• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看

      ?

      Ala -Gln二肽代替Gln提高綿羊體外受精胚胎發(fā)育能力試驗*

      2018-05-11 02:30:27張奇波皮文輝
      新疆農墾科技 2018年1期
      關鍵詞:二肽體外受精囊胚

      張奇波,皮文輝*

      (1.克拉瑪依綠成農業(yè)開發(fā)有限公司,新疆 克拉瑪依 834000;2.省部共建綿羊遺傳改良與健康養(yǎng)殖國家重點實驗室/新疆農墾科學院畜牧獸醫(yī)研究所)

      L-谷氨酰胺(Glutamine,Gln)是生物合成核酸的必須前體物質,是蛋白質合成與分解的調節(jié)物,是體內外早起胚胎發(fā)育的必須氨基酸[1-8]。Gln在哺乳動物雌性生殖道子宮液中呈現(xiàn)較高生理濃度[1-4]。Gln添加改善了哺乳動物小鼠、人、豬和牛的胚胎體外發(fā)育率[5-8]。

      胚胎體外培養(yǎng)37℃環(huán)境中,氨基酸的代謝和氨基酸自然分解會釋放銨離子 (ammonium,NH4+)進入胚胎的周圍環(huán)境中[9]。小鼠和家畜早起胚胎體外培養(yǎng)研究顯示,由于銨的存在,胚胎的生理、發(fā)育和生存能力受到損害[9-12],甚至影響出生個體健康狀態(tài)[9]。降低培養(yǎng)液氨基酸濃度或改變氨基酸形式,降低銨的蓄積,有利于改善胚胎發(fā)育環(huán)境[9,13]。

      哺乳動物胚胎體外培養(yǎng)液添加Gln濃度一般是1 mmol/L或2 mmol/L。然而Gln化學穩(wěn)定性差,會自然降解成銨和5-吡咯烷酮-2-羧酸 (5-pyrrolidone-2-carboxylic acid)[14]。用含 Gln 的二肽代替培養(yǎng)液中的Gln,能夠避免Gln自然分解產生的銨,降低培養(yǎng)液中銨的累積程度[9]。商品化的人用移植前胚胎培養(yǎng)液已經采用Gly-Gln (glycyl-L-glutamine)或 Ala-Gln(Alanyl-L-Glutamine)二肽代替 Gln[15]。Gln 二肽改善了小鼠[9,16,17]、豬[18-19]早期胚胎體外發(fā)育能力。

      在含氨基酸的培養(yǎng)液中,綿羊囊胚培養(yǎng)產銨量顯著高于小鼠囊胚,間接表明反芻動物胚胎比嚙齒類胚胎需要代謝利用更多的氨基酸[20]。利用二肽代替Gln,降低培養(yǎng)液中銨的累積量,可能對綿羊胚胎體外培養(yǎng)產生積極影響。

      1 材料和方法

      1.1 卵母細胞體外成熟

      將屠宰場獲得的綿羊卵巢放在裝有生理鹽水的保溫瓶中,2~4 h帶回實驗室。剪去卵巢周圍多余組織,用生理鹽水清洗2遍,帶入無菌間進行采卵。鑷子夾取卵巢置于采卵液 (M199+0.1%BSA+0.1 mg/mL肝素+0.1 mg/mL慶大霉素)中,用無菌手術刀片將卵泡切開。卵巢切割完成后,用手拉玻璃細管在體式顯微鏡下選取形態(tài)正常、胞質均勻的卵丘卵母細胞復合體進行成熟。1 mL成熟液中 (M199+15%FBS+0.1 IU/mL FSH+0.2 IU/mL LH+1.0 μg/mL雌二醇)培養(yǎng)80枚/mL,培養(yǎng)條件為38.5℃、5%CO2、飽和濕度,成熟培養(yǎng)24 h。

      1.2 卵母細胞體外受精

      Percoll梯度離心法處理綿羊精液:從液氮罐中取出綿羊細管冷凍精液,放入39℃水浴解凍。用HSOF液配制90%和45%的Percoll梯度溶液,將解凍后的冷凍精液輕輕加在Percoll梯度液的表面,進行密度梯度離心(500 g 或 2 000 r/min,20 min)。沉淀精子再用5 mL HSOF(SOF+20 mmol/LHEPES+5 mmol/LNaHCO3+0.3%BSA)離心洗滌 (300 g或1 200 r/min,5 min)1次,去上清液后,用受精液將精子密度稀釋至5×106個/mL用于體外受精。

      受精前1~2 h在培養(yǎng)皿做好受精液小滴,每滴70 μL,覆蓋石蠟油,放入 CO2培養(yǎng)箱中平衡。SOF液是受精基礎液,添加2%(v/v)發(fā)情羊血清、2.9 mM乳酸鈣和16 μM異丙(去甲)腎上腺素[21]。在精子處理的同時,用200 μL移液器在原成熟盤中反復吹打培養(yǎng)成熟的卵母細胞和顆粒細胞復合體,使卵子間相互分離,去除部分顆粒細胞。卵子在HSOF中洗滌3次,受精液中洗滌1次。將30~50個卵母細胞移入受精液滴中,再用移液器吸取10 μL處理后的精液,加入受精液滴中,精子的最終濃度是5×106個/mL。然后將培養(yǎng)皿放入38.5℃、5%CO2和飽和濕度培養(yǎng)箱中過夜培養(yǎng)。

      1.3 體外發(fā)育培養(yǎng)

      發(fā)育液是NaHCO3緩沖的SOF溶液,添加1%(V ∶V)非必須氨基酸溶液(Sigma,M7145)、2%(V ∶V)必須氨基酸溶液(Sigma,B6766)、8 mg/mL BSA(Sigma,A3311)。對照組添加 Gln 2 mmol/L,實驗組添加 Ala-Gln 二肽 (Gibco,GlutaMAX 100×,35050061)2 mmol/L。受精后的合子用發(fā)育液清洗干凈,100~150枚/0.5 mL發(fā)育培養(yǎng)液中培養(yǎng),培養(yǎng)環(huán)境是38.5℃、5%CO2飽和濕度。整個發(fā)育培養(yǎng)過程不換液。分別在培養(yǎng)的 24 h、48 h、120 h、144 h和168 h觀察,確定卵裂數(shù)、囊胚數(shù)和孵化囊胚數(shù)。

      1.4 統(tǒng)計分析

      用SPSS軟件統(tǒng)計分析,所有數(shù)據(jù)均表示為平均數(shù)±標準誤。胚胎分裂率、囊胚率和孵化囊胚率數(shù)據(jù)利用卡方檢驗進行分析,當P<0.05時認為差異顯著。

      2 結果

      2.1 Ala-Gln二肽對綿羊體外受精胚胎發(fā)育的影響

      為了分析Ala-Gla二肽對綿羊體外受精胚胎發(fā)育的影響,本實驗進行了7次對比實驗。每次實驗當天采集新鮮綿羊卵巢,從中收集質量好的卵母細胞進行體外受精,將體外受精后的合子,隨機分為Ala-Gln培養(yǎng)組和Gln培養(yǎng)組進行體外發(fā)育培養(yǎng)。每組培養(yǎng)的合子控制在100~150枚。培養(yǎng)24 h、48 h、120 h、144 h 和 168 h,分別觀察卵裂率、囊胚率和孵化囊胚率。

      表1 Ala-Gln或Gln對綿羊體外受精胚胎發(fā)育的影響

      統(tǒng)計7次實驗結果并進行卡方檢驗。結果表明(見表1),受精卵體外培養(yǎng)24 h卵裂率差異不顯著(23.06±3.05 VS 19.80±4.06)。42 h卵裂率(86.17±2.97 VS 82.36±4.52)差異顯著。120 h和144 h的囊胚率差異顯著 (17.66±1.88 VS 13.29±1.67和31.85±1.80 VS 26.37±2.44)。168h孵化囊胚率差異不顯著(16.69±2.12 VS 14.90±1.95)。這些結果說明,在胚胎培養(yǎng)液中使用Ala-Gln代替Gln,可以有效提高綿羊胚胎在體外的發(fā)育能力。

      3 討論

      實驗表明,不同物種著床前的胚胎體內外發(fā)育能力都受到氨基酸的影響[1-8]。氨基酸已經成為早期胚胎發(fā)育培養(yǎng)液中普遍添加的成分。Garden和Lane報道,氨基酸對早期胚胎發(fā)育產生積極影響的同時,胚胎代謝氨基酸和37℃天然降解氨基酸,導致培養(yǎng)液中蓄積銨離子水平逐漸增加[22]。在添加必需氨基酸和非必須氨基酸,用Ala-Gln代替Gln的培養(yǎng)液中,兩細胞階段的胚胎,銨離子的積累幾乎可以忽略不計[23]。估計小鼠和牛囊胚代謝產生銨離子的速率分別是 1.0 pmol/胚胎/h和4.3 pmol/胚胎/h[22]。牛囊胚產銨離子速率比小鼠高很多,主要是歸因于代謝水平更高[24]。

      Summers[25]等用Gly-L-Gln代替Gln培養(yǎng)小鼠胚胎,沒有影響囊胚率,但刺激了內細胞數(shù)量增加,可能對胚胎質量產生有益影響。Gly-L-Gln或Ala-L-Gln代替Gln的商品化人用胚胎發(fā)育液[15]和豬[18,19]胚胎發(fā)育影響研究,都表明二肽優(yōu)于Gln培養(yǎng)結果。

      本實驗表明,Ala-Gln代替Gln提高了綿羊卵母細胞體外受精卵裂率、囊胚發(fā)育率(見表1)。由于二肽化學穩(wěn)定性高,商品化的Ala-Gln試劑為200 mM的液體,配制成2 mM工作濃度時,只需用移液器取適當體積溶液,不用稱量。而Gln化學穩(wěn)定性差,試劑以固體形式保存,每次配制時需要稱量。因此,采用商品化的Ala-Gln溶液,免除了稱量Gln,簡化了綿羊體外受精發(fā)育液配制,改善了胚胎體外發(fā)育能力。

      [1]Kermack AJ,F(xiàn)inn-Sell S,Cheong YC,et al.Amino acid composition of human uterine fluid: association with age,lifestyle and gynaecological pathology[J].Hum Reprod,2015,30(4):917-924.

      [2]Harris SE, Gopichandran N, Picton HM, et al.Nutrient concentrationsin murine follicularfluid and the female reproductive tract[J].Theriogenology,2005,64(4):992-1006.

      [3]Gao H,Wu G,Spencer TE,et al.Select nutrients in the ovine uterine lumen.I.Amino acids, glucose, and ions in uterine lumenal flushings of cyclic and pregnant ewes[J].Biol Reprod,2009,80(1):86-93.

      [4]Hugentobler SA,Diskin MG,Leese HJ,et al.Amino acids in oviduct and uterine fluid and blood plasma during the estrous cycle in the bovine[J].Mol Reprod Dev,2007,74(4):445-454.

      [5]Lane M,Gardner DK.Differential regulation of mouse embryo development and viability by amino acids[J].J Reprod Fertil,1997, 109(1):153-164.

      [6]Devreker F,Winston RM,HardyK.Glutamineimproves human preimplantation development in vitro[J].Fertil Steril,1998,69(2):293-299.

      [7]Suzuki C, Yoshioka K, Sakatani M,et al.Glutamine and hypotaurine improves intracellular oxidative status and in vitro development of porcine preimplantation embryos[J].Zygote,2007,15(4):317-324.

      [8]Steeves TE,Gardner DK.Temporal and differential effects of amino acids on bovine embryo development in culture[J].Biol Reprod,1999,61(3):731-740.

      [9]Lane M,Gardner DK.Ammonium induces aberrant blastocyst differentiation, metabolism,pH regulation, gene expression and subsequently alters fetal development in the mouse[J].Biol Reprod,2003,69:1109-1117.

      [10]Zander DL,Thompson JG,Lane M.Perturbations in mouse embryo development and viability caused by ammonium are more severe after exposure at the cleavage stages[J].Biol Reprod,2006, 74:288-294.

      [11]Rooke JA, McEvoy TG,Ashworth CJ, et al.Ovine fetal development is more sensitive to perturbation by the presence of serum in embryo culture before rather than after compaction[J].Theriogenology,2007,67:639-647.

      [12]McEvoy TG, Robinson JJ, Carolan C, et al.Ovine fetal development following embryo culture in synthetic oviductal fluid with added ammonium[J].Theriogenology,1999,51:247.

      [13]Lane M,Hooper K,Gardner DK.Effect of essential amino acids on mouse embryo viability and ammonium production[J].J Assist Reprod Genet,2001,18(9):519-525.

      [14]Tritsch GL,Moore GE.Spontaneous decomposition of glutamine in cell culture media[J].Exp Cell Res, 1962, 28:360-364.

      [15]Bouillon C,Léandri R,Desch L,et al.Does Embryo Culture Medium Influence the Health and Development of Children Born afterIn Vitro Fertilization? [J].PLoS One,2016,11 (3):e0150857.

      [16]Biggers JD, McGinnis LK,Lawitts JA.Enhanced effect of glycyl-L-glutamine on mouse preimplantation embryos in vitro[J].Reprod Biomed Online,2004,9(1):59-69.

      [17]Summers MC,McGinnis LK,Lawitts JA,et al.Mouse embryo development following IVF in media containing either L-glutamine or glycyl-L-glutamine[J].Hum Reprod,2005,20(5):1364-1371.

      [18]Kim SJ,Koo OJ,Kwon DK,et al.Replacement of glutamine with the dipeptide derivative alanyl-glutamine enhances in vitro maturation of porcine oocytes and development of embryos[J].Zygote,2014,22(2):286-289.

      [19]王旭霞,靳宇洲,左振瑞,等.用Ala-Gln二肽替換Gln可提高豬體細胞克隆胚胎發(fā)育能力 [J].農業(yè)生物技術學報,2017,25 (1):110-115.

      [20]Gardner DK,Lane M,Spitzer A et al.Enhanced Rates of Cleavage and Development for Sheep Zygotes Cultured to the Blastocyst Stage In Vitro in the Absence of Serum and Somatic Cells: Amino Acids, Vitamins, and Culturing Embryos in Groups Stimulate Development[J].Biol Reprod,1994,50:390-400.

      [21]Antonella F,Paola T,F(xiàn)ederica Z,et al.Impaired Placental Vasculogenesis Compromises the Growth of Sheep Embryos Developed In Vitro[J].Biol Reprod,2014,91(1):1-7.

      [22]Gardner DK,Lane M.Amino acids and ammonium regulate mouse embryo development in culture[J].Biol Reprod,1993,48:377-385.

      [23]Gardner DK,Lane M.Towards a single embryo transfer[J].Reprod BioMed Online,2003(6):470-481.

      [24]Orsi NM,Leese HJ.Ammonium exposure and pyruvate affect amino acid metabolism of bovine blastocysts in vitro[J].Reproduction,2004,127:131-140.

      [25]Summers MC,McGinnis LK, Lawitts JA, et al.Mouse embryo development following IVF in media containing either L-glutamine or glycyl-L-glutamine[J].Human Reproduction,2005,20(5):1364-1371.

      猜你喜歡
      二肽體外受精囊胚
      大型海藻中環(huán)二肽類抑藻活性化合物的分離純化
      海洋通報(2022年6期)2023-01-07 02:49:22
      D5囊胚解凍后培養(yǎng)時間對妊娠結局的影響
      凍融囊胚的發(fā)育天數(shù)和質量對妊娠結局的影響
      左旋多巴與脯氨酸或谷氨酸構成的環(huán)二肽的合成及其DPPH自由基清除活性測試
      電化學發(fā)光分析法測定糖尿病相關二肽
      分析化學(2017年12期)2017-12-25 12:24:55
      二肽的生物合成及應用研究進展
      子宮血流測定在體外受精新鮮移植周期中的應用
      一氧化氮在小鼠囊胚發(fā)育和孵化中的調控作用
      體外受精-胚胎移植妊娠后分娩情況隨訪的準確性研究
      新鮮周期和復蘇周期囊胚培養(yǎng)及移植的臨床結局分析
      马关县| 万源市| 文成县| 建阳市| 桑植县| 呼玛县| 巩义市| 芷江| 涪陵区| 琼海市| 安平县| 陵川县| 宣汉县| 芮城县| 奈曼旗| 芦溪县| 正蓝旗| 南宁市| 峨眉山市| 台南市| 望城县| 吉隆县| 上犹县| 胶南市| 武强县| 康马县| 苏尼特右旗| 陈巴尔虎旗| 平邑县| 乾安县| 新沂市| 长治市| 任丘市| 洞口县| 叶城县| 朝阳区| 东阳市| 汉川市| 海南省| 依安县| 桐梓县|