袁翼 李土建 顧得月 熊妍妍 劉雪珠 李鵬
摘要:實(shí)驗(yàn)室條件下,在28 d周期內(nèi)研究了不同濃度(0、0.05、0.15、0.45、1.35 mg/L)的含油廢水對(duì)海水中微生物數(shù)量和酶活性的影響。結(jié)果表明,海水中的微生物數(shù)量隨著含油廢水污染時(shí)間和濃度的不同,表現(xiàn)出不同的變化特征。在培養(yǎng)過(guò)程中,細(xì)菌數(shù)目在7 d時(shí)達(dá)到最大值,之后開(kāi)始呈緩慢下降的趨勢(shì),其中7 d時(shí)含油濃度為0.15 mg/L的處理數(shù)量增長(zhǎng)最為明顯;在培養(yǎng)過(guò)程中放線菌一直保持增長(zhǎng)的趨勢(shì),濃度為0.45 mg/L的處理在28 d時(shí)放線菌數(shù)量明顯超過(guò)其他濃度處理;在整個(gè)培養(yǎng)過(guò)程中霉菌與酵母菌數(shù)量極少。含油廢水對(duì)海水中微生物脫氫酶和超氧化物歧化酶(SOD)的誘導(dǎo)作用不同。微生物的脫氫酶活性在0~14 d內(nèi)緩慢上升,至14 d時(shí)達(dá)到最大,其后隨著時(shí)間推移脫氫酶活性逐漸減弱。而SOD酶活性在28 d的培養(yǎng)期內(nèi)呈先下降后回升并緩慢升高的趨勢(shì),且不同濃度的含油廢水油污染對(duì)海水中微生物SOD酶活性的影響差異不顯著(P>0.05)。
關(guān)鍵詞:含油廢水;微生物數(shù)量;酶活性
中圖分類(lèi)號(hào):X55;Q938.8 文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼:B 文章編號(hào):0439-8114(2017)04-0645-05
目前國(guó)內(nèi)開(kāi)展的關(guān)于溢油污染對(duì)海洋生態(tài)系統(tǒng)影響的研究主要集中在貝類(lèi)、無(wú)脊椎動(dòng)物、魚(yú)類(lèi)以及海鳥(niǎo)和哺乳動(dòng)物等方面[1,2]。也有大量研究集中在海洋細(xì)菌對(duì)海洋溢油污染物的生物降解上,如石油降解菌的分離、純化和篩選、石油降解菌的降解效率以及海洋石油污染的生物修復(fù)等方面[3-5],很少涉及石油污染對(duì)海洋微生物消長(zhǎng)規(guī)律及微生物酶活性的影響[6]。
造船產(chǎn)業(yè)是國(guó)民經(jīng)濟(jì)中的重要組成部分。船廠在對(duì)船舶進(jìn)行機(jī)械加工、部件預(yù)舾裝、碼頭舾裝、試驗(yàn)和試航時(shí)產(chǎn)生的廢水中含有較高濃度的油,含油廢水被排到海水中后,油層覆蓋了水面,阻止空氣中的氧向水中擴(kuò)散。由于水體中溶解氧減少,藻類(lèi)的光合作用受到了限制。同時(shí),廢水中的油除了刺激烴降解微生物的生長(zhǎng)外,還會(huì)引起油污染海域微生物數(shù)量、群落結(jié)構(gòu)組成和微生物酶活性等方面的變化,并最終影響海洋生態(tài)系統(tǒng)的次級(jí)生產(chǎn)過(guò)程[7,8]。
本研究以舟山某造船廠廢油為試驗(yàn)用油,遠(yuǎn)離造船廠近海表層水為試驗(yàn)用水。于實(shí)驗(yàn)室條件下,研究含油海水與海水中微生物數(shù)量對(duì)應(yīng)關(guān)系及其對(duì)酶活性的影響,為初步建立含油廢水污染對(duì)海洋次級(jí)生產(chǎn)過(guò)程影響的評(píng)估體系奠定基礎(chǔ),并為油污染海域自身修復(fù)能力和含油廢水污染治理提供科學(xué)依據(jù)和決策參考。
1 材料與方法
1.1 材料
試驗(yàn)海水采自遠(yuǎn)離造船廠近海表層海水,樣品采集參照《海洋生物生態(tài)調(diào)查技術(shù)規(guī)程》方法[9]。
試驗(yàn)用油為舟山某造船廠廢油。由于油難溶于水,為使油均勻分散到海水中,首先制備飽和含油海水(母液),用于研究重油在水相中穩(wěn)定存在的小油珠和溶解成分對(duì)異養(yǎng)細(xì)菌的影響。母液制備方法:在無(wú)菌海水(0.22 μm濾膜過(guò)濾)中滴加過(guò)量試驗(yàn)用油,將混合液置于磁力攪拌機(jī)上,連續(xù)攪拌24 h后靜置約6 h,用分液漏斗分離出下層水相即為飽和的含油海水(母液)。
1.2 方法
1.2.1 母液濃度測(cè)定 采用紫外分光光度法測(cè)定[10]:①油標(biāo)準(zhǔn)貯備液(1 000 mg/L),準(zhǔn)備稱(chēng)取100 mg標(biāo)準(zhǔn)油于燒杯中,加入少量石油醚,溶解。全量轉(zhuǎn)移到100 mL容量瓶中,并稀釋至標(biāo)線,混勻。②油標(biāo)準(zhǔn)使用液(50 mg/L),移取5 mL油標(biāo)準(zhǔn)貯備液于100 mL容量瓶中,用石油醚稀釋至標(biāo)線,混勻。
分別配制10、20、30、40、50 mg/L的系列標(biāo)準(zhǔn)樣品,用1 cm光程石英比色皿以石油醚為空白參比,在256 nm波長(zhǎng)處依次測(cè)定上述樣品的吸光度值,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線y=0.001 0x-0.000 2,R2=0.998 7。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出母液濃度為22.5 mg/L;根據(jù)母液測(cè)定結(jié)果及海水水質(zhì)標(biāo)準(zhǔn),設(shè)置處理濃度為0、0.05、0.15、0.45、1.35 mg/L,并按20 mg/L和10 mg/L加入NH4NO3和KH2PO4作為無(wú)機(jī)營(yíng)養(yǎng)鹽[11],每個(gè)濃度分裝100 mL水樣于250 mL錐形瓶中。將設(shè)置好的5個(gè)濃度組置于28 ℃、120 r/min的恒溫振蕩培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。分別于0、7、14、21、28 d進(jìn)行取樣測(cè)定。
1.2.2 海水初始狀態(tài)下微生物數(shù)量檢測(cè) 采用熒光顯微鏡計(jì)數(shù)法檢測(cè)海水初始狀態(tài)下的微生物總數(shù)[12-14]:①取一張0.2 μm微孔濾膜,使膜光滑面朝上平貼于濾器底部;②搖勻樣品,吸取0.25 mL菌液注入濾器內(nèi),同時(shí)加入0.375 mL無(wú)菌沖洗水,加2~3滴丫啶橙染液染色3 min,手動(dòng)抽濾染色液,使微生物留于濾膜上,用無(wú)菌水沖洗數(shù)次,再將濾液抽干;③取下濾器,用鑷子將濾膜移到載玻片上,滴一小滴香波油,在熒光顯微鏡下觀察計(jì)數(shù);④觀察并計(jì)數(shù)3個(gè)裝片共30個(gè)視野下微生物數(shù)目,并按下列公式計(jì)算初始狀態(tài)下海水中微生物總數(shù):E=X■·V,式中,E表示樣品中微生物數(shù)量(ind/mL);X表示各視野中細(xì)菌總數(shù)的平均值(個(gè));S1表示濾膜面積(mm2);S2表示顯微鏡視野面積(mm2);V表示過(guò)濾菌液體積(mL)。
1.2.3 可培養(yǎng)異養(yǎng)微生物計(jì)數(shù) 可培養(yǎng)異養(yǎng)細(xì)菌數(shù)測(cè)定方法用Zobell 2216E培養(yǎng)基稀釋平板法培養(yǎng)并計(jì)數(shù)[15],可培養(yǎng)異養(yǎng)放線菌數(shù)測(cè)定方法用高氏一號(hào)培養(yǎng)基稀釋平板法培養(yǎng)并計(jì)數(shù),可培養(yǎng)異養(yǎng)霉菌及酵母菌數(shù)測(cè)定方法用PDA培養(yǎng)基稀釋平板法培養(yǎng)并計(jì)數(shù)。
1.2.4 脫氫酶及SOD酶活性測(cè)定 脫氫酶活性測(cè)定采用氯化三苯基四氮唑(TTC)法[16,17],其原理是無(wú)色的TTC在細(xì)胞呼吸過(guò)程中替代O2-作為人為受氫體,接受H+后被還原成紅色的三苯基甲臜(TF),通過(guò)測(cè)定TF吸光值大小反映細(xì)胞活力大小,樣品前處理采用文獻(xiàn)[18]方法。超氧化物歧化酶(SOD)活性測(cè)定采用改良的鄰苯三酚自氧化法(325 nm法),細(xì)胞破壁采用助溶劑破壁法[19,20]。
1.3 數(shù)據(jù)處理及分析
數(shù)據(jù)分析在SPSS 17.0中進(jìn)行,采用方差分析和LSD比較不同廢油濃度、不同培養(yǎng)時(shí)間微生物數(shù)量及生物酶活性的差異性。相關(guān)圖表制作通過(guò)Excel 2010完成。
2 結(jié)果與分析
2.1 海水初始狀態(tài)下微生物數(shù)量的檢測(cè)
為檢測(cè)海水初始狀態(tài)下微生物總數(shù),通過(guò)觀察熒光顯微鏡下30個(gè)不同視野,得X=16個(gè),S1=491 mm2,S2=7.2×10-3 mm2,V=0.25 mL,數(shù)據(jù)代入公式,可得E=4.36×106 ind/mL[21],觀察結(jié)果如圖1所示。由于經(jīng)熒光染色后在觀察時(shí)肉眼無(wú)法分辨死細(xì)胞及無(wú)生命顆粒,故正常情況下計(jì)算所得數(shù)值往往較實(shí)際可培養(yǎng)異養(yǎng)微生物總數(shù)高幾個(gè)數(shù)量級(jí)。
2.2 不同濃度含油廢水對(duì)海水中細(xì)菌數(shù)量的影響
不同含油濃度條件下海水中細(xì)菌的數(shù)量隨時(shí)間的變化見(jiàn)圖2。從圖2可以看出,在培養(yǎng)過(guò)程中不同的培養(yǎng)時(shí)間所有處理細(xì)菌數(shù)目均呈現(xiàn)先上升后下降的趨勢(shì)。在最初培養(yǎng)的7 d內(nèi)各組均大幅度增長(zhǎng),而以含油濃度為0.15 mg/L的處理數(shù)量增長(zhǎng)速度最快。各組均于7 d時(shí)細(xì)菌數(shù)量達(dá)到最大值,且可測(cè)得的各處理細(xì)菌數(shù)量顯著高于對(duì)照組(P<0.05)。其原因可能是石油進(jìn)入海水一段時(shí)間后,刺激能夠利用石油烴作為C源并參與石油烴降解細(xì)菌的生長(zhǎng),導(dǎo)致其大量增殖,而石油污染對(duì)細(xì)菌生存的影響存在一個(gè)最適濃度。
而在7~14 d的培養(yǎng)時(shí)間內(nèi),各組細(xì)菌數(shù)量均呈明顯下降趨勢(shì),表明長(zhǎng)時(shí)間的含油環(huán)境對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)有抑制作用。之后各組均緩慢上升,至28 d時(shí),數(shù)值達(dá)到相對(duì)穩(wěn)定,各組之間沒(méi)有顯著性差異(P>0.05),且各處理數(shù)值均高于對(duì)照。其中,最高濃度(1.35 mg/L)海水中的細(xì)菌數(shù)在14~21 d時(shí)曾下降至無(wú),可能是由于高濃度的溢油污染對(duì)細(xì)菌的生長(zhǎng)產(chǎn)生了抑制作用,之后又逐漸上升,至28 d試驗(yàn)結(jié)束時(shí),其數(shù)值較對(duì)照組明顯上升,但低于其他濃度組,推測(cè)是由于某些細(xì)菌對(duì)石油烴的降解作用所致。
已有研究表明,環(huán)境中可培養(yǎng)石油降解菌數(shù)與石油濃度呈密切正相關(guān)[22,23]。李博等[22]的研究表明,在石油污染的海水中,可培養(yǎng)異養(yǎng)細(xì)菌的數(shù)量先是呈增長(zhǎng)趨勢(shì),在第7天時(shí)達(dá)到最大值,然后逐漸減少。這與本試驗(yàn)結(jié)果一致,石油污染后,可培養(yǎng)異養(yǎng)菌數(shù)短期內(nèi)先增長(zhǎng)后降低,較長(zhǎng)時(shí)間后,逐漸恢復(fù)。另有研究表明,細(xì)菌中的多個(gè)屬的菌類(lèi)對(duì)石油烴具有不同程度的降解能力[24-26]。
2.3 不同濃度含油廢水對(duì)海水中放線菌數(shù)量的影響
在培養(yǎng)過(guò)程中放線菌的數(shù)量隨培養(yǎng)時(shí)間的變化如圖3所示,放線菌數(shù)量一直保持增長(zhǎng)的趨勢(shì),且在21 d及21 d之前處理與對(duì)照放線菌數(shù)量無(wú)顯著性差異(P>0.05),含油濃度為0.45 mg/L的處理在28 d時(shí)放線菌數(shù)量顯著高于其他處理(P<0.05),故推測(cè)放線菌比細(xì)菌耐受性更好,可適應(yīng)更高濃度的石油污染。而經(jīng)用PDA培養(yǎng)基分離培養(yǎng)表明所取海水中霉菌與酵母菌數(shù)量極少。
對(duì)于放線菌類(lèi)而言,在長(zhǎng)期培養(yǎng)過(guò)程中處理放線菌數(shù)總體呈上升趨勢(shì),而且隨著時(shí)間推移,含油濃度越高(在低于1.35 mg/L時(shí)),這種趨勢(shì)越明顯。這也證明了放線菌對(duì)石油烴類(lèi)具有強(qiáng)大的降解作用[27-32],但到目前為止,針對(duì)放線菌與石油污染及其對(duì)石油降解的應(yīng)用研究還很少,值得進(jìn)一步探索。
2.4 不同濃度含油廢水對(duì)海水微生物脫氫酶活性的影響
在海水中加入不同濃度的含油廢水后,海水中微生物脫氫酶活性隨時(shí)間變化特征如圖4所示。在0~7 d內(nèi)各處理微生物脫氫酶活性緩慢上升,脫氫酶活性顯著高于對(duì)照(P<0.05)。推測(cè)石油污染物誘導(dǎo)了細(xì)菌脫氫酶的產(chǎn)生。7~14 d內(nèi),除含油濃度為0.05 mg/L的處理大幅度升高,顯著高于其他處理(P<0.05),脫氫酶活性達(dá)到最大值外,其余0.15、0.45、1.35 mg/L濃度處理組,均呈小幅度下降趨勢(shì),其后隨著時(shí)間推移,14~28 d試驗(yàn)過(guò)程中脫氫酶活性逐漸減小,除28 d時(shí)濃度為0.05 mg/L的處理脫氫酶活性高于對(duì)照外,其余處理均小于對(duì)照。推測(cè)不同濃度的含油廢水對(duì)脫氫酶誘導(dǎo)的作用程度不同,高濃度的含油廢水反而較快抑制了脫氫酶的活性。
脫氫酶是微生物體內(nèi)參與石油烴類(lèi)氧化分解的重要酶類(lèi),脫氫是石油降解或轉(zhuǎn)化的首要步驟。已有研究表明脫氫酶與石油烴降解有良好的相關(guān)性[33,34],通常能反映微生物對(duì)石油污染的適應(yīng)情況。本試驗(yàn)結(jié)果顯示,各處理脫氫酶活性均呈先上升后下降趨勢(shì),且7 d后含油濃度為0.05 mg/L的處理脫氫酶活性明顯高于其他處理。推測(cè)石油污染發(fā)生后,有關(guān)石油降解菌增殖,從而導(dǎo)致與石油降解有關(guān)的菌株脫氫酶活性增強(qiáng),且較低濃度的含油廢水能更好地誘導(dǎo)油降解菌產(chǎn)生大量脫氫酶,使得脫氫酶活性顯著升高。之后,隨著石油被逐步降解,脫氫酶活性也緩慢降低到穩(wěn)定水平。
2.5 不同濃度含油廢水對(duì)海水微生物SOD酶活性的影響
在海水中加入不同濃度的含油廢水后,海水中微生物SOD酶活性隨時(shí)間變化特征如圖5所示。在28 d的培養(yǎng)期內(nèi)各處理SOD酶活性呈先下降后回升并持續(xù)緩慢升高的趨勢(shì),0~7 d內(nèi)不同濃度的含油廢水對(duì)海水中微生物SOD酶活性的影響差異不顯著(P>0.05),只有濃度為0.05 mg/L的處理SOD酶活性出現(xiàn)下降趨勢(shì);而在7~14 d內(nèi),各個(gè)處理SOD酶活性下降程度不大;隨后SOD酶活性至21 d時(shí)稍有上升,至試驗(yàn)結(jié)束各處理SOD酶活性已保持相對(duì)穩(wěn)定。
不考慮偶然因素,可以推測(cè)微生物對(duì)海水中施加的重油污染成分需要較長(zhǎng)時(shí)間的適應(yīng)期,并在適應(yīng)期過(guò)后,重油可以刺激并誘導(dǎo)微生物SOD酶的生物合成。但從培養(yǎng)后期SOD酶活性升高的趨勢(shì)來(lái)看,這種誘導(dǎo)作用是十分微弱的。目前為止,國(guó)內(nèi)外有諸多關(guān)于石油污染物對(duì)海洋生物抗氧化酶系統(tǒng)毒性效應(yīng)的研究[33-36],但較少見(jiàn)石油污染對(duì)海洋微生物SOD酶活性的研究。SOD酶是生物抗氧化系統(tǒng)的重要酶類(lèi),其活性對(duì)維持細(xì)胞正常生命活動(dòng)具有重要意義。與脫氫酶相比,重油污染對(duì)SOD酶的促進(jìn)作用要小很多,在所設(shè)計(jì)濃度范圍內(nèi),僅在14 d時(shí)有小幅回落而后緩慢上升。Christian等[37]在原油污染對(duì)大鼠抗氧化酶的作用中發(fā)現(xiàn),當(dāng)給原油超過(guò)6 mL/kg時(shí)其SOD酶活性明顯上升,而在給原油3 mL/kg時(shí)其SOD酶活性變化不明顯。
3 小結(jié)
1)被含油廢水污染后,海水中可培養(yǎng)異養(yǎng)微生物數(shù)目(細(xì)菌及放線菌)隨時(shí)間推移和含油濃度的不同而變化。從28 d周期來(lái)看,可培養(yǎng)異養(yǎng)細(xì)菌數(shù)目總體呈先升高后下降的變化趨勢(shì),7 d時(shí)各處理細(xì)菌數(shù)量大幅度上升,其中以0.15 mg/L濃度處理增長(zhǎng)最為迅速,7 d后細(xì)菌數(shù)量明顯下降,至試驗(yàn)結(jié)束各處理數(shù)量保持相對(duì)穩(wěn)定。本試驗(yàn)中0.15 mg/L濃度的含油廢水對(duì)細(xì)菌生長(zhǎng)有較明顯的促進(jìn)作用,而超過(guò)或低于該濃度其促進(jìn)作用減弱??傮w顯示含油廢水污染發(fā)生后,細(xì)菌對(duì)其的自?xún)裟芰κ怯邢薜摹?/p>
長(zhǎng)期培養(yǎng)放線菌的過(guò)程中,放線菌數(shù)量一直保持上升趨勢(shì)。7 d之前放線菌基數(shù)極小,至7 d時(shí)各處理放線菌數(shù)量開(kāi)始逐步上升。此外,放線菌數(shù)量14 d后出現(xiàn)快速增長(zhǎng),其在含油廢水污染環(huán)境中的耐受力比細(xì)菌更好,但其對(duì)廢油的適應(yīng)能力及降解修復(fù)能力值得進(jìn)一步研究。
2)較低濃度(本試驗(yàn)中0.15 mg/L)的含油廢水可促進(jìn)海水中可培養(yǎng)異養(yǎng)微生物脫氫酶的大量合成,且含油濃度為0.15 mg/L時(shí),這種促進(jìn)作用最為明顯。但從21 d開(kāi)始至試驗(yàn)結(jié)束,各組脫氫酶活性均維持在較低水平,且對(duì)照與各處理間無(wú)顯著性差異(P>0.05)。顯然,在0.05~1.35 mg/L濃度范圍內(nèi)和0~14 d時(shí)間內(nèi),含油廢水對(duì)脫氫酶具有誘導(dǎo)作用,但一旦濃度過(guò)高或作用時(shí)間過(guò)長(zhǎng),則其誘導(dǎo)作用就不明顯并開(kāi)始減弱。相較于SOD酶,脫氫酶對(duì)含有廢水的刺激更為敏感,是否可將脫氫酶活性作為檢測(cè)海洋受廢油早期污染的一個(gè)生理檢測(cè)指標(biāo)值得研究。
相比脫氫酶,各組濃度的含油廢水對(duì)海水中微生物SOD酶活性的影響差異性不顯著(P>0.05)。在所有設(shè)計(jì)濃度范圍內(nèi)各組SOD酶活在14 d時(shí)有小幅下降現(xiàn)象,21 d至試驗(yàn)結(jié)束,對(duì)照與各處理SOD酶活性亦無(wú)顯著性差異(P>0.05),說(shuō)明含油廢水污染對(duì)海水微生物SOD酶活性的影響較小。SOD酶對(duì)海洋廢油的這種遲鈍反應(yīng)是否可以作為檢測(cè)海洋受重度廢油污染的一個(gè)生理檢測(cè)指標(biāo)有待于進(jìn)一步研究。
參考文獻(xiàn):
[1] 王志霞,劉敏燕.溢油對(duì)海洋生態(tài)系統(tǒng)的損害研究進(jìn)展[J].水道港口,2008,29(5):367-371.
[2] SMOLDERS R,BERVOETS L,COEN W D,et al. Cellular energy allocation in zebra mussels exposed along a pollution gradient:Linking cellular effects to higher levels of biological organization[J].Environmental Pollution,2004,129(1):99-112.
[3] HYUN M J,KIM J M,LEE H J,et al. Alteromonas as a key agent of polycyclic aromatic hydrocarbon biodegradation in crude oil-contaminated coastal sediment[J].Environmental Science & Technology,2012,46(14):7731-7740.
[4] WANG W P,ZHONG R Q,SHAN D P,et al. Indigenous oil-degrading bacteria in crude oil-contaminated seawater of the Yellow sea, China[J].Applied Microbiology and Biotechnology,2014,98(16):7253-7269.
[5] YAKIMOV M M,TIMMIS K N,GOLYSHIN P N. Obligate oil-degrading marine bacteria[J].Current Opinion in Biotechnology,2007,18(3):257-266.
[6] 游 偲,曲 良,馬 帥,等.石油污染對(duì)海水中細(xì)菌數(shù)量和酶活性的影響[J].海洋環(huán)境科學(xué),2014,33(3):366-371.
[7] 李 玫,陳桂珠.含油廢水對(duì)秋茄幼苗的幾個(gè)生理生態(tài)指標(biāo)的影響[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2000,20(3):528-532.
[8] 游 偲.海洋異養(yǎng)細(xì)菌對(duì)溢油污染響應(yīng)特征的初步研究[D].山東青島:中國(guó)海洋大學(xué),2012.
[9] 梁玉波.我國(guó)近海海洋綜合調(diào)查與評(píng)價(jià)專(zhuān)項(xiàng)─海洋生物生態(tài)調(diào)查技術(shù)規(guī)程[M].北京:海洋出版社,2006.13-23.
[10] 龐艷華,丁永生,公維民.紫外分光光度法測(cè)定水中油含量[J].大連海事大學(xué)學(xué)報(bào),2002,28(4):68-71.
[11] MCKEW B A,COULON F,OSBORN A M,et al. Determining the identity and roles of oil metabolizing marine bacteria from the Thames estuary,UK[J].Environmental Microbiology,2007, 9(1):165-176.
[12] 晏榮軍,尹平河,林小濤.熒光顯微鏡細(xì)菌計(jì)數(shù)方法研究[J].海洋技術(shù),2005,24(1):64-66.
[13] 趙海萍,李清雪,陶建華.海洋細(xì)菌熒光顯微計(jì)數(shù)法及其應(yīng)用[J].河北工程大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2007,24(1):57-60.
[14] 張武昌,肖 天,王 榮.海洋微型浮游動(dòng)物的豐度和生物量[J].生態(tài)學(xué)報(bào),2001,21(11):1893-1908.
[15] 徐懷恕,楊學(xué)宋,李 筠.對(duì)蝦苗期細(xì)菌病害的診斷與控制[M].北京:海洋出版社,1999.55-101.
[16] 趙連梅,池勇志,張春青.TTC-脫氫酶活性測(cè)定中標(biāo)準(zhǔn)曲線的影響因素研究[J].實(shí)驗(yàn)室科學(xué),2009(4):72-74.
[17] 陳 莉,梁文艷,李 炯,等.細(xì)菌脫氫酶活性生物測(cè)試法用于水質(zhì)毒性檢測(cè)的改進(jìn)[J].中國(guó)環(huán)境監(jiān)測(cè),2010,26(3):17-21.
[18] PAISS E S,COULON F,GONI-URRIZA M,et al. Structure of bacterial communities along a hydrocarbon contamination gradient in a coastal sediment[J].FEMS Microbiol Ecol,2008, 66(4):295-305.
[19] 李 蘭,張明霞,袁金輝.不同破壁方法對(duì)細(xì)菌產(chǎn)SOD活性的影響[J].食品工業(yè)科技,2008,29(10):108-111.
[20] 張 宏,譚竹鈞.四種鄰苯三酚自氧化法測(cè)定超氧化物歧化酶活性方法的比較[J].內(nèi)蒙古大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2002, 33(6):677-681.
[21] 沈 萍,陳向東.微生物學(xué)實(shí)驗(yàn)[M].第四版.北京:高等教育出版社,1999.
[22] 李 博,沈 璐,張德民.石油污染海水中細(xì)菌群落的動(dòng)態(tài)變化[J].寧波大學(xué)學(xué)報(bào)(理工版),2009,22(4):477-483.
[23] 田勝艷,劉憲斌,高秀花.石油污染海洋環(huán)境中的細(xì)菌群落[J].環(huán)境與可持續(xù)發(fā)展,2006(4):32-35.
[24] TAZAKI K,CHAERUN S K. Life in oil:Hydrocarbon degrading bacterial mineralization in oil spill-polluted marine environment[J].Front Mater Sci China,2008,2(2):120-133.
[25] KODAMA Y,STIKNOWATI L I,UEKI A,et al.Thalassospira tepidiphila sp. nov,a polycyclic aromatic hydrocarbon-degrading bacterium isolated from seawater[J].International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology,2008,58(3):711-715.
[26] KASAI Y,KISHIRA H,SASAKI T,et al. Predominant growth of Alcanivorax strains in oil-contaminated and nutrient-supplemented sea water[J].Environmental Microbiology,2002,4(3):141-147.
[27] CHANG J H,RHEE S K,CHANG Y K,et al. Desulfurization of diesel oils by a newly isolated dibenzothiophene-degrading Nocardia sp. strain CYKS2[J].Biotechnology Progress,1998, 14(6):851-855.
[28] ZEINALI M,VOSSOUGHI M,ARDESTANI S K,et al. Hydrocarbon degradation by thermophilic Nocardia otitidiscaviarum strain TSH1: Physiological aspects[J].Journal of Basic Microbiology,2007,47(6):534-539.
[29] ZEINALI M,VOSSOUGHI M,ARDESTANI S K. Degradation of phenanthrene and anthracene by Nocardia otitidiscaviarum strain TSH1,a moderately thermophilic bacterium[J].Journal of Applied Microbiology,2008,105(2):398-406.
[30] MOODY J D,F(xiàn)REEMAN J P,DOERGE D R,et al. Degradation of phenanthrene and anthracene by cell suspensions of Mycobacterium sp. strain PYR-1[J].Applied and Environmental Microbiology,2001,67(4):1476-1483.
[31] KIM Y H,F(xiàn)REEMAN J P,MOODY J D,et al. Effects of pH on the degradation of phenanthrene and pyrene by Mycobacterium vanbaalenii PYR-1[J].Applied Microbiology Biotechnology,2005,67(2):275-285.
[32] ALONSO-GUTI?魪RREZ J,TERAMOTO M,YAMAZOE A,et al. Alkane-degrading properties of Dietzia sp. H0B, a key player in the Prestige oil spill biodegradation (NW Spain)[J].Journal of Applied Microbiology,2011,111(4):800-810.
[33] 李廣賀,張 旭,盧曉霞.土壤殘油生物降解性與微生物活性[J].中國(guó)地質(zhì)大學(xué)學(xué)報(bào),2002,27(2):181-185.
[34] MARIN J A,HERN?魣ND T,GARCIA C. Bioremediation of oil refinery sludge by land farming in semiarid conditions influence on soil microbial activity[J].Environmental Research,2005,98(2):185-195.
[35] 孫福紅,周啟星,張倩如.石油烴、Cu2+對(duì)沙蠶的毒性效應(yīng)及對(duì)其抗氧化酶系統(tǒng)的影響[J].環(huán)境科學(xué),2006,27(7):1415-1419.
[36] 陳 榮,鄭微云,余 群,等.石油污染對(duì)僧帽牡蠣(Ostrea cucullata)抗氧化酶的影響[J].環(huán)境科學(xué)學(xué)報(bào),2002,22(3):385-388.
[37] CHRISTIAN E O,OKWESILI F C N,PARKER J,et al. Effects of bonny light crude oil on anti-oxidative enzymes and total proteins in wistar rats[J].African Journal of Biotechnology,2012,11(6):16455-16460.