陳佳等

摘 要 基于G-四鏈體/血紅素 DNA酶的高催化活性以及λ核酸外切酶（λexo）的輔助放大功能，以17個堿基的DNA片段作為模型分析物，構建了一種快速、靈敏、特異性好的新型Luminol-H2O2-G-四鏈體/血紅素 DNA酶化學發(fā)光傳感體系。考察了λexo用量、Luminol濃度、H2O2濃度、溶液pH值對體系化學發(fā)光強度的影響。在最佳實驗條件下，即：pH=9.0，10 units λexo， 1.0×103 mol/L Luminol，3.0 × 102 mol/L H2O2，測得DNA在2.0×1012～8.0×109 mol/L的濃度范圍內(nèi)與Luminol的相對化學發(fā)光強度之間呈現(xiàn)良好的線性關系，檢出限（3σ）為0.7×1013 mol/L。本方法可以區(qū)分不同錯配的核酸序列，并可用于復雜生物樣品的分析。

關鍵詞 λ核酸外切酶；G-四鏈體/血紅素DNA酶；化學發(fā)光；DNA

1 引 言

DNA是生物體遺傳信息的載體[1]，構建快速、靈敏、高選擇性的生物分析新方法用于低豐度的DNA序列的檢測在臨床診斷、基因篩選、食品和環(huán)境監(jiān)測、國土安全等方面起著至關重要的作用[2，3]。近年來，信號放大已經(jīng)成為提高DNA檢測靈敏度的重要手段，如采用納米材料作為信號放大的標記物、采用聚合酶鏈反應（PCR）或者滾環(huán)擴增（RCA）等核酸擴增技術等。雖然這些方法大大提高了檢測的靈敏度，但是也存在操作繁瑣、費時、價格昂貴、易出現(xiàn)假陽性信號等缺陷[4，5]。使用限制性內(nèi)切酶進行信號放大的方法，較以往的信號放大方法更為簡單、快速，但是由于限制性內(nèi)切酶只能針對特定的DNA序列，在實際應用中存在一定的局限性[6，7]。因此，發(fā)展快速、靈敏的DNA測定新方法具有重要的理論和實際意義[8]。

λ核酸外切酶（Lambda exonuclease，λexo）是一種高持續(xù)性核酸外切酶，能夠催化雙鏈DNA分子自5′磷酸末端→3′方向逐步水解，并釋放出5′-單核苷酸，進而將雙鏈DNA變成單鏈DNA[9，10]。λexo在核酸重組、復制、分型、基因修復以及分子克隆等方面起著至關重要的作用，已成為研究基因組成、功能及表達的重要工具之一。此外，許多研究者將λexo的獨特性質應用于核酸探針的信號放大技術，以實現(xiàn)核酸、蛋白質等生物分子的超靈敏檢測[11～14]。但是這些方法大多需要對核酸探針進行熒光標記，過程復雜且成本較高。

G-四鏈體/血紅素 DNA酶（G-Quadruplexes/hemin DNAzyme）是一種具有催化性能的人工模擬酶，由富含鳥嘌呤堿基的核酸分子與血紅素結合，形成穩(wěn)定的G-四鏈體結構，表現(xiàn)出類似于辣根過氧化物酶的活性，能夠催化H2O2氧化2，2′-聯(lián)氮雙（3-乙基苯并噻唑啉-6-磺酸）二銨鹽（ABTS）產(chǎn)生顏色變化或者催化H2O2氧化魯米諾（Luminol）產(chǎn)生化學發(fā)光[15～17]，在生化分析領域已經(jīng)引起研究者的廣泛關注[18]。

化學發(fā)光（Chemiluminescence， CL）分析由于不需要激發(fā)光源，避免了背景光和雜散光的干擾，大大提高了信噪比，具有靈敏度高、線性范圍寬、分析速度快、儀器設備簡單等優(yōu)勢，目前已廣泛應用于免疫分析、臨床檢驗、環(huán)境檢測、物質分析等領域[19～22]。本研究采用3條核酸鏈構建DNA夾心結構，使用λexo進行目標DNA的輔助放大，建立了新型化學發(fā)光傳感器，成功實現(xiàn)了DNA檢測。本方法具有操作簡單、靈敏度高、特異性好等優(yōu)勢，可用于實際樣品分析。

2 實驗部分

2.1 儀器與試劑

LS-55型發(fā)光光度計（美國Perkin-Elmer公司）；PHSJ-4A型pH計（上海精密科學儀器有限公司）。

所有DNA片段均由上海生工生物有限公司提供（序列見表1）。Luminol、H2O2（國藥上海試劑公司）；血紅素（Hemin）、N-2-羥乙基哌嗪-N′-2-乙磺酸（HEPES）購于美國Sigma公司；λ核酸外切酶（Lambda exonuclease，λexo）、10×λexo反應緩沖液（0.67 mol/L Glycine-KOH（pH 9.4，25℃），0.02 mol/L MgCl2，500 μg/mL BSA）購于美國New England Biolabs公司。其它試劑均為國產(chǎn)分析純，實驗用水為18.2 MΩ·cm的超純水。2.5 × 102 mol/L HEPES-NH4OH緩沖液（pH=7.4/8.0/8.5/9.0/9.5/10.0），含0.05%（w/V）Triton X-100，1%（V/V）DMSO，2.0×102 mol/L KCl和0.2 mol/L NaCl。

2.2 實驗方法

2.2.1 DNA的檢測 將濃度均為1.0×105 mol/L的Auxiliary DNA、Phosphate-DNA、Hairpin DNA溶液以及不同濃度的Target DNA在95℃下加熱10 min，再自然冷卻到室溫。

取出20 μL不同濃度的Target DNA與10 μL Auxiliary DNA、10 μL Phosphate-DNA，在37℃雜交2 h；雜交完成后，加入5 μL λexo （2 U/μL）及5 μL 10 × λexo反應緩沖液，在37℃下溫育30 min。隨后，將上述混合溶液加熱到75℃，保持10 min，再冷卻至37℃，孵育1 h；加入10 μL Hairpin DNA，在37℃孵育30 min，再向上述混合溶液中加入20 μL Hemin（終濃度為2.0×107 mol/L）及820 μL HEPES-NH4OH緩沖溶液，充分混勻后，在室溫下孵育1 h，保證Hemin與打開的Hhairpin DNA充分反應，形成穩(wěn)定的G-Quadruplexes/hemin DNAzyme結構。最后，依次將50 μL Luminol（終濃度為1.0×103 mol/L）、50 μL H2O2（終濃度為3.0×102 mol/L）加入到上述溶液中，在室溫下立即測量樣品的CL光譜。

2.2.2 化學發(fā)光測定

CL測量均使用光程為1 cm的比色池。電壓設置為800 V，狹縫寬度設為15 nm，掃描速度為1200 nm/min，測量時關掉LS-55型發(fā)光光度計的氙燈，測定樣品溶液在425 nm處的相對化學發(fā)光強度ΔI（ΔI=I-I0， I0為無Target DNA存在時Luminol的化學發(fā)光強度， I為不同濃度的Target DNA存在時Luminol的化學發(fā)光強度）。每個樣品均平行測定3次。

3 結果與討論

3.1 實驗原理

實驗原理如圖1所示，本體系包括4種DNA：Target DNA、Phosphate-DNA、Auxiliary DNA、Hairpin DNA。首先，Phosphate-DNA與AuxiliaryDNA及Target DNA進行雜交，形成DNA的復合結構。隨后向溶液中加入λexo，由于λexo可作用于5′磷酸化的雙鏈DNA分子，并沿5′-3′方向漸進性催化去除5′單核苷酸，破壞雙鏈DNA結構，同時釋放出Auxiliary DNA及Target DNA。釋放出的Target DNA可以繼續(xù)進入下一輪循環(huán)，不斷產(chǎn)生大量Auxiliary DNA，而Auxiliary DNA可以將Hairpin DNA的莖環(huán)結構打開，打開的Hairpin DNA在血紅素存在的條件下，可以形成穩(wěn)定的G-Quadruplexes/HeminDNAzyme結構，表現(xiàn)出類似于過氧化物酶的活性，能夠催化H2O2氧化Luminol產(chǎn)生化學發(fā)光，并且Luminol產(chǎn)生的相對化學發(fā)光強度與目標DNA的濃度在一定范圍內(nèi)成比例，從而可以實現(xiàn)Target DNA的定量分析檢測。

3.2 可行性研究

不同條件下的化學發(fā)光光譜（圖2） 表明，單獨的Hemin化學發(fā)光強度十分微弱（曲線a）；不加入Target DNA（曲線b）， 或者不加入λexo（曲線c）的情況下，體系的化學發(fā)光強度也較弱； 圖2 不同體系的化學發(fā)光光譜

Fig.2 CL spectra of hemin （a）， phosphate-DNA/auxiliary DNA/hairpin DNA/λexo/hemin （b）， phosphate-DNA/auxiliary DNA/hairpin DNA/target DNA/hemin （c） and phosphate-DNA/auxiliary DNA/hairpin DNA/target DNA/λexo/hemin （d and e）. Experimental conditions： 1.0×107 mol/L phosphate-DNA， 1.0×107 mol/L auxiliary DNA， 1.0×107 mol/L hairpin DNA， 5.0×1012 mol/L target DNA（curve d） and 8.0×109 mol/L target DNA（curve c and e）， 2.0×107 mol/L hemin， 10 units lambda exonuclease （λexo）， 1.0×103 mol/L Luminol， 3.0×102 mol/L H2O2加入λexo及Target DNA后，體系的化學發(fā)光強度增加，且Target DNA濃度越高，發(fā)光強度越高（曲線d和e）?；瘜W發(fā)光強度的增加是由于λexo催化水解磷酸化5′末端，釋放Target DNA，并不斷進入下一循環(huán)，產(chǎn)生大量的Auxiliary DNA，可以與Hairpin DNA形成大量的G-Quadruplexes/hemin DNAzyme結構。上述結果表明，本方法可用于Target DNA檢測。

3.3 測定條件的優(yōu)化

3.3.1 λexo用量對體系化學發(fā)光強度的影響 由于λexo用量直接影響目標DNA的循環(huán)效果，進而影響檢測體系的化學發(fā)光信號的強弱，因此實驗首先考察了λexo用量對體系化學發(fā)光強度的影響（圖3），結果表明，體系的化學發(fā)光強度隨著λexo用量的增加而逐漸增強，并且當λexo的用量達到10 units 時，體系的化學發(fā)光強度趨于穩(wěn)定。因此，實驗將λexo的最佳用量定為10 units。

3.3.2 pH值對體系化學發(fā)光強度的影響 由于體系的化學發(fā)光強度與緩沖介質的pH值之間存在一定關系[6，16]，因此考察了不同pH條件對體系化學發(fā)光強度的影響。實驗結果如圖4所示，所用HEPES-NH4OH緩沖溶液使體系pH值從7.4逐漸增加到9.0時，體系的化學發(fā)光強度逐漸增強，且在pH=9.0時達到最大值；之后繼續(xù)增大pH值，體系的化學發(fā)光強度逐漸減弱。最終選擇pH=9.0的HEPES-NH4OH緩沖溶液作為最佳緩沖條件。

3.3.3 Luminol濃度對體系發(fā)光強度的影響 作為化學發(fā)光的底物，Luminol的濃度強烈影響體系的化學發(fā)光強度。本研究考察了不同濃度的Luminol對體系化學發(fā)光強度的影響，實驗結果如圖5所示。在0.4～1.0 mmol/L的濃度范圍內(nèi)，隨著Luminol濃度的增加，體系的化學發(fā)光強度逐漸增強，且在Luminol濃度為1.0×103 mol/L時，發(fā)光強度達到最大值；之后繼續(xù)增大Luminol的濃度，體系的化學發(fā)光強度反而呈現(xiàn)下降趨勢。因此選擇Luminol的最佳濃度為1.0 mmol/L。

3.3.4 H2O2濃度對體系化學發(fā)光強度的影響 考察了化學發(fā)光的氧化試劑H2O2的濃度對體系化學發(fā)光強度的影響示。從圖6可見，H2O2濃度在5.0～30 mmol/L范圍內(nèi)，隨著H2O2濃度增加，體系的化學發(fā)光強度逐漸增強；當H2O2濃度在30～50 mmol/L時，體系的化學發(fā)光強度逐漸減弱。為了獲得較大的化學發(fā)光強度，實驗選擇H2O2的最佳濃度為30 mmol/L。

3.4 靈敏度的考察

在優(yōu)化的實驗條件下，測定目標 DNA濃度與體系的化學發(fā)光強度之間的關系（圖7和圖8）。從圖7可見， Luminol的化學發(fā)光強度隨著目標DNA濃度的增加而不斷增強，并且Luminol的相對化學發(fā)光強度ΔI與目標DNA在2.0×1012～8.0×109 mol/L濃度范圍內(nèi)呈現(xiàn)良好的線性關系（圖8），檢出限為0.7×1013 mol/L（3σ）。與文獻報道的方法比較（表2）可見，本方法的靈敏度優(yōu)于文獻報道的光學檢測方法， 或與之相當。

3.5 特異性的考察

為考察所建立方法的特異性，選擇濃度均為8.0×108 mol/L的隨機序列DNA片段、單堿基錯配的DNA片段， 以及三堿基錯配的DNA片段作為對照樣品，與8.0×109 mol/L目標DNA進行分析比較。從圖9可見，僅有完全互補的目標DNA存在時，才能使體系的化學發(fā)光強度顯著增加；相比之下，其它幾種DNA的化學發(fā)光強度很低。結果表明，構建的化學發(fā)光傳感器具有很好的特異性，可以區(qū)分不同錯配的DNA序列。

3.6 實際樣品的測定

為了考察所建立的方法檢測復雜生物樣品的可行性，進行了人血清樣品中的標準添加實驗。人血清樣品稀釋100倍進行加標分析。從圖10可見，目標DNA在人血清樣品中的化學發(fā)光強度值與其在緩沖溶液中的化學發(fā)光強度值基本一致，表明通過樣品稀釋可以有效降低復雜樣品的基質的影響。結果表明，本方法在復雜生物樣品的分析方面具有潛在的應用價值。

4 結 論

本研究發(fā)展了一種基于λexo輔助放大和G-Quadruplexes/hemin DNAzyme催化放大的簡單、快速的傳感新方法，成功實現(xiàn)了目標DNA在緩沖溶液和復雜生物樣品中的高靈敏檢測。本方法具有獨特的優(yōu)勢：與傳統(tǒng)的光學分析方法相比，本方法不需要標記任何發(fā)光基團，分析成本低；整個檢測過程都是在均相溶液中進行，無需經(jīng)過洗滌、分離等繁瑣的操作步驟，簡單方便；本方法具有很高的靈敏度和特異性；本方法對目標DNA的檢測具有良好的通用性，通過改變Phosphate-DNA的堿基序列很容易應用于其它目標DNA的檢測，具有潛在的應用價值。

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