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      木聚糖酶基因的克隆與表達(dá)

      2018-06-07 02:46:58宋立立頓寶慶張亞楠田景漢
      江蘇農(nóng)業(yè)科學(xué) 2018年10期
      關(guān)鍵詞:真核原核木糖

      宋立立, 頓寶慶, 張亞楠, 田景漢

      (1.滄州師范學(xué)院生命科學(xué)學(xué)院,河北滄州 061000;2.中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué)研究院作物科學(xué)研究所/國(guó)家農(nóng)作物基因資源與基因改良重大科學(xué)工程/生物質(zhì)能源研究中心,北京 100081)

      木聚糖是植物半纖維素的主要成份,是除纖維素之外自然界中最為豐富的多糖,也是自然界中最為豐富的可再生資源之一[1]。半纖維素在秸稈中僅次于纖維素,是可再生資源,但是大部分被作為廢棄物浪費(fèi)。我國(guó)秸稈資源豐富,將秸稈中的半纖維素轉(zhuǎn)化為可利用資源是一個(gè)尚待解決的問題。木聚糖酶是木聚糖降解中最關(guān)鍵的酶,可以使木聚糖分子中β-1,4糖苷鍵斷裂,水解產(chǎn)物為木二糖和木寡糖。木聚糖酶在能源工業(yè)、造紙制漿、食品、紡織、飼料等方面具有廣闊的應(yīng)用前景[2-3]。用木聚糖酶對(duì)含半纖維素的紙漿進(jìn)行處理,可以減少漂白工藝中化學(xué)的用量,減輕對(duì)環(huán)境的污染,還可以提高紙漿的漂白度;木聚糖酶還可以作為飼料添加劑來提高飼料的利用率,改善飼料的營(yíng)養(yǎng)價(jià)值;制酒工業(yè)添加木聚糖酶降低非淀粉多糖的含量,使后期易于過濾,酒色變澄清。國(guó)內(nèi)已經(jīng)成功構(gòu)建了木聚糖酶工程菌株,但是和國(guó)外相比有著一定的差距,對(duì)木聚糖酶的研究較晚,因此,對(duì)木聚糖酶工程菌的進(jìn)一步研究是有必要的。本研究通過分子生物學(xué)技術(shù)從桔青霉中克隆得到編碼木聚糖酶基因,將其在畢赤酵母GS115和大腸桿菌BL21進(jìn)行了表達(dá)研究,為木聚糖酶作為酶制劑應(yīng)用提供理論依據(jù)。

      1 材料與方法

      1.1 材料

      1.1.1 培養(yǎng)基 LB培養(yǎng)基參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》配制。酵母YPD培養(yǎng)基、選擇MD培養(yǎng)基、誘導(dǎo)表達(dá)BMGY和BMMY培養(yǎng)基均根據(jù)Invitrogen公司畢赤酵母表達(dá)操作手冊(cè)配制。

      1.1.2 菌株與質(zhì)粒 含有木聚糖酶的桔青霉菌株由筆者所在實(shí)驗(yàn)室篩選得到;克隆宿主菌EscherichiacoliDH5α、畢赤酵母菌GS115、大腸桿菌BL21為實(shí)驗(yàn)室保存。表達(dá)載體pPAL7購(gòu)自BIO-RAD公司;pPIC9K購(gòu)自Invitrogen公司。

      1.1.3 主要酶和試劑 試驗(yàn)所涉及限制性核酸內(nèi)切酶均購(gòu)自NEB公司;PGEM-Teasy購(gòu)自Promega公司;DNA回收、DNA純化和DNA提取試劑盒均購(gòu)自TaKaRa公司;DNA連接酶購(gòu)買自Promega公司;質(zhì)粒小量提取試劑盒購(gòu)自天根公司;氨芐青霉素購(gòu)自Sigma公司。其他試劑均為國(guó)產(chǎn)分析純。

      1.2 試驗(yàn)方法

      1.2.1 緩沖液配制 配制方法參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》。

      1.2.2 桔青霉CR-2的RNA提取 提取方法參照RNA提取試劑盒操作說明書。

      1.2.3 RNA反轉(zhuǎn)錄cDNA 操作過程參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》。

      1.2.4 木聚糖酶基因片段的擴(kuò)增 根據(jù)木聚糖酶基因cDNA序列設(shè)計(jì)引物,真核表達(dá)系統(tǒng)引物為P1:5′-TACGTAATGATTAAGTCTAA-3′;P2:5′-GAATTCTTACCA CACCGTTA-3′,下劃線分別為SnaBⅠ和EcoRⅠ酶切位點(diǎn)序列。原核表達(dá)系統(tǒng)引物為P1:5′-CGTCCATATGATTAAG TCTAAAAAG-3′;P2:5′-GAATTCTTACCACACCGTTA-3′,下劃線分別為NdeⅠ和EcoRⅠ酶切位點(diǎn)序列。擴(kuò)增反應(yīng)條件為94 ℃預(yù)變性5 min;94 ℃變性45 s,53 ℃退火45 s,72 ℃延伸2 min,30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸7 min。產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

      1.2.5 質(zhì)粒提取 提取方法參照質(zhì)粒小量提取試劑盒說明書。

      1.2.6 轉(zhuǎn)化大腸桿菌[4]

      1.2.7 酶切驗(yàn)證 酶切反應(yīng)體系(μL):Plasmid DNA 2 μL,10×enzyme Buffer 5 μL,SnaBⅠ 0.5 μL,EcoRⅠ 0.5 μL,補(bǔ)充dd H2O至20 μL。37 ℃過夜酶切(內(nèi)切酶相應(yīng)變化),酶切產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳鑒定。

      1.2.8 感受態(tài)制備 大腸桿菌DH5α和BL21感受態(tài)的制備參照文獻(xiàn)[5];酵母菌株GS115感受態(tài)的制備參照文獻(xiàn)[6]。

      1.2.9 超聲波破碎菌體 操作過程參照《分子克隆實(shí)驗(yàn)指南》。

      1.2.10 酵母的電擊轉(zhuǎn)化 將9 μg的線性化好的DNA片段溶解在12 μL去離子水中,與80 μL的感受態(tài)混勻,轉(zhuǎn)入電轉(zhuǎn)化杯中4~10 ms進(jìn)行電擊;電擊后,迅速加入1 mL 1 mol/L預(yù)冷的山梨醇溶液;電擊產(chǎn)物放置30 ℃恢復(fù)30 min,涂于MD平板上,每450 μL涂布1塊平板,將平板置于30 ℃培養(yǎng),直至單個(gè)菌落出現(xiàn)。

      1.2.11 表達(dá)質(zhì)粒載體的線性化 轉(zhuǎn)化前用ScaⅠ酶切,酶切體系(μL):pPIC9K-xyl80 μL,10×Buffer 20 μL,ScaI 10 μL,補(bǔ)加dd H2O至200 μL。

      1.2.12 真核表達(dá)載體的構(gòu)建 將連有xyl基因的克隆用LB液體培養(yǎng)基活化并提取質(zhì)粒。用SnaBⅠ和EcoRⅠ雙酶切質(zhì)粒與pPIC9K載體,回收xyl片段及載體大片段,將2個(gè)回收產(chǎn)物連接構(gòu)建表達(dá)載體pPIC9K-xyl,構(gòu)建過程如圖1。轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α,得到的轉(zhuǎn)化子用SnaBⅠ和EcoRⅠ雙酶切鑒定,鑒定正確的轉(zhuǎn)化子用于下一步試驗(yàn)。

      1.2.13 畢赤酵母的誘導(dǎo)表達(dá)試驗(yàn) 挑選陽性克隆于20 mL BMGY培養(yǎng)基搖瓶培養(yǎng),28~30 ℃培養(yǎng)至D600 nm為2~6,離心5 min收集菌體,用1/5原培養(yǎng)體積的BMMY重懸菌體;將菌液重新置于100 mL的搖瓶28~30 ℃搖床培養(yǎng);每隔 24 h 向培養(yǎng)基中添加無水甲醇至終濃度為1.0%;隔24 h取樣,128 000 r/min 離心5 min,收集上清,分析重組菌的活性。取樣時(shí)間一般為0、24、48、72、96、120 h。

      1.2.14 大腸桿菌的誘導(dǎo)表達(dá)試驗(yàn) 挑選正確的菌落,接入10 mL含100 mg/mL氨芐青霉素LB培養(yǎng)液中,37 ℃培養(yǎng)至D600 nm為0.2~0.6;取100 μL 樣品加入50 mL含100 mg/mL氨芐青霉素LB培養(yǎng)液中,37 ℃培養(yǎng)至D600 nm為0.2~0.6,加IPTG至終濃度0.8 mmol/L,37 ℃培養(yǎng),每2 h取樣,樣品超聲波破碎后分析其胞內(nèi)表達(dá)情況,利用SDS-PAGE等活性試驗(yàn)檢測(cè)與鑒定重組蛋白的表達(dá)。

      1.2.15 重組蛋白SDS-PAGE檢測(cè) 重組蛋白SDS-PAGE檢測(cè)操作步驟見參考文獻(xiàn)[7],蛋白電泳主要試劑配制方法見參考文獻(xiàn)[8-9]。

      1.2.16 木聚糖酶活性測(cè)定方法 配制10.0 mg/mL的木糖溶液:稱取無水木糖1.000 g,加入去離子水后定容至 100 mL。取8支試管按表1加入試劑,稀釋木糖標(biāo)準(zhǔn)液,再加入3 mL DNS試劑;充分搖勻置于沸水中煮5 min;流動(dòng)冷水冷卻后,將顯色液以4 000 r/min離心5 min。取上清液,用0號(hào)試管作對(duì)照,在540 nm下測(cè)其他試液的吸光度D540 nm。以吸光度為縱坐標(biāo),以木糖濃度為橫坐標(biāo)繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線。

      木聚糖酶活性測(cè)定方法:取3支試管各加0.5 mL中性木聚糖底物,與待測(cè)酶液一起在50 ℃水浴中預(yù)熱5 min。在第1、2試管中加入0.5 mL待測(cè)酶液,50 ℃水浴中反應(yīng)15 min。加入3 mL的DNS試劑,在第3支試管中加入0.5 mL的待測(cè)酶液,沸水浴5 min。將顯色液(包括空白)以4 000 r/min離心5 min。取上清夜以第3支試管為對(duì)照在540 nm條件下測(cè)第1、 2試管樣的吸光度D540 nm。吸光度以在0.2~0.3為宜,若不在此范圍可改變稀釋倍數(shù)重做。

      表1 酶活性測(cè)量用木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線溶液配制

      酶活性的計(jì)算:酶活性(IU/mL或IU/g)=木聚糖等量值÷150÷15÷0.5×n。

      式中:150指木糖從微克量換算成微克分子數(shù);15指待測(cè)液與底物的反應(yīng)時(shí)間;0.5指與底物反應(yīng)的待測(cè)酶液量;n指原酶液(或固體原酶)的稀釋倍數(shù)

      2 結(jié)果與分析

      2.1 目的基因的片段克隆結(jié)果

      PCR產(chǎn)物電泳鑒定結(jié)果表明,在636 bp的位置有一明顯條帶,與公布的基因片段大小相一致(圖2)?;厥諗U(kuò)增片段連接pGEM-Teasy測(cè)序,所測(cè)序列與GenBank中報(bào)道的木聚糖酶基因序列同源性為99.99%,編碼212個(gè)氨基酸。將所得到的木聚糖酶基因作原核表達(dá)和真核系統(tǒng)表達(dá),重組質(zhì)粒pGEM-xyl經(jīng)SnaBⅠ和EcoRⅠ(真核表達(dá))、NdeⅠ和EcoRⅠ(原核表達(dá))雙酶切驗(yàn)證,酶切后電泳鑒定出2條帶:一條帶為636 bp,與PCR產(chǎn)物帶相同;另一條帶為3 000 bp,與載體pEGM-Teasy的條帶大小一致(2個(gè)圖大小相一致,以真核表達(dá)系統(tǒng)酶切圖為例,圖3)。結(jié)果表明,初步獲得了木聚糖酶編碼基因xyl。

      2.2 表達(dá)載體的構(gòu)建

      原核表達(dá)載體(pPAL7)和真核表達(dá)載體(pPIC9K)的構(gòu)建方法一致,同時(shí)雙酶切載體質(zhì)粒和pGEM-xyl陽性轉(zhuǎn)化子質(zhì)粒,酶切產(chǎn)物同時(shí)回收,回收產(chǎn)物和表達(dá)載體過夜酶連,連接后轉(zhuǎn)化大腸桿菌DH5α;重組子經(jīng)雙酶切驗(yàn)證,在真核表達(dá)載體中,質(zhì)粒經(jīng)SnaBⅠ和EcoRⅠ雙酶切電泳檢測(cè)如圖4所示,在636、9 000 bp有2條明顯的條帶,分別與擴(kuò)增產(chǎn)物和載體大小相一致;在原核表達(dá)系統(tǒng)中,重組子質(zhì)粒經(jīng)NdeⅠ和EcoRⅠ雙酶切電泳檢測(cè),在636、5 641 bp處有2條與預(yù)期大小相一致的條帶(圖5),初步表明,該重組子含有木聚糖酶編碼基因。驗(yàn)證正確的質(zhì)粒分別轉(zhuǎn)化大腸桿菌BL21和酵母GS115進(jìn)行誘導(dǎo)表達(dá)試驗(yàn)。

      2.3 木糖酶在原核系統(tǒng)和真核系統(tǒng)中的表達(dá)分析

      2.3.1 SDS-PAGE分析(原核表達(dá)系統(tǒng)) 用IPTG對(duì)重組菌進(jìn)行不同時(shí)間的誘導(dǎo),表達(dá)產(chǎn)物進(jìn)行SDS-PAGE電泳分析,在22 ku處呈現(xiàn)表達(dá)蛋白條帶,與理論蛋白大小相一致(圖6),根據(jù)誘導(dǎo)時(shí)間與表達(dá)量的關(guān)系,37 ℃條件下誘導(dǎo)6 h蛋白表達(dá)量最高。

      2.3.2 木糖標(biāo)準(zhǔn)曲線 由圖7可知,標(biāo)準(zhǔn)曲線方程為y=0.005 4x-1.077 6(x軸為木糖濃度,y軸為D540 nm),根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)方程可以計(jì)算出還原糖濃度,根據(jù)木聚糖酶酶活性計(jì)算公式求出酶活性,酶活性單位為IU/mL。

      2.3.3 木聚糖酶基因在原核系統(tǒng)中的表達(dá) 在原核表達(dá)系統(tǒng)中,重組子經(jīng)IPTG誘導(dǎo),每隔2 h取樣,測(cè)定其酶活性(圖8),誘導(dǎo)6 h時(shí)酶活性最高,達(dá)到2.07 IU/mL。

      2.3.4 木聚糖酶基因在真核系統(tǒng)中的表達(dá) 在真核表達(dá)系統(tǒng)中,重組子經(jīng)甲醇誘導(dǎo),每間隔24 h取樣,測(cè)定其酶活性,誘導(dǎo)96 h時(shí)酶活性最高,達(dá)到23.84 IU/mL(圖9)。

      2.3.5 木聚糖酶基因氨基酸保守序列分析 根據(jù)NCBI比對(duì)木聚糖酶氨基酸的保守序列分析,該酶屬于11家族糖基水解酶,保守序列有28~211個(gè)氨基酸序列,與許多菌種的氨基酸保守序列同源性很高(圖10)。

      3 小結(jié)

      根據(jù)已經(jīng)報(bào)道的桔青霉菌中木聚糖酶基因的同源序列設(shè)計(jì)引物,提取桔青霉的RNA,通過RT-PCR擴(kuò)增得到木聚糖酶的編碼基因xyl,結(jié)果進(jìn)行比對(duì)分析,閱讀框編碼212個(gè)氨基酸,表達(dá)蛋白分子量大小為22 ku。

      木聚糖酶的表達(dá)活性分析中,同時(shí)測(cè)定了在原核系統(tǒng)和真核系統(tǒng)中酶的表達(dá)量,發(fā)現(xiàn)木聚糖酶在真核表達(dá)系統(tǒng)中的酶活性(23.84 IU/mL)遠(yuǎn)遠(yuǎn)要高于原核表達(dá)系統(tǒng)中的酶活性(2.07 IU/mL),推測(cè)可能原因?yàn)樵摶騺碓从谡婧松铮栽谡婧讼到y(tǒng)中更容易實(shí)現(xiàn)表達(dá)。本試驗(yàn)研究木聚糖酶基因的克隆與表達(dá),該工程菌在沒有對(duì)載體和基因改造的情況下,對(duì)產(chǎn)酶條件未進(jìn)行優(yōu)化,表達(dá)量不是很高。本研究側(cè)重克隆表達(dá),后續(xù)的研究中可通過對(duì)該基因和載體進(jìn)行改造、優(yōu)化其產(chǎn)酶條件來提高酶的活性。

      參考文獻(xiàn):

      [1]楊夢(mèng)華,李 穎,關(guān)國(guó)華,等. 極端耐熱木聚糖酶基因在大腸桿菌和畢赤酵母中的高效表達(dá)[J]. 微生物學(xué)報(bào),2005,45(2):236-239.

      [2]張桂敏,饒 犇,葉 戔,等. 棉花黃萎病真菌Verticilliumdahliae木聚糖酶基因的克隆、表達(dá)和酶學(xué)性質(zhì)分析[J]. 微生物學(xué)報(bào),2008(6):765-771.

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      [4]楊立泉,馬春曉,戴曉軍,等. 一個(gè)新的葡萄糖淀粉酶基因在大腸桿菌中的分泌表達(dá)[J]. 生物學(xué)通報(bào),2007,42(3):55-57.

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