射和60Co γ射線HDR照射。照射后24 h胰酶消化、離心、冰PBS清洗,蛋白裂解液抽提總蛋白,二辛可酸(BCA)法測定蛋白濃度。制備終體積20 μl含50 μg蛋白樣品,經(jīng)十二烷基硫酸鈉(SDS)-聚丙烯酰胺凝膠(PAGE)電泳電轉(zhuǎn)至聚偏氟乙烯(PVDF)膜(美國Bio-Rad Laboratories公司),5%脫脂牛奶室溫封閉1 h,4℃孵育一抗:β-肌動蛋白(actin)、Bax、Bcl-2(武漢三鷹生物技術(shù)有限公司)過夜。用TBST洗膜,室溫孵育辣根過氧化物酶(HRP)-山羊抗兔 IgG(H+L)、HRP-山羊抗大鼠IgG(H+L)二抗(中國碧云天生物技術(shù)有限公司)1 h,再次洗膜,等比例涂A、B發(fā)光液,最后用增強化學發(fā)光(ECL)技術(shù)檢測蛋白分子條帶。

      1.6 統(tǒng)計學分析

      2 結(jié)果

      2.1 克隆細胞存活分數(shù)

      如圖1所示,實驗組兩種電離輻射照射后H1299細胞克隆存活分數(shù)均較對照組明顯降低(P<0.05),4、6、8 Gy照射時125I粒子組 H1299 細胞克隆存活分數(shù)較60Co γ 射線組降低更顯著(P<0.05),但兩者差異在照射劑量為2 Gy時并不明顯。

      圖1 兩種電離輻射照射后H1299細胞克隆存活分數(shù)

      2.2 細胞周期分析

      如圖2所示,與對照組相比,實驗組兩種電離輻射以4、6、8 Gy照射時均使H1299細胞發(fā)生較明顯的G2/M期阻滯,但此差異在2 Gy時并不顯著。125I粒子組比60Co γ射線組G2/M期阻滯效應更顯著(P<0.05),其中 4 Gy照射時125I粒子組 H1299細胞 G2/M 期百分比為(21.77±0.31)%,而60Co γ 射線組僅為(18.85±0.99)%。

      圖2 兩種電離輻射照射后H1299細胞周期改變

      2.3 細胞凋亡分析

      如圖3所示,與對照組相比,125I粒子組和60Co γ射線組在4、6、8 Gy照射時均使H1299細胞凋亡率明顯升高(P<0.05),但2 Gy照射時細胞凋亡率差異不明顯;相同照射劑量下,125I粒子組H1299細胞凋亡率較60Co γ 射線組更明顯(P<0.05)。 4 Gy照射時125I粒子組和60Co γ射線組H1299細胞凋亡率分別為(13.79±0.50)%和(8.79±0.22)%(P<0.05)。

      圖3 兩種電離輻射照射后H1299細胞凋亡率差異

      2.4 Bcl-2/Bax蛋白比失衡

      如圖4所示,與對照組相比,125I粒子組和60Co γ射線組在4、8 Gy照射時均使H1299細胞中Bax蛋白表達明顯上調(diào),同時Bcl-2蛋白表達明顯下調(diào),這一效應在125I粒子組更明顯。

      圖4 兩種電離輻射照射后Bax、Bcl-2表達水平

      3 討論

      在我國,肺癌發(fā)病率、死亡率均居惡性腫瘤之首。放射治療在中晚期NSCLC綜合治療中占有重要地位。60Co γ射線HDR照射作為傳統(tǒng)外照射治療代表,在多種惡性腫瘤治療中發(fā)揮重要作用,但由于其療效與劑量相關(guān),隨著劑量增加,射線對病灶周圍正常組織的損傷也增加,臨床應用時受到一定限制[5]。近年來,125I粒子CLDR內(nèi)照射治療以操作簡單、定位精準、靶區(qū)內(nèi)劑量高、靶區(qū)外劑量低等優(yōu)點,逐漸應用于局部治療中晚期惡性腫瘤,如胰腺癌、肺癌、結(jié)腸癌等[6-9]。125I粒子 CLDR 內(nèi)照射治療是通過放射性核素125I在腫瘤組織局部釋放出持續(xù)、近距離的射線,最大程度殺傷腫瘤組織,而正常組織損傷很小。有關(guān)125I粒子CLDR內(nèi)照射和60Co γ射線HDR外照射作用于NSCLC細胞系的生物學效應的比較性研究卻鮮見報道,本研究采用兩種照射方式照射NSCLC細胞株,探討照射后細胞生物學效應之差異。

      相關(guān)研究表明,P53缺失的癌細胞對放療和化療較為抵抗,P53野生型癌細胞對放療和化療敏感性較好。Nishizaki等[10]研究表明,137Cs γ 射線照射后細胞凋亡率為H460細胞>A549細胞>H1299細胞;重塑H1299細胞P53功能后,可增強H1299細胞對放療和化療的敏感性,進而使細胞凋亡率增加。本研究采用P53缺失的NSCLC細胞株H1299,結(jié)果提示125I粒子CLDR照射較60Co γ射線HDR照射抑制H1299細胞增殖的效應更顯著,這與Chen等[11]采用 NSCLC 細胞系 A549、小細胞肺癌(SCLC)細胞系 H446、Qu 等[12]采用 NSCLC 細胞系 A549 所作研究結(jié)果的趨勢一致??紤]到125I粒子照射時程較長及后續(xù)細胞狀態(tài)等因素,本研究并未作野生型P53轉(zhuǎn)染及其它NSCLC相關(guān)實驗,但將會在本課題組后續(xù)研究中予以完善。

      眾所周知,細胞DNA受到電離輻射損傷時,其周期關(guān)卡效應被激活并導致細胞周期阻滯,繼而激活DNA損傷修復信號通路或啟動死亡程序,導致細胞發(fā)生不同命運[13-14]。本研究中,125I粒子CLDR照射與60Co γ射線HDR照射相比,導致H1299細胞發(fā)生更明顯的G2/M 期阻滯,這與 Wang等[15]、Liao等[16]以胰腺癌細胞、前列腺癌細胞作為實驗模型的研究結(jié)果趨勢一致。相關(guān)研究表明,同樣電離輻射條件下H1299細胞發(fā)生G2/M期阻滯,而A549細胞發(fā)生G1期阻滯,p53基因缺失的細胞在照射后很少發(fā)生 G1 期阻滯[17]。

      細胞凋亡是電離輻射誘導細胞死亡的一種主要機制。在應對電離輻射導致的DNA損傷時,細胞為了維持基因組穩(wěn)定性,將激活多個信號轉(zhuǎn)導通路,其中包括細胞周期關(guān)卡效應、DNA損傷修復通路,一旦損傷修復失敗或是不可逆損傷累積到一定程度,細胞凋亡將發(fā)生[4]。本研究表明125I粒子CLDR照射比60Co γ射線HDR照射引起更多H1299細胞發(fā)生凋亡。

      以上實驗表明,125I粒子CLDR外照射比60Co γ射線HDR內(nèi)照射抑制NSCLC細胞系增殖的效應更明顯。隨后我們將著重于從蛋白水平探討125I粒子CLDR照射和60Co γ射線HDR照射抗增殖效應背后的潛在分子機制。電離輻射誘導凋亡主要經(jīng)過線粒體依賴的內(nèi)源性凋亡途徑,凋亡進程中涉及一系列凋亡相關(guān)蛋白,如Bax、Bcl-2及半胱氨酸天冬氨酸特異性蛋白酶(caspase)-3 等[18]。 相關(guān)研究表明,在前列腺癌、肺癌細胞中,125I粒子是通過下調(diào)促生長蛋白Bcl-2表達并激活caspase蛋白家族促使細胞凋亡,從而達到抑制腫瘤細胞生長的作用[19]。其中Bcl-2蛋白主要發(fā)揮抑制凋亡、延長細胞存活的作用,腫瘤細胞中過表達Bcl-2蛋白多提示腫瘤細胞對治療不敏感或不理想[20]。另外,Bcl-2蛋白家族中與Bcl-2蛋白作用相反的另一個成員Bax蛋白,也稱為促凋亡蛋白,主要發(fā)揮促進凋亡作用[5]。通常細胞是否發(fā)生凋亡取決于Bcl-2/Bax蛋白比[21]。本實驗中,照射劑量為4、8 Gy時,125I粒子CLDR照射與60Co γ射線HDR照射相比明顯上調(diào)H1299細胞促凋亡蛋白Bax表達,同時下調(diào)促生長蛋白Bcl-2表達;這表明Bcl-2/Bax蛋白比失衡可能加速H1299細胞凋亡發(fā)生,但并不排除其它可能存在的機制。

      綜上所述,125I粒子CLDR內(nèi)照射比60Co γ射線HDR外照射抑制H1299細胞增殖效應更明顯,G2/M期阻滯、Bcl-2/Bax蛋白比失衡、最終誘導凋亡發(fā)生在125I粒子CLDR照射抗腫瘤效應中可能發(fā)揮重要作用。本研究雖僅著重于研究凋亡,但仍為中晚期NSCLC患者臨床治療提供了一些理論依據(jù)。

      [1] Siegel R,Ma J,Zou Z,et al.Cancer statistics,2014[J].CA Cancer J Clin,2014,64:9-29.

      [2] Fidias P,Novello S.Strategies for prolonged therapy in patients with advanced non-small-cell lung cancer[J].J Clin Oncol,2010,28:5116-5123.

      [3] Whitehurst AW,Bodemann BO,Cardenas J,et al.Synthetic lethal screen identification of chemosensitizer loci in cancer cells[J].Nature,2007,446:815-819.

      [4] Sachs RK,Chen AM,Brenner DJ.Review:proximity effects in the production of chromosome aberrations by ionizing radiation[J].Int J Radiat Biol,1997,71:1-19.

      [5] Karakoyun-Celik O,Yalman D,Bolukbasi Y,et al.Postoperative radiotherapy in the management of resected non-small-cell lung carcinoma:10 years’ experience in a single institute[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2010,76:433-439.

      [6] Lehnert S,Reniers B,Verhaegen F.Relative biologic effectiveness in terms of tumor response of125I implants compared with 60Co gamma rays[J].Int J Radiat Oncol Biol Phys,2005,63:224-229.

      [7] 駱紅蕾,喻曉娟,李 進,等.125I粒子植入聯(lián)合化療治療同期放化療后局部復發(fā)的Ⅲ期非小細胞肺癌[J].中華核醫(yī)學與分子影像雜志,2013,33:195-198.

      [8] 陸 健,鄭云峰,張 歡,等.CT導引下植入125I粒子治療19例晚期胰腺癌的療效觀察[J].介入放射學雜志,2010,19:550-553.

      [9] 彭晶晶,譚 勇,譚 艷,等.125I粒子植入治療結(jié)腸直腸癌肝轉(zhuǎn)移[J].介入放射學雜志, 2012, 21: 773-776.

      [10] Nishizaki M,Meyn RE,Levy LB,et al.Synergistic inhibition of human lung cancer cell growth by adenovirus-mediated wild-type p53 gene transfer in combination with docetaxel and radiation therapeutics in vitro and in vivo[J].Clin Cancer Res,2001,7:2887-2897.

      [11] Chen H,Bao Y,Yu L,et al.Comparison of cellular damage response to low-dose-rate125I seed irradiation and high-dose-rate gamma irradiation in human lung cancer cells[J].Brachytherapy,2012,11:149-156.

      [12] Qu A,Wang H,Li J,et al.Biological effects of125I seeds radiation on A549 lung cancer cells:G2/M arrest and enhanced cell death[J].Cancer Invest,2014,32:209-217.

      [13] Iliakis G,Wang Y,Guan J,et al.DNA damage checkpoint control in cells exposed to ionizing radiation[J].Oncogene,2003,22:5834-5847.

      [14] Kastan MB,Bartek J.Cell-cycle checkpoints and cancer[J].Nature,2004,432:316-323.

      [15] Wang J,Wang J,Liao A,et al.The direct biologic effects of radioactive125I seeds on pancreatic cancer cells PANC-1,at continuous low-dose rates[J].Cancer Biother Radiopharm,2009,24:409-416.

      [16] Liao A,Wang J,Wang J,et al.Relative biological effectiveness and cell-killing efficacy of continuous low-dose-rate125I seeds on prostate carcinoma cells in vitro[J].Integr Cancer Ther,2010,9:59-65.

      [17] Geyer RK,Nagasawa H,Little JB,et al.Role and regulation of p53 during an ultraviolet radiation-induced G1 cell cycle arrest[J].Cell Growth Differ,2000,11:149-156.

      [18] Martinou JC,Youle RJ.Mitochondria in apoptosis:Bcl-2 family members and mitochondrial dynamics[J].Dev Cell,2011,21:92-101.

      [19] Ma JX,Jin ZD,Si PR,et al.Continuous and low-energy125I seed irradiation changes DNA methyltransferases expression patterns and inhibits pancreatic cancer tumor growth[J].J Exp Clin Cancer Res,2011,30:35.

      [20] Groeger AM,Esposito V,De Luca A,et al.Prognostic value of immunohistochemical expression of p53,bax,Bcl-2 and Bcl-xL in resected non-small-cell lung cancers[J].Histopathology,2004,44:54-63.

      [21] Walensky LD.BCL-2 in the crosshairs:tipping the balance of Life and death[J].Cell Death Differ,2006,13:1339-1350.

      猜你喜歡
      電離輻射劑量率射線
      一個控制超強電離輻射抗性開關(guān)基因的研究進展
      “直線、射線、線段”檢測題
      甲狀腺乳頭狀癌患者術(shù)后首次131Ⅰ治療后輻射劑量率的影響因素及出院時間的探討
      『直線、射線、線段』檢測題
      赤石脂X-射線衍射指紋圖譜
      中成藥(2017年3期)2017-05-17 06:09:16
      X線照射劑量率對A549肺癌細胞周期的影響
      癌癥進展(2016年10期)2016-03-20 13:15:43
      Akt聯(lián)合電離輻射對人乳腺癌MCF-7細胞凋亡、自噬和增殖的影響
      ITER極向場線圈PF4維修區(qū)域停堆劑量率分析
      電離輻射促進食管鱗癌細胞上皮間質(zhì)轉(zhuǎn)化及遷移
      如何有效調(diào)整ELEKTA PRECISE加速器的劑量率
      荔波县| 前郭尔| 绥芬河市| 衡阳市| 永德县| 彭山县| 金平| 平昌县| 白玉县| 察哈| 揭阳市| 长泰县| 岱山县| 富裕县| 栾城县| 漳平市| 郯城县| 临颍县| 通化市| 广河县| 衡南县| 上虞市| 安平县| 防城港市| 松溪县| 铁岭市| 鹤山市| 临夏市| 武川县| 兖州市| 夏河县| 黄冈市| 开阳县| 清水县| 鄯善县| 同德县| 满洲里市| 凤台县| 兴宁市| 舞阳县| 璧山县|