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      基于雙殼貝類的多環(huán)芳烴生物標(biāo)志物檢測(cè)技術(shù)的研究

      2018-08-24 07:15:26卓藝蓉
      漁業(yè)研究 2018年4期
      關(guān)鍵詞:蛤仔染毒菲律賓

      卓藝蓉

      (平潭綜合實(shí)驗(yàn)區(qū)海洋與漁業(yè)執(zhí)法支隊(duì),福建 平潭 350400)

      多環(huán)芳烴(PAHs)主要來(lái)源于有機(jī)物的熱解或不完全燃燒,是最早被發(fā)現(xiàn)和研究的致癌類化合物之一,其中以苯并(a)芘{B[a]P}最具代表性,該污染物會(huì)對(duì)海洋生物產(chǎn)生嚴(yán)重危害[1-2]。隨著海上石油和輪船運(yùn)輸業(yè)的發(fā)展,我國(guó)海洋PAHs的污染日益加重,如青島膠州灣近岸海水和表層沉積物中的PAHs的含量分別為8.23~272.03 ng/L、82~4 562 ng/g,達(dá)到或接近中等污染水平[3]。目前我國(guó)許多沿海城市已將石化、造船、港口等產(chǎn)業(yè)集群作為優(yōu)先發(fā)展的支柱產(chǎn)業(yè),這些都可能成為持久性有害物質(zhì)(PTS)的潛在污染源,必將對(duì)我國(guó)近海生態(tài)環(huán)境安全和人類健康帶來(lái)潛在的風(fēng)險(xiǎn)。

      已有研究表明PAHs進(jìn)入生物體后首先與芳烴受體(AhR)結(jié)合,之后經(jīng)過(guò)細(xì)胞色素P450酶系(CYP450s)如芳烴羥化酶(AHH)等代謝轉(zhuǎn)化為更具極性的Ⅰ相代謝中間產(chǎn)物,這些代謝產(chǎn)物在Ⅱ相代謝酶的催化下進(jìn)一步與內(nèi)源物質(zhì)分子結(jié)合,加快了代謝產(chǎn)物排出體外的速度[4]。另一方面在解毒代謝過(guò)程中產(chǎn)生大量的活性中間產(chǎn)物和自由基,在一定范圍內(nèi),這些自由基能被體內(nèi)抗氧化防御系統(tǒng)如超氧化物歧化酶(SOD)等清除,當(dāng)抗氧化防御系統(tǒng)不能消除這些活性氧時(shí),會(huì)造成DNA損傷等毒性效應(yīng)[5]。呂晏鋒等[6]的研究結(jié)果表明多環(huán)芳烴類污染物中的菲鯉魚的亞急性毒性作用顯著;崔培等[7]通過(guò)研究萘暴露下牙鲆肝臟抗氧化防御系統(tǒng)相關(guān)指標(biāo)的變化,發(fā)現(xiàn)SOD、CAT及LZM的響應(yīng)較AKP更為敏感。目前這些研究主要集中在哺乳動(dòng)物和魚類中,有關(guān)貝類方面的研究較少[8-12],而PAHs對(duì)菲律賓蛤仔分子生物標(biāo)志物的研究報(bào)道也較少。本文擬研究B[a]P對(duì)菲律賓蛤仔消化盲囊和鰓絲毒理學(xué)指標(biāo)的影響及DNA損傷效應(yīng),探討PAHs對(duì)菲律賓蛤仔的致毒機(jī)理,全面篩選用于PAHs毒性評(píng)定的生物標(biāo)志物,為我國(guó)近海PAHs污染評(píng)價(jià)與監(jiān)測(cè)提供理論依據(jù)和技術(shù)支撐。

      1 材料與方法

      1.1 實(shí)驗(yàn)材料

      實(shí)驗(yàn)用菲律賓蛤仔購(gòu)于青島南山水產(chǎn)品市場(chǎng),在30 cm×40 cm×50 cm的塑料水槽中暫養(yǎng)10 d,海水鹽度31,pH為8.1,溫度為15℃,連續(xù)充氣,日換水100%,養(yǎng)殖密度為300~400個(gè)/m3,并在換水后投喂螺旋藻粉,日投餌量6 g/m3。

      1.2 實(shí)驗(yàn)方法

      1.2.1 實(shí)驗(yàn)梯度的設(shè)置

      通過(guò)HPLC測(cè)定,青島近海海域自然海水中B[a]P的濃度為0.155 ng/L,實(shí)驗(yàn)中各濃度梯度的設(shè)置主要依據(jù)是污染水體中PAHs的濃度可能達(dá)到50.0 μg/L,而深?;蛭次廴舅蛑蠵AHs含量一般低于1 μg/L[13],實(shí)驗(yàn)采用Sigma公司生產(chǎn)的B[a]P。首先將B[a]P溶解于一定量的3 μg/L丙酮(助溶劑)中,制備一定濃度的儲(chǔ)備液,再分別用自然海水配制濃度梯度為0、0.01、0.2 μg/L B[a]P實(shí)驗(yàn)組,分別以未添加PAHs和只加入3 μg/L丙酮的自然海水處理組作為實(shí)驗(yàn)對(duì)照組,所有實(shí)驗(yàn)梯度均設(shè)3個(gè)平行組,各處理組丙酮維持相同濃度。

      各實(shí)驗(yàn)組分別用50 cm×40 cm×30 cm的塑料水槽盛放,從暫養(yǎng)的菲律賓蛤仔中挑選健康、活力強(qiáng)的菲律賓蛤仔放置于每個(gè)水槽中,每個(gè)水槽分別放置36只,實(shí)驗(yàn)期間的養(yǎng)殖管理與暫養(yǎng)期間完全相同,換水時(shí)分別加入相應(yīng)各實(shí)驗(yàn)梯度的養(yǎng)殖用水,實(shí)驗(yàn)期間菲律賓蛤仔無(wú)死亡現(xiàn)象。實(shí)驗(yàn)開始后于0、1、3、6、10 d取樣。取樣時(shí),每個(gè)梯度各水槽隨機(jī)選取6只菲律賓蛤仔,取鰓絲和消化盲囊于-80℃冰箱內(nèi)保存,用于各實(shí)驗(yàn)指標(biāo)的測(cè)定。

      1.2.2 樣品制備

      酶液的制備:分別將菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊樣品約100 mg。置于pH=7.6 預(yù)冷的緩沖液(Tris20 mmol/L、蔗糖0.5 mol/L、KCl 0.15 mol/L、EDTA 1 mmol/L、10%甘油),在冰浴中勻漿3 min,轉(zhuǎn)速為12 000 r/min,然后將勻漿液離心25 min,轉(zhuǎn)速為3 000 r/min,所得上清液即為酶液。

      DNA提取:取菲律賓蛤仔鰓和消化盲囊各0.5 g,研磨剪碎后分裝,加入0.45 mL裂解緩沖液(50 mmoL/L Tris、100 mmoL/L EDTA、pH 8.0)和 80 μL 10%SDS。再加入2.5~5.0 μL(一般3 μL)蛋白酶K(20 mg/mL),使其終濃度達(dá)100 μg/mL,混勻。55℃水浴3 h至過(guò)夜。樣品中加入150 μL飽和NaCl,室溫13 000 rpm離心20 min(T=15℃),去沉淀。配制PCI抽提液,加入等體積苯酚抽提,輕輕混勻,靜止5 min。4℃、13 000 rmp離心10 min。將上層水相移入小離心管中,用PCI抽提液(苯酚∶氯仿異∶戊醇=24∶25∶1)重復(fù)抽提2次。加二倍體積(約0.5 mL)無(wú)水乙醇和1/10體積(150 μL)醋酸鈉(3 mol/L,pH 5.2)。在-20℃冰箱中放置3 h至過(guò)夜,13 000 rmp離心15 min,棄去表面相。最后用500 μL 70%乙醇洗滌2次,干燥,溶于600 μL TE(10 mmol/L Tris、1 mmol/L EDTA)中。

      1.2.3 解毒代謝酶活力的測(cè)定

      芳烴羥化酶(AHH)活性的測(cè)定參照Walton(1978)[14]的方法:取170 μL 酶液,加入10 μL NADPH,200 μL Tris-HCl(0.1 mmol/L,pH 7.6,含MgCl2)緩沖液;放到30℃水浴鍋中預(yù)培養(yǎng)2 min,加入20 μL(2.5 mg/mL)PPO起始反應(yīng),反應(yīng)液培養(yǎng)30 min;加入1 mL預(yù)冷丙酮終止反應(yīng);加3.25 mL正己烷萃取。吸出2 mL有機(jī)相,用5 mL水溶的(1 mol/L)NaOH反相萃取,取下層水相3 mL,用熒光分光光度計(jì)測(cè)熒光值(吸收355 nm/發(fā)射515 nm)。AHH活力單位:產(chǎn)物熒光強(qiáng)度/mg 蛋白。

      谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶(GST)活性的測(cè)定參照Habig(1974)[15]的方法:按每孔150 μL 反應(yīng)體系[0.05 mmol/L(pH 為6.9)磷酸鉀緩沖液100 μL;15.0 mmol/L CDNB 10 μL;15.0 mmol/L GSH 10 μL;20 μL 重蒸水;10 μL 勻漿液]和10 μL粗酶液加入96 孔微孔板,加入樣品30 s后,在溫度30℃、波長(zhǎng)340 nm處時(shí)間間隔為20 s連續(xù)讀數(shù)6次。酶活力用每min每mg蛋白催化產(chǎn)生的2,4-dinitrophenyl glutathione 的nmol量來(lái)表示,單位nmol·min-1·mg-1pro。

      超氧化物歧化酶(SOD)活性的測(cè)定參照Marklund(1974)[16]的方法:pH=8.3、50 mmol/L Tris-HCl緩沖液4.5 mL;0.1 mL樣液;10 μL 50 mmol/L連苯三酚,迅速搖勻;波長(zhǎng)325 nm處每隔30 s測(cè)一次A值,使自氧化速率△A325nm/min控制在0.070 OD/min左右。單位用nmol·min-1·mg-1pro表示。

      谷胱甘肽過(guò)氧化物酶(GSH)總量測(cè)定參照范崇東(2004)[17]的方法:取勻漿上清液100 μL,加入300 μL NaOH(0.15 mol/L)溶液,搖勻;加入體積分?jǐn)?shù)3%甲醛(用水配)(pH=12)100 μL,搖勻,靜置2 min;加入500 μL DTNB (10 mmol/L)分析溶液,搖勻,在25℃水浴保溫5 min;測(cè)定在波長(zhǎng)412(405、414)nm處的吸光度A,通過(guò)計(jì)算或從標(biāo)準(zhǔn)曲線上得出相應(yīng)GSH濃度。酶活力單位(U)表示為每mg 蛋白的熒光強(qiáng)度。

      1.2.4 DNA損傷的測(cè)定

      雙鏈:取分離的雙鏈DNA 100 μL于試管中,加入100 μL 50 mmol/L NaCl,5 μL含0.2%SDS的2 mmol/L EDTA,3 mL 0.2 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH 6.9),3 μL二苯丙咪唑,混勻后至于暗處反應(yīng)15 min后測(cè)熒光;單鏈:取DNA 100 μL,于80℃加熱30 min,取分離的單鏈DNA 100 μL于試管中,加入100 μL 50 mmol/L NaCl,5 μL含0.2%SDS的2 mmol/L EDTA,3 mL 0.2 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH 6.9),3 μL二苯丙咪唑,混勻后置于暗處反應(yīng)15 min后測(cè)熒光;堿解旋:將分離純化的DNA樣品100 μL,加入50 μL 0.05 mol/L NaOH,混勻后于0℃孵育30 min。取出,快速加入50 μL 0.05 mol/L HCl,及2 μL 0.5%SDS,21號(hào)針頭吸放6次混勻。在上述堿解旋后的DNA樣品中加入3 mL 0.2 mol/L磷酸鉀緩沖液(pH 6.9),3 μL二苯丙咪唑(10 μg/L),混勻后置于暗處反映15 min后熒光。

      DNA完整性通常以F值表示,計(jì)算公式為:

      F={X(auDNA)-XL(ssDNA)}/{XL(dsDNA)-XL(ssDNA)}

      式中,X為熒光值;dsDNA為雙鏈DNA;ssDNA為單鏈DNA;auDNA為解旋后的DNA。

      1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

      所有數(shù)據(jù)均以3個(gè)平行組數(shù)據(jù)的平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(Means±SD)表示,并采用SPSS軟件進(jìn)行單因素方差分析(ANOVA)和Duncan檢驗(yàn)法統(tǒng)計(jì)分析。

      2 實(shí)驗(yàn)結(jié)果

      2.1 B[a]P對(duì)菲律賓蛤仔組織解毒代謝酶活力的影響

      由圖1可見,菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊AHH、GST活力受B[a]P誘導(dǎo)發(fā)生顯著變化(P<0.05),而對(duì)照組無(wú)明顯變化。所有處理組組織AHH活力均表現(xiàn)為顯著的誘導(dǎo)作用(P<0.05),于3 d達(dá)到最大值,然后趨于穩(wěn)定。各處理組組織GST活力在實(shí)驗(yàn)時(shí)間內(nèi)呈先升高后下降趨勢(shì),分別于1 d、3 d時(shí)達(dá)到最大值和最小值,然后保持穩(wěn)定,并顯著低于對(duì)照組水平(P<0.05)。同時(shí)各處理組組織AHH活力在穩(wěn)定后與B[a]P濃度呈正相關(guān)性,GST活力在穩(wěn)定后與B[a]P濃度呈負(fù)相關(guān)性。

      圖2表明,暴露于B[a]P環(huán)境中的菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊GSH含量、SOD活力被顯著誘導(dǎo)和抑制(P<0.05),而對(duì)照組無(wú)明顯變化。所有處理組組織GSH的含量均表現(xiàn)為顯著的抑制作用(P<0.05),于1 d達(dá)到最小值,然后趨于穩(wěn)定。各處理組組織SOD活力在實(shí)驗(yàn)時(shí)間內(nèi)呈先升高后下降趨勢(shì),分別于3 d、6 d時(shí)達(dá)到最大值和最小值,然后保持穩(wěn)定,恢復(fù)至對(duì)照組水平。

      2.2 B[a]P對(duì)菲律賓蛤仔組織DNA單鏈斷裂水平的影響

      圖3表明,各處理組菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊DNA損傷(以F值表示)顯著(P<0.05),而對(duì)照組無(wú)明顯變化。各染毒處理組組織F值隨著實(shí)驗(yàn)天數(shù)的增加而明顯下降。在鰓絲處理組中,染毒1 d后F值迅速降低,在3 d后達(dá)到最低值,然后趨于穩(wěn)定。而在消化盲囊處理組中,0.01 μg/L處理組在染毒后F值逐漸降低,6 d時(shí)達(dá)到最低值;0.20 μg/L處理組在染毒后F值迅速降低,在第3 d達(dá)到最低值,然后趨于穩(wěn)定。各處理組組織F值在穩(wěn)定后,均與B[a]P濃度呈顯著負(fù)相關(guān)(P<0.05)。

      注:紫色線段表示染毒3 d時(shí)各指標(biāo)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的劑量效應(yīng)關(guān)系圖;綠色線段表示染毒10 d時(shí)各指標(biāo)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)的劑量效應(yīng)關(guān)系圖。

      Notes:The purple line segment represented the dose-effect relation diagram of the experimental data of each index at 3 days after the exposure.The green line segment represented the dose-effect diagram of the experimental data of each index at 10 days of exposure.

      表1 在染毒3 d時(shí)菲律賓蛤仔解毒代謝和DNA損傷指標(biāo)與B[a]P的相關(guān)分析

      2.3 菲律賓蛤仔組織解毒代謝和DNA損傷指標(biāo)與B[a]P濃度的相關(guān)性

      由圖4、表1可知,除菲律賓蛤仔鰓絲GSH含量這個(gè)指標(biāo)外,其他指標(biāo)(鰓絲的AHH、GST、SOD活力和DNA損傷,消化盲囊的AHH、GST、SOD活力和GSH含量和DNA損傷)在B[a]P暴污3 d時(shí)與B[a]P濃度均呈明顯的線性關(guān)系,其中鰓絲和消化盲囊AHH和SOD活力與B[a]P濃度呈顯著的正相關(guān),GST活力、GSH含量、DNA損傷與B[a]P濃度表現(xiàn)為明顯的負(fù)相關(guān)。

      表2 在染毒10 d時(shí)菲律賓蛤仔解毒代謝和DNA損傷指標(biāo)與B[a]P的相關(guān)分析

      由圖4、表2可知,除鰓絲GSH含量和消化盲囊DNA損傷這兩個(gè)指標(biāo)外,菲律賓蛤仔在B[a]P污染環(huán)境中暴污10 d時(shí),其組織AHH、GST、SOD活力和GSH含量、DNA損其傷與B[a]P濃度均呈明顯的線性關(guān)系,其中鰓絲和消化盲囊AHH和SOD活力與B[a]P濃度呈顯著的正相關(guān),GST活力、GSH含量、DNA損傷與B[a]P濃度表現(xiàn)為明顯的負(fù)相關(guān)。

      3 討論

      3.1 B[a]P對(duì)菲律賓蛤仔組織解毒代謝酶活力的影響

      研究表明,持久性有機(jī)污染物(Persistent organic pollutants,POPs)通過(guò)Ⅰ相細(xì)胞色素P450酶(Cytochromep 450,CYP450)代謝成為更具極性的代謝中間產(chǎn)物進(jìn)入生物體內(nèi),這些代謝產(chǎn)物在Ⅱ相代謝酶谷胱甘肽-S-轉(zhuǎn)移酶等催化下與內(nèi)源性分子結(jié)合,加快了代謝產(chǎn)物排出體外的速度;另一方面在POPs代謝過(guò)程中產(chǎn)生大量的自由基,可被體內(nèi)抗氧化防御系統(tǒng)(如SOD等)清除。

      馮濤等[18]和王靜等[19]分別對(duì)大彈涂魚(Boleophthalmuspectinirostris)、櫛孔扇貝(Chlamysfarreri)解毒代謝酶活力進(jìn)行研究,發(fā)現(xiàn)多環(huán)芳烴類(PAHs)可誘導(dǎo)上述兩種水產(chǎn)動(dòng)物組織AHH活力顯著升高,并且其變化規(guī)律與PAHs暴污濃度呈現(xiàn)明顯的劑量-效應(yīng)關(guān)系。吳偉等[20-21]通過(guò)鯽魚(Carassiusauratus)暴露于BDE-47中來(lái)研究魚體的抗氧化防御系統(tǒng),研究發(fā)現(xiàn)鯽魚肝臟GST活性呈現(xiàn)先增加后減少的變化趨勢(shì),而總抗氧化能力(T-AOC)和超氧化歧化酶(SOD)活性隨著BDE-47濃度的增加,其活性逐漸降低,說(shuō)明BDE-47對(duì)魚體造成明顯的氧化損傷;吳偉等[22]還對(duì)羅非魚(Oreochromisaurea)肝臟組織非酶類抗氧化劑進(jìn)行了研究,發(fā)現(xiàn)在溴氰菊酯的污染下,羅非魚肝臟組織GSH含量呈現(xiàn)先增加后減少的趨勢(shì),說(shuō)明溴氰菊酯對(duì)羅非魚抗氧化防御系統(tǒng)產(chǎn)生了影響。因此認(rèn)為解毒代謝酶活力和抗氧化防御系統(tǒng)可以在環(huán)境污染監(jiān)測(cè)體系中起到預(yù)警作用。

      本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊解毒代謝酶AHH活力對(duì)B[a]P污染比較敏感,能夠在短時(shí)間內(nèi)被迅速誘導(dǎo)上升,且誘導(dǎo)水平與污染濃度呈現(xiàn)正相關(guān),這個(gè)結(jié)果和其他研究者在魚類和櫛孔扇貝AHH活力的研究結(jié)果相似[18-19,23-24]。而抗氧化防御系統(tǒng)的標(biāo)志物GST活力、SOD活力和GSH含量,在受低濃度B[a]P污染時(shí),GST和SOD活力首先呈現(xiàn)被誘導(dǎo)升高的趨勢(shì),接著受到抑制下降,分別在3 d和6 d達(dá)到穩(wěn)定值,達(dá)到平衡以后GST活力與B[a]P的濃度呈負(fù)相關(guān),SOD活力最終恢復(fù)到對(duì)照組水平;GSH含量在一開始染毒就呈現(xiàn)出被顯著抑制的趨勢(shì),在1 d后達(dá)到穩(wěn)定值,穩(wěn)定后GSH含量與B[a]P濃度呈現(xiàn)負(fù)相關(guān)。菲律賓蛤仔鰓絲和消化盲囊AHH、GST、SOD活力和GSH含量對(duì)B[a]P污染表現(xiàn)出了較強(qiáng)的敏感性,且變化出現(xiàn)較強(qiáng)的規(guī)律性,這顯示菲律賓蛤仔解毒代謝酶和抗氧化防御系統(tǒng)的標(biāo)志物能指示外界B[a]P的污染程度,具有重要的參考意義。

      3.2 B[a]P對(duì)菲律賓蛤仔組織DNA單鏈斷裂水平的影響

      正常的遺傳方式下,DNA半保留復(fù)制的特性將遺傳物質(zhì)傳遞給下一代,確保了DNA基因組的穩(wěn)定性,也確保了有機(jī)體的正常新陳代謝和繁殖。但當(dāng)正常的生長(zhǎng)環(huán)境被破壞時(shí),例如存在化學(xué)誘變物、電離輻射、代謝過(guò)程中產(chǎn)生的活性氧自由基或發(fā)生光化學(xué)反應(yīng)、氧化還原反應(yīng)等,生物細(xì)胞內(nèi)的DNA分子可能會(huì)被損傷。本實(shí)驗(yàn)重點(diǎn)研究了化學(xué)物誘導(dǎo)的DNA損傷,化學(xué)物進(jìn)入生物體內(nèi),經(jīng)細(xì)胞新陳代謝產(chǎn)生中間產(chǎn)物,與DNA結(jié)合形成加合物,導(dǎo)致DNA單鏈斷裂。B[a]P進(jìn)入生物體,經(jīng)細(xì)胞新陳代謝生成具化學(xué)活性中間產(chǎn)物,如二醇環(huán)氧化物{B[a]PDE}[25],B[a]PDE可與DNA形成穩(wěn)定或不穩(wěn)定加合物,導(dǎo)致DNA鏈上的堿性不穩(wěn)定位點(diǎn),引發(fā)DNA鏈斷裂[26]。

      本實(shí)驗(yàn)采用了堿解旋技術(shù)測(cè)定了受到不同濃度及時(shí)間B[a]P脅迫的菲律賓蛤仔鰓及消化盲囊的DNA單鏈斷裂程度,由實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,B[a]P可誘導(dǎo)菲律賓蛤仔鰓和消化盲囊DNA產(chǎn)生明顯的損傷效應(yīng),隨著B[a]P濃度和染毒時(shí)間的增加,F(xiàn)值逐漸減小,即DNA受損傷的程度加深,并表現(xiàn)出較好的時(shí)間-劑量效應(yīng)。因此,作者認(rèn)為菲律賓蛤仔組織暴露于B[a]P污染物中DNA損傷效應(yīng)明顯,DNA損傷水平可以作為B[a]P污染程度的生物效應(yīng)指標(biāo)。

      3.3 基于菲律賓蛤仔多環(huán)芳烴生物標(biāo)志物的篩選

      近年來(lái),大量的染毒實(shí)驗(yàn)證明生物體的某些指標(biāo)與環(huán)境中的污染物呈現(xiàn)較好的敏感性和相關(guān)性,因此利用生物體的某些指標(biāo)來(lái)反映污染物污染程度的方法已經(jīng)得到了廣泛的認(rèn)可和應(yīng)用。Versteeg等[27]和Cooper等[28]提出了評(píng)估生物標(biāo)志物的14條通用標(biāo)準(zhǔn);Cheung等[29]將這14條標(biāo)準(zhǔn)進(jìn)一步簡(jiǎn)化概括總結(jié)為四條:1)生物標(biāo)志物可以被環(huán)境中污染物的實(shí)際濃度所誘導(dǎo);2)生物標(biāo)志物的變化與不同污染物濃度之間存在明顯的劑量效應(yīng);3)生物標(biāo)志物具有穩(wěn)定性;4)生物標(biāo)志物不受季節(jié)變化的影響。

      根據(jù)菲律賓蛤仔的解毒代謝過(guò)程和B[a]P對(duì)機(jī)體的毒性效應(yīng),本文逐步篩選和分析AHH活力、GST活力、GSH含量、SOD活力和DNA損傷這5項(xiàng)指標(biāo)。本文前兩個(gè)討論結(jié)果表明,在外界環(huán)境被B[a]P污染的情況下,上述5項(xiàng)指標(biāo)均被誘導(dǎo),并呈現(xiàn)時(shí)間-劑量效應(yīng)關(guān)系(P<0.05),這一變化情況符合Cheung等[29]所提出的生物標(biāo)志物的第一、第二兩點(diǎn)要求。但海洋環(huán)境的多變和生物體自身的復(fù)雜,導(dǎo)致單一的生物標(biāo)志物可能很難準(zhǔn)確地評(píng)估環(huán)境污染程度,因此可以考慮結(jié)合兩個(gè)或三個(gè)生物標(biāo)志物形成綜合生物標(biāo)志物??偨Y(jié)本次研究,依據(jù)實(shí)驗(yàn)中菲律賓蛤仔兩種組織各項(xiàng)解毒代謝酶活力被誘導(dǎo)的情況以及DNA損傷情況,認(rèn)為可以整合解毒代謝酶AHH活力和DNA單鏈斷裂水平兩項(xiàng)生物標(biāo)志物形成一個(gè)組合作為評(píng)估B[a]P污染程度的生物標(biāo)志物,將AHH活力作為防御型生物標(biāo)志物,DNA單鏈斷裂水平作為損傷型生物標(biāo)志物,在兩個(gè)方面、雙重保障的情況下對(duì)環(huán)境中B[a]P的污染程度作出精確地評(píng)估,為我國(guó)海洋環(huán)境中多環(huán)芳烴的污染監(jiān)測(cè)提供有效、確實(shí)可行的技術(shù)支撐。

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