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      一株溴氰菊酯降解菌的分離鑒定及降解特性研究

      2019-01-22 06:25:36蘇志俊劉永濤徐春娟余琳雪艾曉輝
      淡水漁業(yè) 2019年1期
      關(guān)鍵詞:溴氰菊酯菌劑淡水

      蘇志俊,劉永濤,徐春娟,丁 浩,余琳雪,艾曉輝

      (1.上海海洋大學(xué)水產(chǎn)與生命學(xué)院,上海201306;2.中國水產(chǎn)科學(xué)研究院長江水產(chǎn)研究所,武漢 430223;3.農(nóng)業(yè)部水產(chǎn)品質(zhì)量安全控制重點實驗室,北京 100141;4.淡水水產(chǎn)健康養(yǎng)殖湖北省協(xié)同創(chuàng)新中心,武漢 430070)

      溴氰菊酯(Deltamethrin,DM)又名敵殺死,是擬除蟲菊酯中殺蟲活性最大的一個品種[1]。因其具有較高的生物活性,自1974年開發(fā)生產(chǎn)以來在世界范圍內(nèi)應(yīng)用廣泛,在國內(nèi)是用量增長最快的農(nóng)藥之一[2]。溴氰菊酯憑借其廣譜、高效、對哺乳動物低毒等優(yōu)點,普遍應(yīng)用于農(nóng)業(yè)滅害、衛(wèi)生除蟲[3],其通過雨水、生活廢水等途徑進入天然水體中,造成污染。近年來水產(chǎn)養(yǎng)殖生產(chǎn)中利用溴氰菊酯防治常見淡水魚類體表錨頭鳋(Lernaeacyprinacea)、中華鳋(Sinergasilus)、魚虱(Argulusjaponicus)等寄生蟲[4],效果顯著。隨著溴氰菊酯用量的增加,其在漁業(yè)水域中的殘留也越來越大,對水環(huán)境造成很大危害,且第二代擬除蟲菊酯類殺蟲劑具有耐光、耐熱等特點,在環(huán)境中殘留時間更長,對魚類等水生生物高毒[5],很容易導(dǎo)致養(yǎng)殖事故。因此,消除或減少溴氰菊酯農(nóng)藥在水環(huán)境中的殘留非常有必要。

      微生物修復(fù)具有高效、無毒、無二次污染等優(yōu)點,且易于操作,成本較低,目前已成為去除農(nóng)藥殘留污染的一種重要方法[6]。已分離得到的溴氰菊酯降解菌有熒光假單胞菌(P.Fluorescens)、普成沙雷氏菌(Serratiaplymuthica)、產(chǎn)堿桿菌(Alcedinidae)等[7-9]。通過降解菌對蔬菜、土壤的農(nóng)藥殘留進行生物修復(fù)的研究較為普遍。丁海濤等[10]發(fā)現(xiàn)菌株qw5對青菜中殘留的氯氰菊酯和氰戊菊酯有明顯去除效果。楊曉棠[11]將菌株X20與溴氰菊酯混和噴施油菜盆栽處理7 d,降解率達65%以上。Hong等[12]發(fā)現(xiàn)甲氰菊酯降解菌Sphingomonassp.能夠高效降解土壤中的甲氰菊酯。然而,淡水環(huán)境及沉積物中擬除蟲菊酯類農(nóng)藥降解菌的篩選、降解機制等尚未有系統(tǒng)研究。本研究通過富集篩選的方法分離得到一株溴氰菊酯降解菌SW,研究溫度、pH、接種量、藥物初始濃度等因素對其降解特性的影響,并進一步研究此菌株對養(yǎng)殖淡水中溴氰菊酯的生物修復(fù)效果,為建立有效地去除淡水養(yǎng)殖環(huán)境中溴氰菊酯殘留的微生物修復(fù)技術(shù),保護淡水環(huán)境、治理養(yǎng)殖環(huán)境農(nóng)藥殘留污染提供理論和技術(shù)支持。

      1 材料與方法

      1.1 實驗材料

      1.1.1 培養(yǎng)基和養(yǎng)殖淡水

      基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基(g/L):NaCl 1.0,(NH4)2SO41.0,K2HPO41.5,KH2PO40.5,MgSO4·7H2O 0.1,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01,蒸餾水1 000 mL,調(diào)pH 7.0左右。使用前均用高壓蒸汽滅菌30 min。

      供試水樣:取自于中國水產(chǎn)科學(xué)研究院長江水產(chǎn)研究所養(yǎng)殖池塘表層水。

      1.1.2 主要試劑和儀器

      溴氰菊酯溶液(規(guī)格2.5%,宜興市蘇亞達生物技術(shù)有限公司);正己烷(色譜純,美國J.T Baker公司);氯化鈉(國藥集團化學(xué)試劑有限公司);LB肉湯(青島高科園海博生物技術(shù)有限公司);BHI腦心浸出液肉湯(青島高科園海博生物技術(shù)有限公司)。

      主要儀器:Varian CP-3800氣相色譜儀(美國Varian公司)、UV-2802PC 紫外分光光度計(杭州庫侖科技有限公司)、QHZ-98B全溫光照振蕩培養(yǎng)箱(TESUC TS-2102)、Himac CR-21高速冷凍離心機(日本日立公司)等。

      1.2 試驗方法

      1.2.1 降解菌的分離篩選

      用于降解菌篩選的樣品采自武漢郊區(qū)某長期受菊酯類農(nóng)藥污染菜園耕地土壤。經(jīng)檢測,土樣中含溴氰菊酯(9.21±0.05)μg/kg。

      富集培養(yǎng):在錐形瓶中加入100 mL LB肉湯,121 ℃滅菌。無菌條件下取10 g土壤于上述培養(yǎng)基中,于30 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)3 d。

      馴化培養(yǎng):在錐形瓶中加入基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基100 mL,121 ℃滅菌后,加入0.5 mL已過濾的10 000 mg/L溴氰菊酯母液(丙酮為溶劑)和適量吐溫80,使溴氰菊酯的最終質(zhì)量濃度為50 mg/L,隨后無菌接入富集培養(yǎng)3 d后的土壤培養(yǎng)液上清液,于30 ℃、180 r/min振蕩培養(yǎng)5 d。5 d后按10%的接種量取培養(yǎng)液上清液,接入到溴氰菊酯農(nóng)藥濃度為100 mg/L新鮮的基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中,同法培養(yǎng)5 d。逐次提高溴氰菊酯的濃度,每次提高50 mg/L,使基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中溴氰菊酯終濃度為300 mg/L。以相同培養(yǎng)條件下不含溴氰菊酯的基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基作為空白對照。從最后一次馴化培養(yǎng)液涂布得到的平板挑取單菌落,進行劃線純化,對在培養(yǎng)基上生長良好,傳代穩(wěn)定的不同菌株進行編號后,于4 ℃冰箱保存,以進行下一步降解能力的測定[13]。

      1.2.2 降解菌降解能力的測定

      挑取經(jīng)馴化培養(yǎng)得到的單菌落分別接種于 LB液體培養(yǎng)基中,30 ℃、180 r/min搖床培養(yǎng)48 h,4 000 r/min離心10 min收集菌體,棄去上清液,用0.02 mol/L磷酸鹽緩沖液(PBS)洗滌菌體沉淀2次,再用相同PBS調(diào)節(jié)菌體濃度OD600=1.5作為種子液備用。以10%的接種量,將種子液接種到含有0.5 mg/L 溴氰菊酯的基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中,于30 ℃、180 r/min搖床培養(yǎng)5 d,5 d后經(jīng)氣相色譜測定溴氰菊酯的濃度,以相同培養(yǎng)條件下含相同濃度的溴氰菊酯不接種細菌的培養(yǎng)基為對照,每個處理重復(fù)3次,計算不同菌株對溴氰菊酯的降解率,選取降解能力最大的菌株SW作為研究對象進行后續(xù)實驗。降解率的計算方法:

      降解率= [(A0-A1)/A0] ×100%

      式中,A1為降解菌處理后溴氰菊酯殘留濃度(mg/L),A0為對照中溴氰菊酯殘留濃度(mg/L)。

      1.2.3 降解菌生長量(OD600)與溴氰菊酯降解關(guān)系曲線的制作

      加基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基100 mL于250 mL錐形瓶中,并添加溴氰菊酯樣品母液使其終濃度為0.5 mg/L。按10%的接種量接種1.2.2節(jié)所述條件下降解菌SW種子液,在30 ℃、180 r/min搖床培養(yǎng)72 h。以含相同濃度的溴氰菊酯不加降解菌的培養(yǎng)基為對照。每24 h從培養(yǎng)基中取樣,每個處理重復(fù)3次,用分光光度計測定600 nm下的吸光值,同時用氣相色譜儀測定溴氰菊酯殘留量,最后繪制菌株生長(OD600)和溴氰菊酯降解關(guān)系曲線。

      培養(yǎng)基中溴氰菊酯的提取與測定:參照劉麗等[14]的方法作如下改進:取1 mL培養(yǎng)液加入0.1 g NaCl,再加入4 mL正己烷萃取,渦旋振蕩3 min,8 000 r/min離心5 min后,收集上層有機相,重復(fù)提取一次,合并兩次提取液,混勻,于35 ℃氮吹至干,用1 mL正己烷定容,上機待測。氣相色譜分析條件:色譜柱Agilent DB-5(30 m× 0.25 mm,0.25 μm);載氣:高純氮氣(99.999%),流速1 mL/min;檢測器ECD;柱溫260 ℃;檢測溫度310 ℃;進樣口溫度260 ℃。升溫程序:初始溫度160 ℃保持1 min,以10 ℃/min升到250 ℃,保持2 min,然后再以10 ℃/min升到280 ℃,保持10 min;進樣方式:不分流進樣;進樣量1 μL。

      1.2.4 菌種鑒定

      對分離得到的菌株SW培養(yǎng)至對數(shù)生長期進行形態(tài)觀察、生理生化實驗,試驗方法參照文獻[15],菌株16S rRNA基因序列測定及系統(tǒng)發(fā)育分析委托武漢擎科創(chuàng)新生物科技有限公司測序,將測序結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫中利用BLAST進行比對分析,使用MAGE 4.0軟件采用鄰接法進行關(guān)系分析和系統(tǒng)進化樹的構(gòu)建。

      1.2.5 溴氰菊酯降解菌的降解特性研究

      降解試驗基本條件:100 mL的基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中加入溴氰菊酯0.5 mg/L作為碳源,菌株接種量10%、pH 7.0、30 ℃、振蕩速率180 r/min;最佳條件降解試驗:通過分別改變降解基本條件中的溫度(20、25、28、30、35 ℃),pH(5.0、6.0、7.0、8.0、9.0),菌株接種量(1%、2%、4%、6%、8%、10%),在其他條件保持不變的情況下培養(yǎng)5 d后,取樣測定溴氰菊酯的降解率;改變降解基本條件中溴氰菊酯初始濃度(0.1、0.5和1.0 mg/L),在其他條件保持不變的情況下培養(yǎng)7 d,定期取樣測定溴氰菊酯殘留量,并每隔1 h測定培養(yǎng)液的OD600值,研究菌株SW在不同溴氰菊酯無機鹽培養(yǎng)基中的生長狀況以及對不同濃度溴氰菊酯的降解規(guī)律。各因素設(shè)計以相同條件下加藥不加降解菌的處理作為空白對照,每處理重復(fù)3次。

      1.2.6 菌株對養(yǎng)殖淡水中溴氰菊酯的降解

      準備裝有30 L養(yǎng)殖淡水的水族箱(49 cm×30 cm×40 cm)6個,將溴氰菊酯溶液用丙酮稀釋100倍,采用單次潑灑藥浴的方法,使水中溴氰菊酯的理論質(zhì)量濃度分別為0.5、5.0和50 μg/L,藥物充分混勻后2 h取200 mL水樣,測定養(yǎng)殖淡水中不同濃度組的實際藥物濃度。將菌株SW種子液稀釋制成液體菌劑,調(diào)節(jié)液體菌劑OD600=0.6(菌濃度為6.5×108cfu/mL)。試驗共設(shè)3 個處理:(T1)在含0.5 μg/L溴氰菊酯的養(yǎng)殖淡水中按照水族箱蓄水量的4%加入降解菌劑;(T2)在含5.0 μg/L溴氰菊酯的養(yǎng)殖淡水中按照水族箱蓄水量的4%加入降解菌劑;(T3)在含50 μg/L溴氰菊酯的養(yǎng)殖淡水中按照水族箱蓄水量的4%加入降解菌劑;以相同藥物濃度下不加菌劑處理為空白對照,各處理重復(fù)3次。自然光照,全天曝氣,使得水體中的溶氧量在5 mg/L以上,pH 6.2~6.4,水溫18~20 ℃。于給藥后每隔24 h取水樣,連續(xù)采集5 d,測定各濃度組不同時間點水樣中溴氰菊酯的殘留量。

      1.2.7 不同濃度SW菌劑對養(yǎng)殖淡水中低濃度DM的降解效果

      根據(jù)1.2.6的結(jié)果,準備裝有30 L養(yǎng)殖淡水的水族箱(49 cm×30 cm×40 cm)8個,將溴氰菊酯溶液用丙酮稀釋100倍,采用單次潑灑藥浴的方法,使水中溴氰菊酯的理論質(zhì)量濃度分別為0.5 μg/L(T1組)和5.0 μg/L(T2組),藥物充分混勻后2 h取200 mL水樣,測定養(yǎng)殖淡水中不同處理組的實際藥物濃度。將菌株SW種子液稀釋制成液體菌劑,調(diào)節(jié)液體菌劑OD600=0.6(菌濃度為6.5×108cfu/mL)。T1組設(shè)置4個處理,編號為T1-0、T1-1、T1-2、T1-3,其中T1-0為空白對照。T2組同樣設(shè)置4個處理,編號為T2-0、T2-1、T2-2、T2-3,其中T2-0為空白對照。分別向T1和T2組投放降解菌劑,其投放量占各水族箱的蓄水量依次為0、0.004%、0.04%、0.4%(對應(yīng)的SW菌濃度分別為0、2.6×104、2.6×105、2.6×106cfu/mL)。以同一條件下含相同藥物濃度不加菌劑的處理為空白對照,各處理重復(fù)3次。自然光照,全天曝氣,使得水體中的溶氧量在5 mg/L以上,pH 6.2~6.4,水溫18~20 ℃。于給藥后每隔24 h取水樣,連續(xù)采集5 d,測定各濃度組不同菌劑濃度處理條件下水樣中溴氰菊酯的殘留量。

      1.2.8 數(shù)據(jù)處理

      溴氰菊酯的降解方程采用SPSS17.0進行擬合,擬合模型為:

      Ct=C0e-kt

      其中Ct表示t時刻藥物濃度,C0為溴氰菊酯農(nóng)藥的初始濃度(mg/L),k表示降解速率常數(shù)(d-1)。

      降解半衰期通過下列公式計算:

      T1/2=ln2 /k

      式中,T1 /2為降解半衰期(d),k為降解速率常數(shù)(d-1)。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 菌株的篩選與鑒定

      通過初步的富集馴化培養(yǎng),分離純化得到1株溴氰菊酯降解菌株,命名為SW。SW在BHI瓊脂平板上30 ℃培養(yǎng)24 h后形成灰色、光滑不透明的菌落,直徑2~3 mm、菌落中央突起、邊緣整齊光滑。革蘭氏染色陰性,接觸酶、氧化酶陽性。不產(chǎn)生H2S和吲哚,硝酸鹽還原陰性,不能利用甘露醇、鼠李糖和蔗糖,可以利用密二糖、苦杏仁苷和阿拉伯糖(見表1)。菌株SW的16S rRNA測序后在GenBank上登錄,根據(jù)GenBank同源性比較,發(fā)現(xiàn)菌株SW與SphingobacteriummultivorumGZT-2(GenBank登錄號為JX035964.1)同源性99%。根據(jù)降解菌株形態(tài)學(xué)特征、生理生化試驗結(jié)果及16S rRNA基因系統(tǒng)發(fā)育分析,將菌株SW初步鑒定為多食鞘氨醇桿菌(Sphingobacteriummultivorum)。根據(jù)菌株SW的16S rRNA及相關(guān)菌株的16S rRNA序列構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹見圖1。

      表1 SW的生理生化特征Tab.1 Physiological characteristics of strain SW

      圖1 根據(jù)菌株SW及相關(guān)菌株的16S r RNA構(gòu)建的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.1 The phylogenetic tree based on the 16S r RNA sequences of strain SW and related strains

      2.2 菌株生長與降解溴氰菊酯的關(guān)系

      將SW種子液(OD600=1.5)按10%的接種量接種在基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中(溴氰菊酯濃度為0.5 mg/L)搖床培養(yǎng)。如圖2所示,SW能夠以溴氰菊酯為唯一碳源緩慢生長。在接種SW后0~24 h內(nèi)菌株生長較快,溴氰菊酯的降解速率與菌株生長近乎呈正相關(guān)。在24~48 h內(nèi),SW的生長速度與溴氰菊酯的降解速度均趨于平緩,菌株的生長和農(nóng)藥的降解呈現(xiàn)出良好的同步關(guān)系。菌體培養(yǎng)至72 h時降解率達66.3%。

      圖2 菌株SW生長與溴氰菊酯降解的關(guān)系曲線Fig.2 Relationship between strain SW growth and deltamethrin degradation

      2.3 不同條件對降解菌降解特性的影響

      菌株SW在不同溫度下降解溴氰菊酯的效率如圖3-A所示,當(dāng)溫度在28~30 ℃時,隨著溫度升高,SW對溴氰菊酯的降解率上升,最適降解溫度為30 ℃。整體來看,溫度過高或者過低對菌株SW降解溴氰菊酯影響不大(P>0.05),說明此菌株能夠適應(yīng)較廣的溫度范圍,具備一定的應(yīng)用潛力。

      菌株SW在不同pH下降解溴氰菊酯的效率如圖3-B所示,pH 在5~6之間,菌株對溴氰菊酯的平均降解率最高,降解最適初始pH為6。這可能與菌種自身的性質(zhì)有關(guān),菌株SW在弱酸性條件下可能有利于降解酶的合成與表達,并保持較高的降解活性[16]。

      菌株SW在不同接種量下降解溴氰菊酯的效率如圖3-C所示,溴氰菊酯的降解率隨接種量的增加(2%~4%)而增加。在接種量為4%時降解率最大,當(dāng)接種量繼續(xù)增大時,降解率反而下降。這可能是由于隨著接種量的增加,微生物會產(chǎn)生競爭作用導(dǎo)致生長所需的碳源相對不足,抑制菌體本身對藥物的利用,從而影響降解效果[16]。因此以4%接種量為宜。

      圖3 菌株SW降解溴氰菊酯的特性Fig.3 Degrading characteristics of deltamethrin by SWA:溫度;B:pH;C:接種量;D:和溴氰菊酯不同起始濃度降解動態(tài)

      菌株對不同濃度溴氰菊酯(0.1~1.0 mg/L)的降解曲線如圖3-D所示,SW對0.1和0.5 mg/L溴氰菊酯的降解到第6天才趨于平穩(wěn);對1.0 mg/L溴氰菊酯的降解到第5天便趨于平穩(wěn),降解過程均基本符合一級降解動力學(xué)模型(表2)。0.1、0.5和1.0 mg/L溴氰菊酯在基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中的自然降解半衰期(T1 /2)分別為5.4、10.7和11.5 d。SW對0.1、0.5和1.0 mg/L溴氰菊酯的降解半衰期(T1/2)分別為4.5、2.3和2.0 d,相比同濃度下的自然降解半衰期大大縮小,表明SW是一株溴氰菊酯高效降解菌株。同時發(fā)現(xiàn)SW對高濃度溴氰菊酯的降解比低濃度快:培養(yǎng)至第5天時,SW對1.0 mg/L 溴氰菊酯降解率達76.4%,而對0.1 mg/L溴氰菊酯降解率為63.2%。如圖4可知,菌株SW的生長速率隨無機鹽培養(yǎng)基中溴氰菊酯濃度(0.1~1.0 mg/L)的增加而增大,這一結(jié)果與陳少華等[13]所研究的無色桿菌屬菌株P(guān)-01在不同濃度DM(100~500 mg/L)中的生長趨勢相似,這可能是由于溴氰菊酯作為菌株生長的唯一碳源,對菌體的生長代謝起重要作用,當(dāng)溴氰菊酯濃度相對較低時限制了菌株的生長從而影響降解效率。

      圖4 不同溴氰菊酯濃度下菌株SW的生長曲線Fig.4 Growth curve of SW with different deltamethrin concentrations

      表2 菌株 SW對不同濃度溴氰菊酯的降解動力學(xué)參數(shù)Tab.2 Kinetic parameters of degradation of different content of deltamethrin by strain SW

      注:y為溴氰菊酯殘留量(mg/L);x為降解時間(d)

      2.4 SW對養(yǎng)殖淡水中溴氰菊酯的降解效果

      SW對養(yǎng)殖淡水中較低濃度的溴氰菊酯(0.5~50 μg/L)的降解過程基本符合一級降解動力學(xué)模型(圖5,表3)。0.5、5.0和50 μg/L 溴氰菊酯在養(yǎng)殖淡水中的自然降解半衰期(T1 /2)分別為5.0、5.3和6.9 d。SW對0.5、5.0和50 μg/L溴氰菊酯的降解半衰期(T1/2)分別為4.6、4.1和2.5 d。與在基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中的降解過程相似,SW在養(yǎng)殖淡水中對高濃度溴氰菊酯的降解比低濃度快:培養(yǎng)至第5天時,SW對0.5、5.0和50 μg/L溴氰菊酯的降解率為21.6%,26.4%和53.8%。

      圖5 SW對養(yǎng)殖淡水中不同濃度溴氰菊酯的降解Fig.5 Degradation on different content of deltamethrin in freshwater by SW

      表3 菌株 SW對不同濃度溴氰菊酯的降解動力學(xué)參數(shù)Tab.3 Kinetic parameters of degradation of different content of deltamethrin by strain SW

      注:y為溴氰菊酯殘留量(μg/L);x為降解時間(d)。

      2.5 不同濃度SW菌劑對養(yǎng)殖淡水中低濃度DM的降解效果

      按照1.2.6的方法向含有0.5 μg/L(T1組)和5.0 μg/L(T2組)DM的養(yǎng)殖淡水中投放不同濃度菌劑SW,施用菌劑后2 h、1 d、3 d、5 d 養(yǎng)殖淡水中DM殘留量及降解率如表4和表5所示。降解菌劑對養(yǎng)殖淡水中低濃度DM有一定的降解作用。隨著菌劑SW投放量的增加,養(yǎng)殖淡水中DM濃度呈遞減趨勢,且降解率隨時間的增加而增大。施用菌劑后5 d,T1-1、T1-2、T1-3的降解率分別為4.09%、10.0%、21.2%,T2-1、T2-2、T2-3的降解率分別為5.62%、14.9%、24.5%。分析可知,菌株SW對養(yǎng)殖淡水中低濃度DM的降解效果隨菌劑用量的增加而增加,綜合2.4的結(jié)果可知,不同濃度菌劑SW對養(yǎng)殖淡水中0.5和5.0 μg/L DM的降解率沒有顯著性差異,當(dāng)菌劑SW投放量為4%(養(yǎng)殖水中SW濃度為2.6×107cfu/mL)時,SW對50 μg/L DM降解效果最好,施用菌劑后5 d降解率達53.8%。

      表4 菌劑SW投放量對養(yǎng)殖淡水中溴氰菊酯(0.5 μg/L)降解效果的影響Tab.4 Effect of bacterial concentration on degradation of 0.5 μg/L deltamethrin in the freshwater

      表5 菌劑SW投放量對養(yǎng)殖淡水中溴氰菊酯(5.0 μg/L)降解效果的影響Tab.5 Effect of bacterial concentration on degradation of 5.0 μg/L deltamethrin in the freshwater

      3 討論

      微生物修復(fù)目前已成為去除農(nóng)藥殘留污染的一種重要方法。而篩選高效農(nóng)藥降解菌是開展農(nóng)藥污染生物修復(fù)工作的重要前提,利用高濃度農(nóng)藥篩選出相關(guān)降解菌是目前較為普遍的方法[17]。本研究通過高濃度溴氰菊酯(50~300 mg/L)篩選馴化出能高度耐受并降解藥物的菌株SW。農(nóng)藥的濃度與微生物的降解活性息息相關(guān),高濃度會抑制甚至殺滅降解菌,而濃度過低則難以滿足微生物的營養(yǎng)需求從而影響降解效率[18],因此選擇在0.5 mg/L溴氰菊酯濃度下測定菌株SW對藥物的降解能力并以此研究菌株的降解特性和最佳降解條件。降解菌能否運用于生產(chǎn)實際,在外界環(huán)境中保持穩(wěn)定的數(shù)量和較高的降解活性是生物修復(fù)技術(shù)亟待解決的問題。影響微生物降解農(nóng)藥的因素有微生物自身性質(zhì)、農(nóng)藥結(jié)構(gòu)以及環(huán)境條件(溫度、pH、接種量、底物濃度等)。張松柏等[19]從活性污泥中分離得到能有效降解甲氰菊酯、聯(lián)苯菊酯等擬除蟲菊酯類農(nóng)藥的菌株P(guān)SB07-21,其最佳降解條件是在pH7.0、35 ℃,培養(yǎng)15 d,降解率分別為66.63%和50.18%。菌株SW對溴氰菊酯降解影響因素的研究結(jié)果也證明了這一點,其降解效果受到溫度、pH、接種量、農(nóng)藥初始濃度等環(huán)境條件的影響。在pH為7.0的基礎(chǔ)鹽培養(yǎng)基中,30 ℃、180 r/min搖床培養(yǎng)5 d,SW對1.0 mg/L溴氰菊酯的降解率達76.4%。農(nóng)藥除被微生物降解外,還會發(fā)生光解、化學(xué)分解及共代謝作用等,因此只有當(dāng)菌株的生長和農(nóng)藥的降解出現(xiàn)同步關(guān)系時,才能確定農(nóng)藥被微生物降解了[20]。菌株SW生長與降解溴氰菊酯的關(guān)系曲線表明(圖2),該菌生長與溴氰菊酯降解基本一致,顯示出良好的同步關(guān)系,表明該菌能夠以溴氰菊酯為唯一碳源生長,具有潛在的應(yīng)用價值[21]。

      目前有關(guān)溴氰菊酯殺蟲劑在水體中的代謝殘留還鮮見報道,在養(yǎng)殖用水水質(zhì)標準中,也沒有關(guān)于溴氰菊酯的規(guī)定[22]。本文通過研究菌株SW對養(yǎng)殖淡水中不同濃度溴氰菊酯的降解效果,結(jié)果表明降解菌SW對溴氰菊酯有一定的降解作用,且降解率隨時間的增加而增大。SW對0.5、5.0和50 μg/L溴氰菊酯作用5 d后的降解率為21.6%,26.4%和53.8%。SW對0.5、5.0和50 μg/L溴氰菊酯的降解半衰期(T1/2)分別為4.6、4.1和2.5 d,不同濃度菌劑SW對養(yǎng)殖淡水中0.5和5.0 μg/L溴氰菊酯降解效果沒有顯著性差異,當(dāng)菌劑SW投放量為4%(養(yǎng)殖水中SW濃度為2.6×107cfu/mL)時,SW對50 μg/L溴氰菊酯降解效果最好。在養(yǎng)殖淡水中對高濃度溴氰菊酯的降解比低濃度快,可能是由于低濃度的溴氰菊酯作為菌株SW生長的唯一碳源相對不足,難以滿足微生物的營養(yǎng)需求從而影響降解效率[18]。遲恒等[23]研究表明:5.0 μg/L溴氰菊酯在水環(huán)境中的消除半衰期為4.28~5.99 d,本研究分離篩選的多食鞘氨醇桿菌菌株SW對相同條件下養(yǎng)殖淡水中5.0 μg/L溴氰菊酯的降解半衰期(T1/2)為4.1 d,其降解半衰期更短,表明其在控制水環(huán)境中擬除蟲菊酯類農(nóng)藥殘留方面具有一定的應(yīng)用潛力。自然環(huán)境可能有諸多因素對農(nóng)藥殘留以及降解菌劑降解效果存在影響,菌劑用量及環(huán)境影響等因素仍需進一步研究[24]。

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