陳偉珠,張怡評(píng),晉文慧,方華,洪專
(國(guó)家海洋局第三海洋研究所,國(guó)家海洋局海洋生物資源綜合利用中心,福建省海洋生物資源開(kāi)發(fā)利用協(xié)同創(chuàng)新中心,福建廈門 361005)
超高效液相色譜法測(cè)定蝦青素*
陳偉珠,張怡評(píng),晉文慧,方華,洪專
(國(guó)家海洋局第三海洋研究所,國(guó)家海洋局海洋生物資源綜合利用中心,福建省海洋生物資源開(kāi)發(fā)利用協(xié)同創(chuàng)新中心,福建廈門 361005)
建立超高效液相色譜法快速檢測(cè)蝦青素的方法。采用UPLC BEH C8色譜柱(50 mm ×2.1 mm,1.7 μm),考察了流動(dòng)相、流量及柱溫對(duì)蝦青素樣品分離的影響,確定了最佳色譜條件:等度洗脫,流動(dòng)相為甲醇–水(體積比為75∶25),流量為0.5 mL/min,柱溫為40℃,檢測(cè)波長(zhǎng)為475 nm。蝦青素的質(zhì)量濃度在0.2~10.0 μg/mL范圍內(nèi)與其色譜峰面積呈良好的線性關(guān)系,線性相關(guān)系數(shù)r=0.998 8,檢出限(S/N=3)為0.1 μg/mL,定量限(S/N=10)為0.2 μg/mL。測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為0.41%(n=6),加標(biāo)回收率為105.8%~110.3%。該方法快速、簡(jiǎn)單、可靠、靈敏、重復(fù)性好,可用于蝦青素有關(guān)樣品的快速檢測(cè)。
蝦青素;超高效液相色譜法;快速測(cè)定;雜質(zhì)分離
蝦青素(又名蝦黃素、蝦黃質(zhì))是蝦蟹外殼、牡蠣、鮭魚(yú)及某些藻類中含有的類胡蘿卜素含氧衍生物,是一種酮式類胡蘿卜素。經(jīng)動(dòng)物和臨床實(shí)驗(yàn)研究表明,蝦青素具有較強(qiáng)的抗氧化、抗癌抑癌、增強(qiáng)免疫、預(yù)防心血管疾病等保健功能[1],尤其抗氧化性比維生素E強(qiáng)100多倍,被稱為“超級(jí)維生素E”。蝦青素在食品添加劑、保健食品、醫(yī)藥、水產(chǎn)養(yǎng)殖和化妝品等方面有廣泛的應(yīng)用[2–3],美國(guó)等國(guó)家已允許其作為食品添加劑,市場(chǎng)前景廣闊[4]。
目前,國(guó)內(nèi)外對(duì)蝦青素的檢測(cè)方法主要有分光光度法[5–6]、高效液相色譜法[7–9]、高效液相色譜–質(zhì)譜法[10–11]、超高效合相色譜法[12]和超高效液相色譜法[13]。但是文獻(xiàn)方法只是針對(duì)蝦青素含量的檢測(cè),而蝦青素由于其分子結(jié)構(gòu)存在共軛雙鍵鏈及其末端的不飽和酮基和羥基,性質(zhì)不穩(wěn)定,在儲(chǔ)藏過(guò)程中易與光、熱、氧化物發(fā)生作用,產(chǎn)生其它雜質(zhì)[4]。筆者對(duì)色譜柱、流動(dòng)相、柱溫和流量等色譜條件等進(jìn)行優(yōu)化,對(duì)蝦青素及其雜質(zhì)進(jìn)行分離,建立了超高效液相色譜測(cè)定蝦青素的方法,該方法簡(jiǎn)單、快速、準(zhǔn)確,可用于蝦青素及其有關(guān)雜質(zhì)的檢測(cè)。
1.1 主要儀器與試劑
超高壓液相色譜儀:Acuity型,附帶自動(dòng)進(jìn)樣器、柱溫箱、TUV 檢測(cè)器在線脫氣機(jī)和Epower 2 色譜工作站,美國(guó)Waters公司;
Milii-Q 超純水純化系統(tǒng):美國(guó)Millipore公司;
分析天平:AL104型,感量為0.1 mg,德國(guó)梅特勒公司;
2,6-二叔丁基對(duì)甲酚(BHT):分析純,國(guó)藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;
蝦青素標(biāo)準(zhǔn)品:純度不小于97%,美國(guó)Sigma公司;
甲醇、乙腈:色譜純,德國(guó)Merck公司;實(shí)驗(yàn)用水為超純水。
1.2 色譜條件
色譜柱:ACQUITY UPLCTM C8色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm,美國(guó)Waters公司);柱溫:40℃;檢測(cè)器:可調(diào)波長(zhǎng)紫外檢測(cè)器;檢測(cè)波長(zhǎng):475 nm;流動(dòng)相:甲醇–水(體積比為75∶25);流量:0.5 mL/min;進(jìn)樣體積:10 μL。
1.3 蝦青素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液配制
稱取蝦青素對(duì)照品1 mg,用乙腈溶解,置于10 mL 容量瓶中,稀釋至標(biāo)線,搖勻,配成質(zhì)量濃度為100 μg/mL的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液。
2.1 色譜條件
2.1.1 色譜柱的選擇
蝦青素結(jié)構(gòu)中含有一個(gè)長(zhǎng)的共扼不飽和雙鍵,在反相色譜柱上保留性較強(qiáng)。首先考察不同反相色譜柱對(duì)蝦青素及其有關(guān)雜質(zhì)分離效果的影響,分別選擇UPLC BEH C18、UPLC BEH C8和UPLC CSH C18三種常見(jiàn)的UPLC色譜柱進(jìn)行考察,色譜圖見(jiàn)圖1。圖1結(jié)果表明,在甲醇–水(體積比為80∶20)和柱溫30℃的相同條件下,蝦青素在UPLC BEH C8色譜柱上不僅有保留,而且主峰與雜質(zhì)峰均能分開(kāi);但在UPLC BEH C18和UPLC CSH C18色譜柱中的保留太強(qiáng),蝦青素在UPLC BEH C18色譜柱中的保留時(shí)間為9.34 min,在UPLC CSH C18中的保留時(shí)間更晚,12 min未出峰。因此選擇UPLC BEH C8作為分析蝦青素的色譜柱。
圖1 高溫破壞的蝦青素在不同色譜柱上的色譜圖
2.1.2 流動(dòng)相的選擇
比較了相同比例的乙腈–水和甲醇–水兩種不同流動(dòng)相對(duì)蝦青素及其雜質(zhì)分離效果的影響。結(jié)果表明,其它條件相同時(shí),甲醇–水和乙腈–水作為流動(dòng)相時(shí),主峰均能與雜質(zhì)峰有效地分離,但甲醇–水做流動(dòng)相的分離效果更好,雜質(zhì)峰之間也能基線分離,因此選擇甲醇–水體系作為流動(dòng)相??疾觳煌壤募状绩C水對(duì)蝦青素與其雜質(zhì)峰分離效果的影響。在柱溫30℃和流速0.3 mL/min 的相同條件下,改變甲醇–水的比例(75∶25,80∶20,85∶15,90∶10),不同比例流動(dòng)相的色譜圖如圖2所示。
圖2 高溫破壞的蝦青素在不同流動(dòng)相條件下的色譜圖
圖2結(jié)果表明,在甲醇–水(體積比為75∶25)、甲醇–水(體積比為80∶20)和甲醇–水(體積比為85∶15) 3種流動(dòng)相條件下,蝦青素均能與其雜質(zhì)峰有效地分離,但在甲醇–水(體積比為75∶25)作為流動(dòng)相時(shí),不僅蝦青素能跟其它雜質(zhì)分離,且雜質(zhì)峰之間的分離效果更好;而當(dāng)甲醇體積比增加到90%時(shí),蝦青素與雜質(zhì)峰未能分離。因此,選擇甲醇–水(體積比為75∶25)作為流動(dòng)相。
2.1.3 柱溫的選擇
在流動(dòng)相為甲醇–水(體積比為75∶25)和流量為0.3 mL/min 的相同條件下,考察柱溫變化(30,35,40℃)對(duì)分離效果的影響,結(jié)果見(jiàn)圖3。圖3結(jié)果表明,在3種不同柱溫條件下,雖然樣品的保留時(shí)間隨著柱溫的提高而縮短,但變化不是特別明顯,且樣品主峰跟其它雜質(zhì)峰均分離良好。因此考慮樣品的保留時(shí)間,柱溫選擇40℃。
圖3 高溫破壞的蝦青素在不同柱溫條件下的色譜圖
2.1.4 流動(dòng)相流量的選擇
在流動(dòng)相為甲醇–水(體積比為75∶25)和柱溫40℃的相同條件下,改變流動(dòng)相流量(0.3,0.4,0.5,0.6 mL/min),考察流量對(duì)分離效果的影響,結(jié)果見(jiàn)圖4。由圖4可知,樣品的保留時(shí)間隨著流量的增加而縮短,分離度基本沒(méi)有改變,但當(dāng)流量增加到0.6 mL/min時(shí),雜質(zhì)峰之間未能很好地分開(kāi)。因此流量選擇0.5 mL/min。
圖4 高溫破壞后的蝦青素在不同流量下的色譜圖
2.2 檢出限與定量限
將對(duì)照品溶液逐級(jí)稀釋后,以信噪比S/N=3 時(shí)的質(zhì)量濃度為檢出限,S/N=10 時(shí)的質(zhì)量濃度為定量下限。計(jì)算得檢出限為0.1 μg/mL,定量限為0.2 μg/mL。
2.3 線性關(guān)系
精密量取不同體積的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)儲(chǔ)備液,配制質(zhì)量濃度分別為0.2,0.4,1.0,2.0,4.0,8.0,10.0 μg/mL的系列標(biāo)準(zhǔn)工作溶液,按1.2色譜條件測(cè)定其峰面積,以峰面積(Y)對(duì)蝦青素的質(zhì)量濃度(X)進(jìn)行線性回歸。結(jié)果表明,蝦青素質(zhì)量濃度在0.2~10.0 μg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,線性回歸方程為Y=15 078X+3 365.7,相關(guān)系數(shù)r=0.998 8。
2.4 精密度試驗(yàn)
對(duì)質(zhì)量濃度為8.0 μg/mL 的蝦青素標(biāo)準(zhǔn)溶液連續(xù)進(jìn)樣測(cè)定6次,結(jié)果見(jiàn)表1。由表1可知,測(cè)定結(jié)果的相對(duì)標(biāo)準(zhǔn)偏差為1.42%,表明該方法具有良好的精密度。
表1 精密度試驗(yàn)結(jié)果
2.5 回收試驗(yàn)
精密稱取不同量的蝦青素,按照1.3制備供試品溶液,在相當(dāng)于供試品溶液80%,100%,120%的濃度下,分別考察加標(biāo)回收率,結(jié)果見(jiàn)表2。由表2可知,方法的回收率為105.8%~110.3%,表明該方法具有較高的準(zhǔn)確度。
表2 加標(biāo)回收試驗(yàn)結(jié)果
采用UPLC BEH C8色譜柱(2.1 mm×50 mm,1.7 μm),建立了超高效液相色譜法測(cè)定蝦青素的方法。在選定的色譜條件下,蝦青素與其它雜質(zhì)得到良好分離,且該方法流動(dòng)相的流量小,樣品的保留時(shí)間短,節(jié)約溶劑和時(shí)間。該方法具有良好的精密度和準(zhǔn)確度,可用于蝦青素樣品及其有關(guān)雜質(zhì)的高通量檢測(cè)。
[1] Liu X B,Osawa T. Cis astaxanthin and especially 9-cis astaxanthin exhibits a higher antioxidant activity in vitro compared to the all-trans isomer [J]. Biochemical and Biophysical Research Communications,2007,357: 187–193.
[2] 肖素榮,李京東.蝦青素的特性及應(yīng)用前景[J].中國(guó)食物與營(yíng)養(yǎng),2011,17(5): 33–35.
[3] 張曉麗,劉建國(guó).蝦青素的抗氧化性及其在營(yíng)養(yǎng)和醫(yī)藥應(yīng)用方面的研究[J].食品科學(xué),2006,27 (1): 258 –262.
[4] 陶姝穎,明建.蝦青素的功能特性及其在功能食品中的應(yīng)用研究進(jìn)展[J].食品工業(yè),2012,33(8): 110–115.
[5] Tolasa S,Cakli S,Ostermeter U. Determination of astaxanthin and canthaxanthin in salmonid [J]. European Food Research and Technology,2005(6): 787–791.
[6] 許培雅,鄭裕國(guó),沈寅初.分光光度法測(cè)定紅發(fā)夫酵母中蝦青素含量]J].浙江工業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2001,29(2): 120–135.
[7] 姜淼,楊賢慶,李來(lái)好,等.高效液相色譜法測(cè)定蝦殼中的蝦青素[J].食品科學(xué),2010,31(20): 371–375.
[8] Mitrowska K,Vincent U,Holst C V. Separation and quantification of 15 carotenoids by reversed phase high performance liquid chromatography coupled to diode array detection with isosbestic wavelength approach [J]. Journal of Chromatography A,2012,1 233: 44–53.
[9] 陳偉珠,張怡評(píng),晉文慧,等.高效液相色譜–光電二極管陣列法測(cè)定蝦青素的含量[J].化學(xué)分析計(jì)量,2014,23(1): 24–26.
[10] Miao F P,Lu D Y ,Li Y G,et al. Characterization of astaxanthin esters in Haematococcus pluvialis by liquid chromatography–atmospheric pressure chemical ionization mass spectrometry[J]. Analytical Biochemistry,2006,352: 176–181.
[11] Lacker T,Strohschein S,Albert K. Separation and identification of various carotenoids by C30 reversed-phase high-performance liquid chromatography coupled to UV and atmospheric pressure chemical ionization mass spectrometric detection [J]. Journal of Chromatography A,1999,854: 37–44.
[12] Li B,Zhao H Y,Liu J,et al. Application of ultra-high performance supercritical fluid chromatography for the determination of carotenoids in dietary supplements[J]. Journal of Chromatography A,2015,1 425: 287–292.
[13] Bijttebier S D,Hondt E,Noten B,et al. Ultra high performance liquid chromatography versus high performance liquid chromatography: Stationary phase selectivity for generic carotenoid screening[J]. Journal of Chromatography A,2014,1 332: 46–56.
Determination of Astaxanthin by Ultra Performance Liquid Chromatography
Chen Weizhu, Zhang Yiping, Jin Wenhui, Fang Hua, Hong Zhuan
(Third Institute of Oceanography, State Oceanic Administration, People Republic of China; Engineering Research Center of Marine Biological Resource Comprehensive Utilization, State Oceanic Administration; Fujian Collaborative Innovation Center for Exploitation and Utilization of Marine Biological Resources, Xiamen 361005, China)
A ultra performance liquid chromatography(UPLC) method for determination of astaxanthin was developed. The determination of astaxanthin was performed on a UPLC BEH C8column (50 mm×2.1 mm,1.7 μm). The influence of mobile phase,flow rate and column temperature on the separation of astaxanthin was comprehensively studied. The optimal separation condition was as follows: the mobile phase was methanol–water (volume ratio was 75∶25) with a isocratic elution profile and flow rate of 0.5 mL/min,the detection wavelength was 475 nm, the column temperature was 40℃. The mass concertration of astaxanthin has good linear ralationship with the chromatographic peak area in the range of 0.2–10.0 μg /mL, the correlation coefficient r was 0.998 8. The detection limit was 0.1 μg/mL (S/N=3). The quantitation detection limit was 0.2 μg/mL(S/N=10). The relative standard deviation of determination results was 0.41%(n=6), and the recovery was 105.8%–110.3%. The method is rapid,simple,reliable,and sensitive with a good reproducibility, it can be used for the determination of astaxanthin.
astaxanthin; ultra–performance liquid chromatography (UPLC); rapid determination; separation of impurity
O657.7
A
1008–6145(2016)06–0026–04
10.3969/j.issn.1008–6145.2016.06.006
*福建省科技計(jì)劃項(xiàng)目(2015N0009);國(guó)家重點(diǎn)研發(fā)計(jì)劃項(xiàng)目(2016YFF0201100,2016YFF0201104);海洋生物技術(shù)產(chǎn)業(yè)化中試技術(shù)研發(fā)公共服務(wù)平臺(tái)(12PZP001SF10);廣東海洋經(jīng)濟(jì)發(fā)展區(qū)域示范項(xiàng)目(GD2012–D01–001)
聯(lián)系人:陳偉珠;E-mail: wzchen@tio.org.cn
2016–08–12