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      Ca2+在順鉑誘導人卵巢癌SKOV3細胞自噬反應中的作用

      2016-06-13 06:57:43曾林川鄧慧敏竇茗瀚吉林醫(yī)藥學院公共衛(wèi)生學院吉林吉林303吉林醫(yī)藥學院醫(yī)學科研實驗室吉林吉林303
      中國癌癥雜志 2016年4期
      關鍵詞:內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激自噬順鉑

      曾林川,鄧慧敏,陳 君,竇茗瀚,徐 冶.吉林醫(yī)藥學院公共衛(wèi)生學院,吉林 吉林 303;.吉林醫(yī)藥學院醫(yī)學科研實驗室,吉林 吉林 303

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      Ca2+在順鉑誘導人卵巢癌SKOV3細胞自噬反應中的作用

      曾林川1,鄧慧敏2,陳 君2,竇茗瀚2,徐 冶2
      1.吉林醫(yī)藥學院公共衛(wèi)生學院,吉林 吉林 132013;2.吉林醫(yī)藥學院醫(yī)學科研實驗室,吉林 吉林 132013

      [摘要]背景與目的:Ca2+在維持細胞生物活性方面扮演著很重要的角色,其在細胞內(nèi)的儲存、釋放和攝取主要受內(nèi)質(zhì)網(wǎng)調(diào)節(jié),細胞內(nèi)Ca2+濃度的穩(wěn)態(tài)是維持細胞生物能量代謝、蛋白質(zhì)折疊和分泌的基礎條件。本研究探討Ca2+在順鉑誘導SKOV3細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激-自噬反應中的作用機制。方法:取人卵巢癌SKOV3細胞系為研究對象,按以下步驟分組:① 探討順鉑誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激與自噬反應,用6 μg/mL的順鉑處理SKOV3細胞0、6、12和24 h;② 了解順鉑和毒胡蘿卜內(nèi)酯(thapsigargin,TG)誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激釋放的Ca2+與自噬的關系,分別用TG和順鉑處理SKOV3細胞0、9和12 h;③ 探究Ca2+對自噬的作用機制,分成對照組、順鉑組、TG組、BAPTA-AM組、順鉑聯(lián)合BAPTA-AM組和TG聯(lián)合BAPTA-AM組。用蛋白[質(zhì)]印跡法(Western blot)檢測內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激相關蛋白GRP78和自噬標志性蛋白LC3蛋白的表達水平;用Fluo-4鈣離子熒光探針檢測細胞質(zhì)中的Ca2+濃度變化;間接免疫熒光染色后,用共聚焦顯微鏡檢測LC3蛋白的表達情況。結(jié)果:SKOV3細胞經(jīng)6 μg/mL順鉑作用6 h時GRP78灰度值(1.393±0.004)與其對照組(0.679±0.011)相比顯著提高(t=113.2,P=0.000),在12 h時LC3灰度值(0.072±0.002)與其對照組(0.038±0.000)相比顯著提高(t=25.5,P=0.000)。間接免疫熒光結(jié)果顯示,順鉑(6 μg/mL)組和TG(3 μmol/L)組隨作用時間的延長,細胞內(nèi)LC3熒光斑點會逐漸增多,并伴隨著細胞質(zhì)Ca2+濃度上升。后經(jīng)鈣離子絡合劑BAPTA-AM干預后,細胞內(nèi)LC3熒光強度進一步增強。Westren blot結(jié)果顯示,順鉑組LC3灰度值(0.039±0.000)小于順鉑聯(lián)合BAPTA-AM組(0.071±0.001),TG組(0.035±0.001)小于TG聯(lián)合BAPTA-AM組(0.065±0.001),差異有統(tǒng)計學意義(P=0.000)。結(jié)論:順鉑誘導SKOV3細胞內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激和自噬的發(fā)生,并伴隨著細胞質(zhì)內(nèi)Ca2+濃度的上升。絡合細胞質(zhì)內(nèi)Ca2+能增強順鉑誘導的自噬反應。

      [關鍵詞]順鉑;Ca2+;內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激;自噬

      Correspondence to:XU YeE-mail:xuye_9707@163.com

      卵巢癌是臨床上常見的婦科惡性腫瘤之一,發(fā)病率高居女性最常見癌癥的第3位,嚴重威脅女性的生命健康。由于卵巢癌早期沒有具體的臨床癥狀,再加上很多女性忽視了定期體檢,造成絕大多數(shù)女性到卵巢癌晚期才被發(fā)現(xiàn)[1-2]。目前,卵巢癌在我國的死亡率高達3.13/10萬[3]。臨床上治療卵巢癌的主要手段是化療,順鉑是臨床上治療癌癥的主要化療藥物之一,它的主要抗癌機制是抑制癌癥細胞的DNA復制過程[4]。已有研究報道,順鉑在誘導卵巢癌細胞凋亡過程中促發(fā)了內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激和自噬,抑制自噬增加了卵巢癌細胞對順鉑的敏感性[5]。

      自噬是細胞吞噬自身蛋白質(zhì)或細胞器并使之包被進入囊泡,最終與溶酶體融合降解其內(nèi)容物的過程,自噬在細胞器的更新、體內(nèi)蛋白質(zhì)的平衡和細胞內(nèi)環(huán)境的穩(wěn)定方面發(fā)揮著主要的作用。同時,自噬也是程序性細胞死亡的一種形式。因此,自噬是細胞內(nèi)的一把雙刃劍,但自噬在細胞內(nèi)的作用以前者為主[6]。最近,越來越多的文獻表明,Ca2+在自噬發(fā)生過程中發(fā)揮重要的作用[7-8]。Ca2+是細胞的重要第二信使之一,在維持細胞代謝、增殖、分化和凋亡過程中發(fā)揮著重要的作用。細胞內(nèi)的Ca2+濃度依賴于內(nèi)質(zhì)網(wǎng)中Ca2+的釋放和細胞外Ca2+的攝入。內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激會誘導細胞內(nèi)Ca2+濃度的增高和自噬的增強[9-10]。本文旨在探討Ca2+在順鉑誘導卵巢癌細胞發(fā)生自噬中的作用。

      1 材料和方法

      1.1實驗材料

      本研究所用的人卵巢癌細胞株SKOV3購自中國科學院,RPMI 1640培養(yǎng)基和胎牛血清由Hyclone公司提供,BAPTA-AM、鈣離子探針Fluo-4和順鉑均購自美國Sigma公司,LC3B抗體、GRP78抗體和β-actin抗體均購自美國Santa Cruz公司,PVDF膜(0.45 μm)購自Millipore公司。其他試劑為進口或國產(chǎn)分析純。

      1.2細胞培養(yǎng)

      人卵巢癌細胞株SKOV3用含10%胎牛血清、青霉素(100 U/mL)和鏈霉素(100 U/mL)的RPMI 1640培養(yǎng)液培養(yǎng),置于37℃、CO2體積分數(shù)為5%、飽和濕度的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每天換液1次,待細胞生長至對數(shù)生長期時,用0.25%胰酶進行消化,按1∶4比例進行傳代,待細胞傳至第3代后進行實驗。實驗分組:① 探討順鉑誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激與自噬的關系,按順鉑給藥時間分成0、6、12和24 h 4組;② 觀察順鉑和毒胡蘿卜內(nèi)酯(thapsigargin,TG)誘導內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激釋放的Ca2+與自噬的關系,分別檢測0、9和12 h 3個時間點;③ 探討Ca2+對自噬的影響,實驗分為對照組、順鉑組、TG組、BAPTA-AM組、順鉑聯(lián)合BAPTA-AM組和TG聯(lián)合BAPTA-AM組。每次實驗重復3次。

      1.3Fluo-4檢測細胞質(zhì)內(nèi)Ca2+

      將SKOV3細胞用不含乙二胺四乙酸的胰蛋白酶消化,收集總細胞。計數(shù)后,按每孔5×104個細胞鋪在24孔板內(nèi),放置在恒溫培養(yǎng)箱中過夜。第2天,細胞長至80%密度,實驗組分為順鉑(6 μg/mL)和TG(3 μmol/L)9、12 h兩組和無藥物作用的陰性對照組,每組設3個對照組。吸出每孔藥物,并加入D-Hanks液洗3次,然后各加入稀釋后的Fluo-4(5 μmol/L)。30 min后用D-Hanks液洗3次,處理完后在激光掃描共聚焦顯微鏡下觀察并取圖分析。

      1.4間接免疫熒光法檢測自噬標志性蛋白LC3

      高壓消毒后無菌蓋玻片置于24孔板中,取細胞密度1×105/mL,每孔500 μL接種過夜,第2天,細胞長至80%密度,實驗組分別用順鉑6 μg /mL處理9、12 h,同時設置未加順鉑的陰性對照組。棄去培養(yǎng)基,加入200 μL固定液(4%多聚甲醛)作用10 min,吸去固定液加0.01 mol/L 的PBS洗滌后,爬片固定后經(jīng)0.1%的PBS-Triton作用5 min,用0.01mol/L的PBS洗滌,非免疫山羊血清封閉30 min,加入預混的一抗4 ℃過夜,用0.01mol/L的PBS洗滌,加入預混的熒光二抗Alexa Fluor 488抗兔的IgG抗體作用30 min,用0.01 mol/L的PBS洗滌,抗熒光淬滅劑封片,用激光共聚焦顯微鏡觀察并取圖分析。

      1.5蛋白[質(zhì)]印跡法(Western blot)檢測

      通過Western blot檢測人卵巢癌SKOV3細胞中內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激和自噬反應中相關蛋白的表達。提取細胞總蛋白,不同的藥物處理后,經(jīng)消化收集到離心管中,175×g離心取上清液轉(zhuǎn)移到1.5 mL離心管中,進一步混勻,4 ℃,900×g再次離心。吸凈上清液,每管加入200~300 μL 的RIPA蛋白裂解液(含1%PMSF),超聲5 s左右打碎基因組后4 ℃放置45 min(以上全程冰上操作)。Bradford法測蛋白濃度,-20 ℃?zhèn)溆谩H〈郎y樣本按30~60 μg上樣,10%十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳常規(guī)電泳、半干轉(zhuǎn)膜法將蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,5%脫脂奶粉封閉、一抗4 ℃過夜,二抗溫育2 h,用0.01 mol/L的PBS洗膜3次,1次15 min,2次5 min,加ECL顯色液進行顯影結(jié)果。數(shù)據(jù)采用天能圖像分析系統(tǒng)以及Quantity One軟件進行分析。

      1.6統(tǒng)計學處理

      2 結(jié)果

      2.1順鉑誘導SKOV3細胞內(nèi)GRP78表達和LC3的活化

      用順鉑6 μg/mL處理SKOV3細胞0、6、12和24 h。Western blot檢測結(jié)果表明,順鉑能夠誘導SKOV3細胞GRP78和LC3高表達,且GRP78表達增強早于LC3,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖1)。

      2.2順鉑誘導SKOV3細胞細胞質(zhì)內(nèi)Ca2+水平的增加和LC3的活化

      根據(jù)上述實驗結(jié)果,用共聚焦顯微鏡觀察細胞質(zhì)中Fluo-4所標記的Ca2+熒光,通過間接免疫熒光法檢測自噬標記蛋白LC3。結(jié)果顯示,TG和順鉑處理9 h后,SKOV3細胞內(nèi)熒光強度增強,表明細胞質(zhì)中的Ca2+水平增加;與此同時,LC3熒光結(jié)果顯示,細胞質(zhì)中出現(xiàn)熒光斑點,說明順鉑和TG在誘導自噬的活化過程中,可能與細胞質(zhì)中Ca2+濃度變化有關(圖2)。2.3BAPTA-AM增強順鉑和TG所誘導LC3的表達免疫熒光結(jié)果顯示,10 μmol/L BAPTA-AM作用于SKOV3細胞后出現(xiàn)LC3熒光小斑點。分別用6 μg/mL順鉑和3 μmol/L TG聯(lián)合鈣離子絡合劑BAPTA-AM時,LC3的綠色熒光要明顯強于各自的單獨作用組(圖3)。此外,采用Western blot對順鉑和TG的單獨作用組及各自聯(lián)合鈣離子絡合劑后的LC3蛋白表達結(jié)果進行驗證,結(jié)果顯示,LC3的蛋白表達情況與LC3免疫熒光結(jié)果一致,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05,圖4)。

      圖1 Western blot檢測順鉑對SKOV3細胞GRP78、LC3蛋白表達的影響Fig. 1  Western blot detection of the expression of GRP78 and LC3 in SKOV3 cells treated with 6 μg/mL cisplatin

      圖2 共聚焦顯微鏡觀察順鉑和TG處理不同時間后SKOV3細胞細胞質(zhì)中Ca2+濃度變化和LC3蛋白的表達Fig. 2  Observation of the distribution of Ca2+and LC3 in the cytoplasm of SKOV3 cells treated with 6 μg/mL cisplatin or 3 μmol/L TG for 0,9,and 12 h by confocal microscopy

      圖3 免疫熒光染色檢測順鉑、TG、BAPTA-AM及聯(lián)合用藥組中LC3蛋白的表達情況Fig. 3  Immunofuorescence staining for the LC3 expressions in SKOV3 cells treated with cisplatin,TG and/or BAPTA-AM

      (×1 200)

      圖4 Western blot檢測順鉑、TG、BAPTA-AM以及聯(lián)合用藥組中LC3蛋白的表達情況Fig. 4  Western blot analysis for the protein expressions of LC3Ⅱ/LC3Ⅰin SKOV3 cells treated with cisplatin,TG and/or BAPTA-AM

      3 討論

      內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激與自噬之間復雜的調(diào)控機制,具有促進細胞存活和死亡的雙向選擇效應[11-12]。通過揭秘內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激與自噬復雜網(wǎng)絡,有可能提高化療藥物的治療效果和克服腫瘤的耐藥性[13-14]。GRP78作為一種內(nèi)質(zhì)網(wǎng)伴侶蛋白,在內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激狀態(tài)下會高表達,被視為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激反應的標志性蛋白[15]。細胞發(fā)生自噬時,參與自噬體形成的LC3蛋白活化,由LC3-Ⅰ轉(zhuǎn)化為脂質(zhì)化的LC3-Ⅱ。LC3-Ⅱ/ LC3-Ⅰ比值的多少在某種程度上反映了細胞的自噬活性[16]。本實驗結(jié)果顯示,順鉑作用SKOV3細胞6 h時,GRP78蛋白就已經(jīng)明顯上調(diào),然而,LC3蛋白的表達發(fā)生12 h左右。這說明順鉑能誘導SKOV3細胞發(fā)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激和自噬反應,且自噬的發(fā)生可能是內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激所介導的下游效應。

      已有研究表明,刺激內(nèi)質(zhì)網(wǎng)內(nèi)的Ca2+進入細胞質(zhì)會促發(fā)自噬反應的活化[17-18],如維生素D3、離子霉素和三磷酸腺苷,TG誘導細胞中的Ca2+水平升高,通過激活Ca2+/鈣調(diào)蛋白依賴激酶β使下游AMPK興奮而誘導自噬。也有研究顯示,Ca2+進入細胞質(zhì)具有抑制自噬活化的作用[19],如Xestospongin B/siRNA阻滯劑,抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)的Ca2+釋放通道1,4,5-三磷酸肌醇受體后,會促發(fā)自噬。L型鈣通道阻滯劑通過抑制鈣蛋白酶活性也能誘導自噬。以上資料表明,鈣信號對自噬活化起著重要的調(diào)節(jié)作用,但是具體的作用機制一直存在爭議。這可能是由于探究的腫瘤細胞種類不同及技術(shù)條件限制,導致很多機制都未被闡明所引起的。隨著對細胞內(nèi)鈣信號檢測手段的完善,我們選擇目前靈敏度較高的Fluo-4作為鈣離子探針,檢測細胞質(zhì)中的Ca2+濃度的變化,運用國際公認的標準Ca2+絡合工具藥BAPTA-AM,探究順鉑誘導SKOV3內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激介導的自噬反應與細胞質(zhì)中的Ca2+濃度波動的關系,并以TG作為內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激模型組。實驗結(jié)果表明,單獨順鉑或TG可以誘導SKOV3發(fā)生自噬,在聯(lián)合鈣離子絡合劑BAPTA-AM后,自噬標志性蛋白LC3的表達明顯上調(diào)。這說明緩沖順鉑和TG所誘導的細胞質(zhì)中的Ca2+上升后,能夠增強其下游的自噬反應。這一過程可能與溶酶體的功能有關,由于絡合細胞質(zhì)中的Ca2+,使得溶酶體對自噬體的降解被抑制,從而抑制了自噬的降解[20]。也有可能是由于絡合了細胞質(zhì)中的Ca2+,使得進入線粒體內(nèi)的Ca2+減少,導致通過線粒體內(nèi)呼吸鏈的電子流減少,三磷酸腺苷生成被抑制,激活下游AMPK途徑誘導的自噬反應等[21]。

      綜上所述,順鉑能誘導SKOV3細胞發(fā)生內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激和自噬反應,并伴隨著細胞質(zhì)中的Ca2+濃度上升,絡合細胞質(zhì)中的Ca2+,增強其下游自噬反應的強度,說明細胞質(zhì)中的Ca2+對自噬的發(fā)生具有抑制效應。這一結(jié)果有助于進一步探索Ca2+對自噬的調(diào)節(jié)機制,為腫瘤的治療及藥物開發(fā)提供新的思路。

      [參 考 文 獻]

      [1] WU X, ZHI X, JI M, et al. Midkine as a potential diagnostic marker in epithelial ovarian cancer for cisplatin/paclitaxel combination clinical therapy[J]. Am J Cancer Res, 2015, 5(2):629-638.

      [2] XIAO K, SUBY N, LI Y, et al. Telodendrimer-based nanocarriers for the treatment of ovarian cancer [J]. Ther Deliv, 2013, 4(10):1279-1292.

      [3] DONG H, ZHANG Y, XI H. The effects of epidural anaesthesia and analgesia on natural killer cell cytotoxicity and cytokine response in patients with epithelial ovarian cancer undergoing radical resection [J]. J Int Med Res, 2012, 40(5):1822-1829.

      [4] VAN HAAFTEN C, BOOT A, CORVER W E, et al. Synergistic effects of the sesquiterpene lactone, EPD, with cisplatin and paclitaxel in ovarian cancer cells [J]. J Exp Clin Cancer Res, 2015, 34(1):3-8.

      [5] HE J, YU J J, XU Q, et al. Downregulation of ATG14 by EGR1-MIR152 sensitizes ovarian cancer cells to cisplatininduced apoptosis by inhibiting cyto-protective autophagy [J]. Autophagy, 2015, 11(2):373-384.

      [6] TAIT S W, ICHIM G, GREEN D R. Die another way-nonapoptotic mechanisms of cell death [J]. J Cell Sci, 2014, 127(Pt 10):2135-2144.

      [7] VICENCIO J M, LAVANDERO S, SZABADKAI G. Ca2+, autophagy and protein degradation:thrown off balance in neurodegenerative disease [J]. Cell Calcium, 2010, 47(2):112-121.

      [8] MEDINA D L, DI PAOLA S, PELUSO I. Lysosomal calcium signalling regulates autophagy through calcineurin and TFEB [J]. Nat Cell Biol, 2015, 17(3):288-299.

      [9] BITTREMIEUX M, BULTYNCK G. p53 and Ca(2+) signaling from the endoplasmic reticulum:partners in anti-cancer therapies [J]. Oncoscience, 2015, 2(3):233-238.

      [10] SHEN S, ZHANG Y, ZHANG R, et al. Ursolic acid induces autophagy in U87MG cells via ROS-dependent endoplasmic reticulum stress [J]. Chem Biol Interact, 2014, 21(8):28-41.

      [11] MALLICK A, MORE P, GHOSH S, et al. Dual drug conjugated nanoparticle for simultaneous targeting of mitochondria and nucleus in cancer cells [J]. ACS Appl Mater Interfaces, 2015, 7(14):7584-7598.

      [12] DECUYPERE J P, BULTYNCK G, PARYS J B. A dual role for Ca(2+) in autophagy regulation[J]. Cell Calcium, 2011, 236(1):163-170.

      [13] HART L S, CUNNINGHAM J T, DATTA T, et al. ER stressmediated autophagy promotes Myc-dependent transformation and tumor growth [J]. J Clin Invest, 2012, 122(12):4621-4634.

      [14] SCHONTHAL A H. Endplasmic reticulum stress and autophagy as targets for cancer therapy [J]. Cancer Lett, 2008, 275(2):163-169.

      [15] MATSUMURA K, SAKAI C, KAWAKAMI S, et al. Inhibition of cancer cell growth by GRP78 siRNA lipoplex via activation of unfolded protein response [J]. Biol Pharm Bull, 2014, 37(4):648-653.

      [16] KLIONSKY D J, ABDALLA F C, ABELIOVICH H, et al. Guidelines for the use and interpretation of assays for monitoring autophagy [J]. Autophagy, 2012, 48(4):445-544.

      [17] HOYER-HANSEN M, BASTHOLM L, SZYNIAROWSKI P, et al. Control of macroautophagy by calcium, calmodulindependent kinase kinase-beta, and Bcl-2 [J]. Mol Cell, 2007, 25(2):193-205.

      [18] GAO W, DING W X, STOLZ D B, et al. Induction of macroautophagy by exogenously introduced calcium [J]. Autophagy, 2008, 4(6):754-761.

      [19] WILLIAMS A, SARKAR S, CUDDON P, et al. Novel targets for Huntington’s disease in an TOR-independent autophagy pathway[J]. Nat Chem Biol, 2008, 4(5):295-305.

      [20] WILLIAMS J A, HOU Y, NI H M, et al. Role of intracellular calcium in proteasome inhibitor-induced endoplasmic reticulum stress, autophagy, and cell death [J]. Pharm Res, 2013, 30(9):2279-2289.

      [21] RIZZUTO R, DE STEFANI D, RAFFAELLO A, et al. Mitochondria as sensors and regulators of calcium signaling [J]. Nat Rev Mol Cell Biol, 2012, 13(9):566-578.

      The effect of cytoplasmic Ca2+on cisplatin-induced autophagy in ovarian carcinoma SKOV3 cells and its mechanism

      ZENG Linchuan1,DENG Huimin2,CHEN Jun2,DOU Minghan2,XU Ye2(1.School of Public Health,Jilin Medical University,Jilin 132013,Jilin Province,China;2.Medical Research Laboratory,Jilin Medical University,Jilin 132013,Jilin Province,China)

      [Key words]Cisplatin;Ca2+;ER Stress;Autophagy

      [Abstract]Background and purpose:Ca2+plays a very important role in the maintenance of cell biological functions. The storage,release and uptake capacity of Ca2+is controlled by endoplasmic reticulum (ER). Ca2+homeostasis is essential for cellular energy metabolism and proper protein folding. This study aimed to investigate the effect of cytoplasmic Ca2+on cisplatin induced ER stress-mediated autophagy in ovarian carcinoma SKOV3 and its underlying mechanism. Methods:The ovarian cancer SKOV3 was used as a study object. The experiment consisted of three parts:① To explore the possible relationship between cisplatin-induced ER stress and autophagy,SKOV3 cells were treated with cisplatin for 0,6,12 and 24 h,respectively;② To explore the possible relationship between ER stress induced Ca2+efux and autophagy,SKOV3 cells were treated with cisplatin for 0,9 and 12 h,respectively,and TG was used asa positive control;③ To explore the effects of blocking calcium efux on autophagy,SKOV3 cells were divided into control group,cisplatin group,TG group,BAPTA-AM group,cisplatin combined with BAPTA-AM group and TG combined with BAPTA-AM group. Western blot was used to detect the protein levels of GRP78 and LC3. Fluo-4 calcium fluorescent probe was used to examine cytoplasmic Ca2+levels. Confocal microscopy was used to detect LC3 level by immunoflurescence staining. Results:Compared to control group (0.679±0.011),GRP78 was significantly accumulated at 6,12 and 24 h after cisplatin treatment and reached the maximum value at 6 h (1.393±0.004,P=0.000). Similarly,compared to control group (0.038±0.000),LC3 puncta were clearly seen after cisplatin treatment and reached the maximum value at 12 h (0.072±0.002,P=0.000). Using confocal microscopy,we found that cisplatin and TG increased LC3 punctate accumulation and cytoplasmic Ca2+levels in a time-dependent manner. Immunofluorescent method showed that treatment with cisplatin combined with BAPTA-AM or TG combined with BAPTA-AM increased LC3 punctate accumulation induced by cisplatin or TG. The results of Western blot showed that cisplatin combined with BAPTA-AM (0.071±0.001) or TG combined with BAPTA-AM (0.065±0.001) significantly increased LC3Ⅱ/LC3Ⅰ ratio induced by cisplatin (0.039±0.000,P=0.000) or TG (0.035±0.001,P=0.000). Conclusion:Cisplatin induces intracellular ER stress and autophagy in SKOV3 cells,accompanied by increased cytoplasmic Ca2+levels. Chelating cytoplasmic Ca2+enhances cisplatin-induced autophagy.

      DOI:10.3969/j.issn.1007-3969.2016.04.005

      中圖分類號:R737.31

      文獻標志碼:A

      文章編號:1007-3639(2016)04-0313-07

      基金項目:國家自然科學基金面上項目(81372793);吉林省教育廳十三五科技項目(2016237);2014吉林省大學生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)項目(2014001)。

      通信作者:徐 冶 E-mail:xuye_9707@163.com

      收稿日期:(2015-04-24修回日期:2015-06-07)

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