王迪+宋悅凡+劉舒+武龍+叢?;?谷越+汪秋寬
摘要:北極參(Cucumaria frondosa) 營養(yǎng)價值高,體壁質(zhì)厚,有極高的開發(fā)成多肽產(chǎn)品的潛能。本文以北極參為原料,研究最優(yōu)酶解工藝?;境煞譁y定結(jié)果顯示,北極參蛋白質(zhì)含量95.03%,脂肪1.76%,灰分247%。以酶解液中多肽得率為檢測標準,通過枯草桿菌中性蛋白酶與風味蛋白酶組成復合酶進行酶解,通過單因素試驗與正交試驗,優(yōu)化加酶量、酶解時間、溫度與pH,確定最優(yōu)酶解工藝;正交試驗結(jié)果顯示北極參的最優(yōu)酶解工藝為:酶解溫度為 50 ℃、pH為 8.0、料液比 1∶5、酶解時間為 5 h、加酶量為 2.09%,多肽得率為 15.38%;酶解產(chǎn)物的氨基酸組成結(jié)果表明氨基酸總量占干重約 85%;通過Sephadex G-50對北極參酶解液的多肽分子量進行分析,結(jié)果顯示分子量范圍在 1 080~12 052 Da。
關(guān)鍵詞:北極參(Cucumaria frondosa) ;正交試驗;酶解工藝
海參是海參綱的一種棘皮動物,從古至今一直被譽為名貴滋補食品、藥材[1],全世界大約有1 700多種不同海參,我國本土捕撈的可食用海參有20多種[2]。海參是典型的蛋白含量高、脂肪含量低、低糖、高營養(yǎng)價值的海產(chǎn)品[3]。對海參生物活性物質(zhì)的研究發(fā)現(xiàn)海參富含多種生物活性物質(zhì)[4]。其中的海參多肽具有良好的生物活性功能,食用起來安全,人體消化吸收容易,還能夠提高機體免疫力等[5]。近些年來,對于海參多肽研究主要還是集中于工藝提取優(yōu)化和機理活性,研究表明,海參小分子肽具有很多功能作用。殷廷[6]等對海參水煮液進行酶解,并用大孔樹脂進行吸附試驗,得到的三個多肽組分均存在良好的抗氧化活性。
北極參(Cucumaria frondosa)別名大西洋海參,體壁厚實、營養(yǎng)價值高,經(jīng)濟價值高,是開發(fā)多肽類產(chǎn)品的優(yōu)質(zhì)原料。Suwanmala[7]等發(fā)現(xiàn)北極參可提高小鼠體內(nèi)SOD水平,在小鼠體內(nèi)具有抗氧化作用。由于海參不同種質(zhì)之間和捕撈海域的不同,使得海參在營養(yǎng)價值上差異較大,這困擾了海參多肽產(chǎn)品的生產(chǎn)者和消費者,為充分利用北極參這一營養(yǎng)優(yōu)質(zhì)、價格低廉的資源,本研究以多肽得率為指標,優(yōu)化多肽酶解制備工藝,選用復合酶對北極參多肽酶解最優(yōu)制備工藝參數(shù)進行初步研究,為增加北極參的高效利用和深度開發(fā)提供科學依據(jù)。
1材料與方法
1.1材料與儀器
北極參(水發(fā))由大連水產(chǎn)企業(yè)提供;枯草桿菌中性蛋白酶、風味蛋白酶購自上海藍季科技發(fā)展有限公司;藍葡聚糖、桿菌肽、胰島素、細胞色素c、胰凝乳蛋白購于索萊寶公司;乙腈、氨基酸分析試劑盒為色譜純,Sephadex G-50凝膠購置于GE Healthcare Bio-Sciences AB;其它化學試劑均為分析純。
721S分光光度計和TU-1810DAPC型紫外可見分光光度計,普析北京通用儀器有限責任公司;Elite-AAK 柱(4.6 mm×250 mm,5 μm),安捷倫1260高效液相色譜儀,安捷倫公司。
1.2實驗方法
1.2.1海參基本成分測定蛋白質(zhì)GB/T 5009.5-2010[8];粗脂肪GB/T 5009.6-2003[9];粗灰分GB/T 5009.4-2010[10]。
1.2.2海參酶解工藝優(yōu)化以北極參為原料,將海參浸泡脫鹽[11],勻漿,酶解,滅菌,雙縮脲法測定多肽含量。酶解分別以溫度、pH、料液比、時間、加酶量(與底物重量之比)為實驗因素,進行單因素和正交實驗。
研究選擇風味蛋白酶與枯草桿菌中性蛋白酶組成復合酶,酶比例為1∶3(酶活比)[12]。酶解單因素的條件選擇如下。
1.2.2.1酶解反應溫度的選定在料液比1∶3(g/mL)、酶解時間4 h、加酶量1.74%,pH為70時,酶解溫度為45 ℃、50 ℃、55 ℃、60 ℃、65 ℃,測定上述酶解溫度對多肽得率的影響。
1.2.2.2酶解反應pH的選定在料液比為1∶3(g/mL)、酶解溫度50 ℃、酶解時間 4 h、加酶量為1.74%時,pH為5.5、6.0、6.5、7.0、7.5,測定上述pH對多肽得率的影響。
1.2.2.3酶解反應料液比的選定在酶解溫度為50 ℃、酶解時間4 h、加酶量1.74%,pH為70時,料液比為1∶2、1∶3、1∶4、1∶5、1∶6、1∶7(g/mL),測定上述料液比對多肽得率的影響。
1.2.2.4酶解反應時間的選定在料液比為1∶3(g/mL)、酶解溫度50 ℃,加酶量為1.74%,pH為7.0時,酶解時間為3、4、5、6、7 h,測定上述酶解時間對多肽得率的影響。
1.2.2.5酶解反應加酶量的選定
在料液比1∶3(g/mL)、酶解溫度為50 ℃、酶解時間4 h,pH為7.0時,加酶量為139%、174%、2.09%、2.44%、2.79%、314%,測定上述加酶量對多肽得率的影響。
1.2.3正交試驗依據(jù)單因素實驗結(jié)果正交試驗設計見表1所示。
1.2.4北極參多肽含量測定使用三氟乙酸結(jié)合雙縮脲法[13],測定酶解液中多肽得率。5 mL北極參酶解上清液+5 mL的10%三氯乙酸,4 000轉(zhuǎn)離心10 min,上清液多肽得率雙縮脲法測定。標準品用牛血清蛋白,做標準曲線[14]。通過北極參酶解液中多肽濃度計算酶解液中多肽得率,多肽得率(百分比)等于北極參酶解液的體積與北極參酶解液中多肽濃度相乘后除以北極參中的蛋白質(zhì)含量。
1.2.5北極參酶解液氨基酸組成分析衍生使用安捷倫氨基酸檢測試劑盒進行,安捷倫1260高效液相色譜儀分析檢測。柱溫,27 ℃;檢測器二極管陣列;檢測波長,360 nm/4 nm;流動相流速:1.2 mL/min;進樣量:10 μL。流動相A,50%乙腈溶液;流動相B,0.05 mol/L醋酸鈉-醋酸緩沖液(pH 6.4~6.8)加入1%N,N二甲基甲酰胺[14]。進樣時的流動相梯度A設定0 min,84%→4.3 min,69%→9.5 min,64%→17 min,45%→28 min,35%→34 min,0%→36 min,0%→38 min,84%。
1.2.6北極參酶解液分子量分布分析以桿菌肽(1 423 Da),胰島素(5 500 Da),細胞色素c(12 384 Da),胰凝乳蛋白(25 000 Da)為標準品,通過Sephadex G-50凝膠層析分析酶解液中分子量分布。
1.2.7數(shù)據(jù)處理采用Excel軟件對每一試驗三次平行數(shù)據(jù)結(jié)果進行分析比較。
2結(jié)果與分析
2.1北極參基本成分
由表2可見北極參是一種高蛋白,低脂肪的健康食品;與王磊等[15]對東海海參體壁的營養(yǎng)成分分析比較發(fā)現(xiàn),粗蛋白含量為71.74%和王遠紅[16]研究三種不同西沙群島海參科的海參蛋白質(zhì)含量均在70%左右,脂肪均在1%左右,本實驗北極參蛋白含量高達95% 均高于這幾種海參,粗脂肪含量也較低,北極參中黏多糖含量未檢出(檢測方法參考鄭艾初等[17]),其原因可能與前期水發(fā)工藝有關(guān)。
2.2北極參酶解工藝優(yōu)化
2.2.1酶解溫度對酶解液中多肽得率的影響酶解溫度對北極參酶解液中多肽得率影響在圖1顯示。從圖1中可看出,在酶解溫度低于60 ℃時,北極參酶解液多肽含量隨著溫度升高而升高,60 ℃時多肽含量達最高值,當酶解溫度高于60 ℃時,多肽含量急劇下降。分析原因,酶屬于一種特殊的蛋白質(zhì),當溫度沒有達到其最適溫度時,隨溫度上升得率不斷增加,在達到最適溫度后,再不斷地升高溫度,只會引起酶活的急劇下降,多肽得率也隨之下降[18]。在酶促反應中溫度是重要因素。在試驗過程中過度偏離最適溫度,將無法達到預期效果。
2.2.2pH值對酶解液中多肽得率的影響pH值對酶解液多肽得率的影響在圖2顯示,由于酶的特殊性,pH的改變會造成酶的失活[18]。由圖2可見,北極參酶解pH值越高,酶解液中多肽含量越高。風味蛋白酶最適pH值在6.5左右,枯草桿菌中性蛋白酶最適pH 在7.0左右[19],參考實驗室其它海參研究結(jié)果[20]并與梁杰[21]等人對海參蛋白肽制備工藝的研究比較,發(fā)現(xiàn)偏堿性條件酶解效果更優(yōu),所以,添加pH 8進行正交試驗。
2.2.3料液比對酶解液多肽得率影響料液比對多肽得率的影響在圖3顯示。如圖3中可見,北極參在料液比在1∶2~1∶4的范圍內(nèi)波動時,酶解液多肽得率隨著水比例的上升而上升;料液比大于1∶4后,多肽得率變化趨勢趨于平緩。當料液中水比重在逐漸增加時,底物與酶接觸面積便會減少,酶解反應隨之變慢,反應速率降低。因此料液比選在1∶4。
2.2.4酶解時間對酶解液中多肽得率的影響酶解時間對酶解液中多肽得率的影響在圖4中顯示。如圖4中可見,北極參隨著時間的增加,多肽得率先上升后下降,4 h時達到頂峰值。此現(xiàn)象出現(xiàn)可能由于酶進一步將多肽轉(zhuǎn)變成氨基酸,所以引起得率下降。酶解反應時間為4 h最優(yōu)。
圖4酶解時間對北極參酶解液多肽得率的影響
2.2.5加酶量對酶解液多肽得率的影響加酶量對酶解液多肽含量的影響在圖5顯示。加酶量對酶解液多肽得率的影響隨底物性質(zhì)的變化而變化。低于最佳加酶量,酶濃度低,使得水解不完全,過高又將造成水解過度,比較侯付景[22]等對海地瓜酶解工藝研究研究結(jié)果,加酶量在2%左右為最佳,比較本文數(shù)據(jù)1.74%與2.09% 加酶量多肽得率并無太大差別,所以選擇北極參的最適加酶量為2.09%。
2.2.6酶解條件正交試驗優(yōu)化
根據(jù)表3可得出,實驗最優(yōu)組合為A1B4C4D4E4,即酶解溫度為45 ℃、pH值為8.0、料液比1∶5、酶解時間為6 h、加酶量為2.79%,在該條件多肽得率為1477%;通過極差分析得知,各因素影響酶解過程的主次順序是C(料液比)>A(酶解溫度)> B(pH值)>D(酶解時間)>E(加酶量)。所以理論最優(yōu)組合為A2B4C4D3E2,即酶解溫度為50 ℃、pH值為80、料液比1∶5、酶解時間為5 h、加酶量為2.09%。
由表4經(jīng)過驗證實驗,得出最優(yōu)酶解工藝為最優(yōu)酶解工藝為A2B4C4D3E2,即酶解溫度為50 ℃、pH值為8.0、料液比1∶5、酶解時間為5 h、加酶量為2.09%。正交結(jié)果表明,酶解料液比和溫度為酶解反應中重要因素,楊穎等[20]對于加拿大紅參的研究也證實酶解溫度是顯著影響因素,因此在生產(chǎn)中應嚴格控制溫度及加水量,以確保酶解效果。蘇永昌[23]等以地瓜參為原料進行酶解工藝的研究,其優(yōu)化條件與本文相差無幾,但多肽得率低于本研究結(jié)果,分析原因可能是本研究使用了復合酶,而蘇永康選用的為單一中性蛋白酶,這也說明單一酶酶解結(jié)果不如復合酶酶解結(jié)果好。
2.3北極參酶解液氨基酸組成
由表5可知,北極參酶解液中的氨基酸含量豐富,必需氨基酸總量為21 081.54 mg/100 g,占氨基酸總量的24.6%,本文四種呈味氨基酸占氨基酸總量的42.1%,比袁文鵬[24]研究仿刺參中酶解提取物必須氨基酸和呈味氨基酸都高。有報道表明,許多哺乳動物生長都離不開精氨酸[25],比較李亞嫻[14]等對澳洲禿參酶解液的研究,北極參酶解液精氨酸含量遠高于澳洲禿參酶解液中精氨酸含量。Seifter[26]等人研究表明,精氨酸能夠促進創(chuàng)傷的愈合。北極刺參氨基酸含量豐富,適合各類人群食用,尤其是兒童和創(chuàng)傷病人。研究表明該北極參酶解產(chǎn)物有進一步開發(fā)成為海參多肽產(chǎn)品和海參調(diào)味產(chǎn)品的潛力。
北極參酶解液多肽分子量分布由圖6所示。由圖6可見北極參酶解液多肽分子量分布范圍為1 088~12 052 Da,Perez-Vega JA等[27]在海參中發(fā)現(xiàn)一種分子量小于3 000 Da的多肽類物質(zhì)具有較好的ACE(血管緊張素轉(zhuǎn)換酶)抑制活性。王靜等人[28]研究表明海參酶解液中小于3 000 Da分子量的多肽抗氧化活性十分顯著。Zhou Xiaoqiu等人[29]仿刺參(Stichopus japonicus)水解,得到2 種分子量小于3 000 Da的低分子多肽,表明其具有治療胃癌和乳腺癌的功效。北極參酶解液分子量主要集中分布在1 088~4 071 Da之間,這說明酶解液中多為9~34個氨基酸組成的多肽。
圖6北極參酶解液多肽分子量分布曲線
3結(jié)論
北極參枯草桿菌中性蛋白酶和風味蛋白酶復合酶酶解優(yōu)化條件為酶解溫度為50 ℃、pH值為8.0、料液比1∶5、酶解時間為5 h、加酶量為209%,其酶解液中多肽得率達15.38%。北極參酶解液多肽分子量分布范圍為1 088~12 052 Da,其具有進一步開發(fā)成多肽產(chǎn)品和調(diào)味料的潛力。
參考文獻:
[1]
于林芳,薛長湖,董平,等.八種海參海參體內(nèi)皂苷類成分的SPE-HPLC分析比較[J].分析實驗室,2011,30(1):13-15
[2] 沈鳴.海參的化學成分和藥理研究進展[J].中成藥,2001,23(10):758-761
[3] Wen J,Hu C.Elemental composition of commercial sea cucumbers (holothurians) [J].Food Additives and Contaminants:Part B,2010,4(3):246-252
[4] 王洪濤,付學軍,申京宇,等.海參多肽、多糖綜合提取工藝條件的優(yōu)化[J].食品與生物技術(shù)學報,2006,25(6):83-86
[5] Bordbar S,Anwar F,Saari N. High-value components and bioactive from sea cucumbers for functional foods: a review [J]. Marine Drugs,2011,9(10): 1761-1805
[6] 殷廷,黃璐,喬凱旗,等.海參水煮液多肽的抗氧化活性[J].食品科技,2015,40(9):146-149.
[7] Jitima Suwanmala,Shangyun Lu,Qingjuan Tang,et al. Comparison of Antifatigue Activity of Five Sea Cucumber Species in a Mouse Model of Intense Exercise[J]. Journal of Food and Nutrition Research,2016,4(1): 12-19
[8] GB/T 5009.5-2010,食品中蛋白質(zhì)的測定[S].北京:中華人民共和國衛(wèi)生部,2010
[9] GB/T 5009.6-2003,食品中脂肪分的測定[S].北京:中華人民共和國衛(wèi)生部,2003
[10] GB/T 5009.4-2010,食品中灰分的測定[S].北京:中華人民共和國衛(wèi)生部,2010
[11] GB/T 11896-1989 ,水質(zhì)氯化物的測定[S].北京:中華人民共和國家環(huán)境保護總局,1989
[12] 鄭金娃,汪秋寬,何云海,等.海參多肽脫色脫腥工藝的優(yōu)化研究[J].大連海洋大學學報,2013,28(3):303-306
[13] 隋華嵩,趙倩輝,薛龍,等.金絲梅花粉可溶性多肽提取工藝研究[J].食品與發(fā)酵科技,2012,48(2):40-43
[14] 李亞嫻,谷越,汪秋寬,等.澳洲禿參酶解制備多肽的工藝優(yōu)化[J].食品工業(yè)科技,2016,37(16):40-43
[15] 王遠紅,王聰,郭麗萍,等.海參科(Holothuriidae)中4種海參的營養(yǎng)成分分析[J].中國海洋大學學報,2010,40(7):111-114
[16] 王磊,陸海霞,陳青.東海海參(Acaudina molpadioidea) 營養(yǎng)成分分析及評價[J].食品與發(fā)酵工業(yè),2014,40(8):215-218
[17] 鄭艾初,陳健,彭超英.糙海參酸性粘多糖的提取純化工藝探討[J].現(xiàn)代食品科技,2007,23(5):65-67.
[18] 喬若瑾.新型海蜇調(diào)味品的制備研究[D].青島:中國海洋大學,2013
[19] 王海洪,吳漢民.枯草桿菌AS1.398制備中性蛋白酶的研究[J].浙江水產(chǎn)學院學報,1996(3):179-183
[20] 楊穎,汪秋寬,谷越,等. 加拿大紅參(Parastichopus californicus)基本成分分析及其酶解工藝研究[J].食品工業(yè)科技,2016,37(1):190-200
[21] 梁杰,汪少蕓.海參蛋白肽制備工藝優(yōu)化及抗氧化性質(zhì)[J].莆田學院學報,2016,23(2):67-71
[22] 侯付景,金春華,董明敏,等.響應面分析法優(yōu)化海地瓜酶解工藝及其抗氧化活性的研究[J].營養(yǎng)學報,2010,32(3):276-280
[23] 蘇永昌,劉淑集,吳成業(yè).海參多肽的制備工藝優(yōu)化及其抗氧化測定[J].福建水產(chǎn),2009,2(6):6-10
[24] 袁文鵬,張綿松,胡煒,等.仿刺參酶解提取物營養(yǎng)成分分析及其對小鼠免疫功能的影響[J].現(xiàn)代食品科技,2015,31(11):45-50
[25] Wu G,Jaeger LA,Bazer FW,et al. Arginine deficiency in preterm infants: biochemical mechanisms and nutritional implications[J]. J Nutr Biochem,2004,15(8): 442-451
[26] Seifter E. Amino acid function in treatment [J]. Surgery,1978,84:224
[27] Perez-Vega J A,Olivera-Castillo L,Gomez-Ruiz J A,et al. Release of multifunctional peptides by gastrointestinal digestion of sea cucumber (Isostichopus badionotus) [J]. Journal of fuctional foods,2013,5(2): 869-877
[28] 王靜,張京樓,王鐸喜,等. 海參多肽的抗氧化性能研究[J]. 食品與機械,2010,26(2): 67-71
[29] ZHOU Xiaoqiu,WANG Changhai,JIANG Aili. In vitro antitumor activities of low molecular sea cucumber Stichopus japonicus peptides sequentially hydrolyzed by proteases[J]. Advanced Materials Research,2011,393-395:1259-1262
Enzymic hydrolyzing technologies for preparation of polypeptides from Cucumaria frondosa
WANG Di ,SONG Yuefan,Liu Shu,WU Long,Cong Haihua,GU Yue,WANG Qiukuan
(College of Food Science and Technology,Dalian Ocean University,National Research and Development Branch Center for Seaweed Processing,Key Laboratory of Fishery Product Processing and Utilization of Liaoning Province,Dalian 116023,China)
Abstract: Cucumaria frondosa prossesses high nutritional value and quality. It has a huge potential for application in development of polypeptide products. In this study,the sea cucumber Cucumaria frondosa was used as raw material and the peptide amount produced as determining indicator to carry out the orthogonal test for optimizing enzymolytic factors by using the combined enzymes of subtilism and flavourzyme,which included the enzyme amount added,enzymolytic time,temperature and pH value based on the findings of single factor experiments. The analysis of approximate composition for the raw material showed that the protein content was 95.03%,the lipid content was 1.76% and the ash content was 2.47%. The results obtained by orthogonal test indicated that the yield of polypeptides was 15.38% at optimized enzymolytic hydrolyzing conditions as follows: the material and water ratio of 1∶5 at temperature of 50 ℃,pH value of 8.0 and the amount of enzyme added of 2.09% for hydrolyzing time of 5 h. The total amino acids were measured for 85% of the dry weight of the hydrolysate. The polypeptide molecular weight distribution of the hydrolyzing product was estimated among 1 080~12 052 Da by Sephadex G-50.
Key words:Cucumaria frondosa; orthogonal test;hydrolyzing technology
(收稿日期:2017-02-13)