汪最 孔令嚴(yán) 邵華斌 盧琴 羅青平 楊玉瑩
摘要:為了研究多殺性巴氏桿菌(Pasteurella multocida,Pm)對鏈霉素(Streptomycin,Str)藥物敏感性變化及其耐藥機(jī)制,采用體外誘導(dǎo)法對禽源Pm親本敏感株(C48-1)進(jìn)行誘導(dǎo)后成功獲得Str耐藥株,并對Str耐藥株的最小抑菌濃度(MIC)、生化特性、生長曲線、耐藥穩(wěn)定性、耐藥基因點(diǎn)突變以及耐藥逆轉(zhuǎn)性進(jìn)行了研究。結(jié)果表明,與親本株相比,Str耐藥株生化特性與生長曲線無顯著差異,MIC值由8 μg/mL上升至1 024 μg/mL;發(fā)現(xiàn)耐藥基因StrA、StrB,且核糖體基因rpsL編碼的氨基酸發(fā)生了Lys43→Thr突變;耐藥逆轉(zhuǎn)性試驗(yàn)中羰基氰氯苯腙(CCCP)將Str耐藥株MIC值降為16 μg/mL。逐步遞增藥物濃度可以誘導(dǎo)禽源Pm對氨基糖苷類藥物的耐藥性,其耐藥機(jī)理為磷酸轉(zhuǎn)移酶類對氨基糖苷類抗生素結(jié)構(gòu)的修飾作用,核糖體靶位點(diǎn)突變和外排泵的過量表達(dá)。
關(guān)鍵詞:禽源多殺性巴氏桿菌;體外誘導(dǎo);鏈霉素;耐藥基因;位點(diǎn)突變;耐藥機(jī)制
中圖分類號:S852.61+5 文獻(xiàn)標(biāo)識碼:A 文章編號:0439-8114(2018)08-0096-04
DOI:10.14088/j.cnki.issn0439-8114.2018.08.024
Characterization of Sreptomycin-resistant Avian Pasteurella multocida in Vitro Induction and Preliminary Analysis of Resistance Mechanism
WANG Zui1,2,KONG Ling-yan2,SHAO Hua-bin2,LU Qin2,LUO Qing-ping2,YANG Yu-ying1
(1.College of Animal Sciences,Yangtze University,Jingzhou 434025,Hubei,China;2.Institute of Animal Husbandry and Veterinary,Hubei Academy of Agricultural Sciences/Key Laboratory of Prevention and Control Agents for Animal Bacteriosis(Ministry of Agriculture),
Wuhan 430064,China)
Abstract: In order to study the drug susceptibility to sreptomycin(Str) and its drug resisitance mechanism of avian Pasteurella multocida(Pm),a Str-resistant avian Pm was obtained via in vitro induction with gradually increasing drug concentrations to the standard strain named C48-1. The minimal inhibitory concentration(MIC),biochemical characteristics, growth curve,stability of drug resistance,drug resistance gene site mutation and drug resistance reversal of the Str-resistant strain was analyzed. The results showed that compared with the parent strain, the biochemical characteristics and growth curve had no significant difference,the MIC of the Str-resistant strain was increased from 8 μg/mL to 1 024 μg/mL. What more,the drug resistance gene StrA and StrB were found and the amino acid sequence encoded by the rpsL gene had an amino acid exchange of Lys43→Thr. In the drug resistance reversal test, carbonyl cyanide-m-chlorophenylhydrazone (CCCP) reduced the MIC of the Str-resistant strain to 16 μg/mL. In total,it shows that gradually increasing drug concentration can induce Pm resistance to aminoglycosides in vitro. Its mechanism is the modification of aminoglycoside antibiotics by phospho-transferase,the mutation of ribosomal protein and the over expression of efflux pumps.
Key words: avian Pasteurella multocida; in vitro induction; sreptomycin; drug resistance gene; site mutation; resistance mechanism
禽源多殺性巴氏桿菌(Pasteurella multocida,Pm)是引起禽霍亂的致病菌,該病屬于急性、熱性、高致病性傳染病[1]。在中國引起禽霍亂的病原菌主要是莢膜血清A型Pm[2]。目前對于該病的控制措施,主要采用藥物防治,尤其是抗生素如鏈霉素、磺胺嘧啶等效果較好,但耐藥菌株的出現(xiàn)對該病的防控帶來了嚴(yán)峻挑戰(zhàn)[3]。
氨基糖苷類藥物屬于最早投入臨床使用的抗菌藥物之一,由于長期、頻繁、大劑量使用,近年來臨床分離出的Pm對氨基糖苷類藥物出現(xiàn)普遍耐藥現(xiàn)象,部分分離株對Str等氨基糖苷類藥物已達(dá)到了高度耐藥[4]。已有研究表明,細(xì)菌對氨基糖苷類藥物耐藥機(jī)制主要分為核糖體靶位修飾或點(diǎn)突變、氨基糖苷類抗生素修飾酶的修飾作用和外排泵的外排作用[5]。而目前公認(rèn)的Pm耐氨基糖苷類藥物的主要機(jī)制是其質(zhì)?;蛉旧w上攜帶多種氨基糖苷類鈍化酶基因[6],其他耐藥機(jī)制的研究較少。
為研究多殺性巴氏桿菌對氨基糖苷類藥物的耐藥機(jī)制,本試驗(yàn)以禽源多殺性巴氏桿菌代表株C48-1為研究對象,應(yīng)用體外誘導(dǎo)法誘導(dǎo)出Str耐藥株,并對其耐藥基因、核糖體靶位突變以及耐藥逆轉(zhuǎn)性進(jìn)行了分析,旨在為后續(xù)耐藥機(jī)制的研究提供參考。
1 材料與方法
1.1 菌株
大腸桿菌ATCC25922,購自廣州環(huán)凱微生物有限公司;禽巴氏桿菌C48-1株,購自中國獸藥監(jiān)察所。
1.2 主要試劑
鏈霉素、CCCP、利血平、奧美拉唑、維拉帕米,購自索萊寶公司;麥?zhǔn)媳葷峁?、生化試劑管,購自廣州環(huán)凱微生物有限公司;Taq酶等PCR試劑,購自諾唯贊公司;MH、TSA、TSB培養(yǎng)基,購自美國BD公司。
1.3 方法
1.3.1 MIC值的測定 參照美國臨床檢驗(yàn)標(biāo)準(zhǔn)委員會(CLSI)[7]推薦的微量稀釋法檢測鏈霉素對親本株C48-1的MIC值,以大腸桿菌ATCC25922作為質(zhì)控菌。培養(yǎng)物置于37 ℃恒溫箱中培養(yǎng)18 h后觀察結(jié)果。
1.3.2 巴氏桿菌耐藥株的體外誘導(dǎo) 采用體外誘導(dǎo)法增加藥物濃度誘導(dǎo)標(biāo)準(zhǔn)菌株C48-1對鏈霉素產(chǎn)生耐藥性。將菌株在含有1/2 MIC抗生素的TSA培養(yǎng)基中傳代培養(yǎng),每3 d轉(zhuǎn)接1次,每周檢測1次MIC值,同步設(shè)質(zhì)控菌ATCC25922作為平行對照,以保證試驗(yàn)的可靠性。以CLSI的臨界濃度(Break point)作為耐藥判斷標(biāo)準(zhǔn),鏈霉素耐藥為不低于64 μg/mL。為保證菌株沒有污染,每代都利用PCR技術(shù)檢測誘導(dǎo)菌株是否為巴氏桿菌。
1.3.3 巴氏桿菌耐藥株的穩(wěn)定性檢測
1)誘導(dǎo)株的MIC值穩(wěn)定性檢測。將誘導(dǎo)獲得的鏈霉素耐藥株轉(zhuǎn)接于無抗性的TSA培養(yǎng)基中培養(yǎng),每天轉(zhuǎn)接1次,連續(xù)傳代20代后檢測MIC值,以判斷StrR耐藥性的穩(wěn)定性。
2)生理生化特性檢測。對培養(yǎng)的鏈霉素耐藥株和親本株單個菌落進(jìn)行葡萄糖、蔗糖、甘露醇、半乳糖、麥芽糖、乳糖、鼠李糖、木糖、甲基紅、阿拉伯糖、山梨醇、衛(wèi)矛醇、明膠酶、氧化酶、硝酸鹽還原、尿素、V-P、吲哚等生化試驗(yàn),觀察其生理生化特性。
3)誘導(dǎo)株及其親本株生長曲線測定。分別接種鏈霉素耐藥株和親本株的單個菌落于TSB液體培養(yǎng)基中,37 ℃恒溫振蕩培養(yǎng)至對數(shù)生長期(約3×108 CFU/mL),調(diào)節(jié)菌液的起始OD600 nm值一致,吸取100 μL菌液轉(zhuǎn)接于100 mL TSB培養(yǎng)中,37 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)。每隔1 h取樣100 μL,在分光光度計(jì)上測定OD600 nm值,記錄結(jié)果。以時間為橫坐標(biāo),OD600 nm值為縱坐標(biāo),繪制各菌株的生長曲線。
1.3.4 耐藥株耐藥相關(guān)基因檢測 根據(jù)GenBank現(xiàn)有文獻(xiàn)檢索Pm相應(yīng)的氨基糖苷類藥物耐藥相關(guān)基因,對耐藥菌株的耐藥相關(guān)基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增,并送至生工生物工程(上海)股份有限公司進(jìn)行測序,檢測耐藥相關(guān)基因序列是否正確以及是否發(fā)生靶位突變。氨基糖苷類藥物相關(guān)耐藥基因及引物序列見表1。
1.3.5 逆轉(zhuǎn)性耐藥試驗(yàn) 利用瓊脂二倍稀釋法測定CCCP、利血平、奧美拉唑、維拉帕米對鏈霉素耐藥株的最小抑菌濃度,然后以1/4 MIC的CCCP、利血平、奧美拉唑、維拉帕米溶液加入含有各濃度梯度的鏈霉素平皿內(nèi)(不含鏈霉素的平皿為對照)。檢測CCCP、利血平、奧美拉唑、維拉帕米對受試菌鏈霉素MIC值影響。
2 結(jié)果與分析
2.1 巴氏桿菌耐藥株的體外誘導(dǎo)
采用體外逐步誘導(dǎo)法構(gòu)建出Str的誘導(dǎo)耐藥菌株,標(biāo)記為StrR,依據(jù)CLSI標(biāo)準(zhǔn)對親本株C48-1和誘導(dǎo)株StrR的MIC值進(jìn)行測定,結(jié)果見表2。C48-1的MIC值為8 μg/mL;StrR的MIC值為1 024 μg/mL,是親本株的128倍,為高度耐藥。利用Pm的特異性引物對StrR菌株進(jìn)行PCR檢測,得到明亮的目的條帶,表明獲得了高度耐藥的Pm鏈霉素耐藥菌株。
2.2 巴氏桿菌耐藥株的穩(wěn)定性檢測
將誘導(dǎo)獲得的耐藥株連續(xù)傳20代后檢測MIC值,其MIC值保持為1 024 μg/mL,表明成功獲得了穩(wěn)定的Pm鏈霉素耐藥菌株。對誘導(dǎo)株和親本株分別進(jìn)行生化特性檢測,結(jié)果見表3,誘導(dǎo)株和親本株在生理生化特性上無差異,誘導(dǎo)株和親本株生長曲線見圖1,總體上誘導(dǎo)株與親本株無較大差異,誘導(dǎo)株達(dá)到對數(shù)生長期的時間稍微延遲,這可能是誘導(dǎo)株在鏈霉素誘導(dǎo)過程中為了更好地適應(yīng)藥物環(huán)境,從而放緩了生長速率。
2.3 耐藥株耐藥相關(guān)基因檢測
對耐藥株StrR耐藥相關(guān)基因進(jìn)行PCR檢測見圖2,成功擴(kuò)增出了磷酸轉(zhuǎn)移酶類的StrA、StrB基因,核糖體30 s亞基上的rpsE、rpsL和rrs基因,而腺嘌呤轉(zhuǎn)移酶類AadB、AadA25、AadA14、AadA1基因和乙酰轉(zhuǎn)移酶類AacA4基因均未擴(kuò)增出條帶。將擴(kuò)增的StrA、StrB、rpsE、rpsL和rrs基因全長測序后與親本株比對發(fā)現(xiàn),StrA、StrB、rpsE和rrs基因均未發(fā)生突變,只有rpsL基因在第128個堿基發(fā)生了突變由(A→C),從而使相應(yīng)的第43位氨基酸也發(fā)生了突變(Lys43→Thr),由于在所有的不同程度耐藥的誘導(dǎo)菌株中該位點(diǎn)都發(fā)生了突變(圖3),可以確定該位點(diǎn)突變不是導(dǎo)致高度耐藥的主要因素。
2.4 逆轉(zhuǎn)性耐藥試驗(yàn)結(jié)果
通過瓊脂二倍稀釋法測得CCCP、利血平、奧美拉唑、維拉帕米對鏈霉素耐藥株的MIC值分別為20、40、60、60 μg/mL。1/4MIC CCCP溶液導(dǎo)致耐藥株的MIC值顯著下降,鏈霉素MIC值從初始的1 024 μg/mL降低為16 μg/mL(臨界值為64 μg/mL),而利血平、奧美拉唑、維拉帕米對耐藥株MIC值并無明顯影響(表4),說明受試菌在外排泵抑制劑CCCP的作用下發(fā)生了鏈霉素耐藥性的逆轉(zhuǎn)。
3 小結(jié)與討論
氨基糖苷類抗生素因其對禽巴氏桿菌有良好滅殺作用而被廣泛應(yīng)用,但耐藥性問題也日趨嚴(yán)重。對于Pm氨基糖苷類抗生素耐藥機(jī)制,國內(nèi)外主要集中于檢測分離株是否在質(zhì)?;蚧蚪M上攜帶StrA、StrB等耐藥基因,而對核糖體靶位突變和外排泵的過量表達(dá)等耐藥機(jī)制研究較少。
為了研究Pm氨基糖苷類抗生素耐藥機(jī)制,本試驗(yàn)采用體外逐步誘導(dǎo)法成功誘導(dǎo)出Pm的Str高度耐藥菌株,MIC值達(dá)到1 024 μg/mL,其生物學(xué)特性與親本株表現(xiàn)一致,耐藥性也穩(wěn)定存在。磷酸轉(zhuǎn)移酶、腺苷酰轉(zhuǎn)移酶和乙?;D(zhuǎn)移酶類屬于氨基糖苷類抗生素修飾酶,是介導(dǎo)氨基糖苷類耐藥最為廣泛的途徑[8]。本試驗(yàn)對Str耐藥株所攜帶耐藥基因進(jìn)行PCR檢測,只發(fā)現(xiàn)了磷酸轉(zhuǎn)移酶類的StrA、StrB基因,該類基因可以對氨基糖苷類抗生素上的磷酸鹽基團(tuán)進(jìn)行催化轉(zhuǎn)移[9],使其無法作用于細(xì)菌產(chǎn)生耐藥性。金天明等[10]發(fā)現(xiàn)臨床分離的禽源Pm鏈霉素耐藥株均在StrA基因編碼的第204位氨基酸處存在突變,這可能是介導(dǎo)鏈霉素耐藥的主要因素,而本研究并未發(fā)現(xiàn)StrA、StrB有突變發(fā)生。有研究表明,rpsL基因編碼的核糖體蛋白S12和rrs基因編碼的16S rRNA構(gòu)成了核糖體的蛋白質(zhì)合成中心,也是鏈霉素主要的作用靶點(diǎn)[11],rpsE基因編碼的核糖體蛋白S5突變能夠介導(dǎo)細(xì)菌對氨基糖苷類抗生素耐藥[12],所以rpsL、rrs和rpsE基因突變會導(dǎo)致鏈霉素耐藥。通過對誘導(dǎo)株rpsL、rrs、rpsE基因全長測序,發(fā)現(xiàn)rrs和rpsE基因沒有發(fā)生突變,所以誘導(dǎo)株鏈霉素耐藥與rpsE和rrs基因突變無關(guān)。而rpsL基因發(fā)生了Lys43→Thr突變,該位點(diǎn)是結(jié)核分枝桿菌鏈霉素耐藥株中最常見的突變位點(diǎn),在結(jié)核分枝桿菌鏈霉素耐藥中起主要作用[13]。由于在不同敏感程度誘導(dǎo)株中均發(fā)生了Lys43→Thr突變,說明該位點(diǎn)突變確實(shí)與Pm鏈霉素耐藥相關(guān),但并不是Pm鏈霉素高度耐藥的原因。逆轉(zhuǎn)性耐藥試驗(yàn)中,外排泵抑制劑CCCP對誘導(dǎo)株鏈霉素耐藥產(chǎn)生了顯著逆轉(zhuǎn)效果,誘導(dǎo)株MIC值由1 024 μg/mL降為16 μg/mL。作為實(shí)驗(yàn)室最常用的外排泵抑制藥物,CCCP通過損耗細(xì)胞膜的質(zhì)子動力來阻斷外排泵能量來源,從而影響藥物的外排[14],但CCCP是非特異性外排泵抑制劑,能抑制主動外排作用卻不能確定外排泵的種類[15],具體是對哪種或哪幾種外排泵起作用,還有待進(jìn)一步研究。通過CCCP耐藥逆轉(zhuǎn)效果,可以看出外排泵過量表達(dá)是誘導(dǎo)株鏈霉素高度耐藥的原因。所以,誘導(dǎo)株耐藥機(jī)理為磷酸轉(zhuǎn)移酶類對氨基糖苷類抗生素結(jié)構(gòu)的修飾作用,核糖體靶位點(diǎn)突變以及外排泵的過量表達(dá)。
本研究初步分析了耐藥株中可能存的耐藥機(jī)制,后續(xù)將利用RNA-Seq技術(shù)對誘導(dǎo)耐藥株進(jìn)行轉(zhuǎn)錄組分析,以期發(fā)現(xiàn)其他耐藥機(jī)制,為防止耐藥性的產(chǎn)生和研制新藥提供理論依據(jù)。
參考文獻(xiàn):
[1] 羅青平,王紅琳,張蓉蓉,等.限鐵培養(yǎng)禽巴氏桿菌制備滅活疫苗及其免疫效果分析[J].中國家禽,2016(21):51-53.
[2] 林志敏,林彬彬,程龍飛.禽源多殺性巴氏桿菌耐藥性及其質(zhì)粒多樣性的研究[J].福建農(nóng)業(yè)學(xué)報,2015,30(7):648-651.
[3] SAN M A,ESCUDERO J A,GUTIERREZ B,et al.Multiresistance in pasteurella multocida is mediated by coexistence of small plasmids[J].Antimicrob Agents Chemother,2009,53:3399-3404.
[4] 孔令聰,戰(zhàn) 利,趙 晴,等.動物源多殺性巴氏桿菌耐藥性及耐藥機(jī)制研究進(jìn)展[J].中國獸藥雜志,2012,46(3):52-55.
[5] 王 梓,孔令聰,賈博巖,等.氨基糖苷類抗生素耐藥機(jī)制研究進(jìn)展[J].中國獸藥雜志,2015(3):65-69.
[6] 王 梓.牛莢膜血清A型巴氏桿菌氨基糖苷類抗生素耐藥性研究[D].長春:吉林農(nóng)業(yè)大學(xué),2016.
[7] CLINICAL AND LABORATORY STANDARDS INSTITUTE. Performance Standards for Antimicrobial Diskand Dilution Susceptibility Tests for Bacteria Isolated from Animals; Approved Standard[M].3rded. Wayne,USA:CLSI,2008.
[8] 顧覺奮,楊曉兵.細(xì)菌對氨基糖苷類抗生素耐藥機(jī)制研究進(jìn)展[J].藥物生物技術(shù),2001(3):174-177.
[9] MARIA S,MARCELO E,TOLMASKY T. Aminoglycoside modifying enzymes[J].Drug Resistance Updates,2010,13:151-171.
[10] 金天明,高 豐,佟慶彬,等.巴氏桿菌對鏈霉素和磺胺耐藥機(jī)制的研究[J].畜牧與獸醫(yī),2007(2):5-7.
[11] BAUSKENIEKS M,POLE I,SKENDERS G,et al. Genotypic and phenotypic characteristics of aminoglycoside resistant Mycobacterium tuberculosis isolates in Latvia[J].Diagnostic Microbiology & Infectious Disease,2015,81(3):177-182.
[12] GALIMAND M,GERBAUD G,COURVALIN P. Spectinomycin resistance in Neisseria spp. due to mutations in 16S rRNA[J].Antimicrobial Agents & Chemotherapy,2000,44(5):1365-1366.
[13] 楊彩虹,曹旭東,史靜雪,等.結(jié)核分枝桿菌臨床分離株鏈霉素耐藥性的檢測及耐藥基因突變位點(diǎn)分析[J].石河子大學(xué)學(xué)報,2017,35(2):169-175.
[14] 王二兵,馬淑濤.藥物耐藥性外排泵抑制劑的研究進(jìn)展[J].中國藥物化學(xué)雜志,2005,15(3):188-192.
[15] 王 悅,宋詩鐸,王玉寶.22株多重耐藥鮑曼不動桿菌臨床株的外排泵AdeABC和AdeIJK的表達(dá)研究[J].中國抗生素雜志,2009,34(5):304-308.