肖懷秋,李玉珍*,劉 軍,周 全,姜明姣
(1.湖南化工職業(yè)技術(shù)學(xué)院 制藥與生物工程學(xué)院,湖南 株洲 412000;2.湖南中威制藥有限公司,湖南 株洲 412000)
亞鐵(Fe2+)是含鐵蛋白(酶)的關(guān)鍵組分,在攜氧運(yùn)輸、蛋白質(zhì)與核酸等大分子合成、生物氧化、神經(jīng)細(xì)胞發(fā)育和細(xì)胞增殖與分化等過程中具有重要作用[1-2],亞鐵不足可引發(fā)缺鐵性貧血(iron-deficiency anemia,IDA)、帕金森?。≒arkinson"s disease,PD)和阿茲海默?。ˋlzheimer"s disease,AD)等神經(jīng)退行性疾病。多肽一級(jí)結(jié)構(gòu)含有大量螯合金屬陽離子的有效部位,其一級(jí)結(jié)構(gòu)中的氫鍵、表面配位鍵及動(dòng)態(tài)共價(jià)鍵等可實(shí)現(xiàn)多肽分子與金屬的配位螯合[3];一級(jí)結(jié)構(gòu)中的羧基O原子、咪唑基N原子及巰基S原子等具有較強(qiáng)給電子能力,易與金屬離子發(fā)生配位螯合[4];除N-端氨基和C-端羧基及氨基酸側(cè)鏈某些基團(tuán)可供配位之外,多肽鏈中的羰基和亞氨基也可參與金屬配合[5-6],金屬配位有高度定向性,且配位螯合后可有效影響多肽二級(jí)結(jié)構(gòu)并調(diào)控其生物學(xué)活性[7],以多肽為配體螯合金屬離子制備金屬營養(yǎng)補(bǔ)充劑是當(dāng)前重要的制備策略。
食物中大部分以高價(jià)鐵(Fe3+)形式存在,吸收效率低,只有以亞鐵形式存在時(shí),生物利用率才高且結(jié)構(gòu)更穩(wěn)定,易為人體胃腸道消化、吸收和轉(zhuǎn)運(yùn)。亞鐵藥物補(bǔ)充主要以無機(jī)鐵鹽或簡單有機(jī)酸鐵鹽進(jìn)行,存在穩(wěn)定性差、胃腸刺激大、易受腸內(nèi)容物干擾、生物利用率低和存在一定毒副作用等缺陷,補(bǔ)充效果不理想[8]。生物多肽與亞鐵配位螯合后可明顯改善亞鐵吸收利用率和穩(wěn)定性,并能減少金屬元素間拮抗[9],且多肽與亞鐵螯合后能以完整多肽被腸上皮細(xì)胞吸收,經(jīng)門靜脈進(jìn)入肝臟代謝利用,具有吸收率高,毒副作用少和安全邊際高等優(yōu)點(diǎn)[10]?;ㄉ呐c亞鐵經(jīng)配位螯合制備成花生肽亞鐵(peanut peptide-ferrous,PPF)營養(yǎng)補(bǔ)充劑后,其穩(wěn)定性是應(yīng)用研究的基礎(chǔ),研究其穩(wěn)定性可為花生肽亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑的制劑研究和探索儲(chǔ)運(yùn)條件提供良好的理論支持。目前,亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑的研究主要有鱈魚多肽亞鐵[11]、羅非魚膠原蛋白肽亞鐵[12]、帶魚蛋白多肽亞鐵[13]、林蛙膠原蛋白多肽亞鐵[14]、米蛋白肽亞鐵[15]以及本課題研究的花生多肽亞鐵[10,16]等。但目前,關(guān)于多肽亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑的穩(wěn)定性研究鮮見。本研究以花生多肽(分子質(zhì)量<1.0kDa)為配體,以氯化亞鐵(FeCl2),采用液相合成法制備得到花生肽亞鐵金屬配位螯合物,研究確認(rèn)其結(jié)構(gòu),考察其熱穩(wěn)定性、pH穩(wěn)定性及醇溶性,為花生肽亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑的制劑研究和探索儲(chǔ)運(yùn)條件提供良好的理論支持。
花生肽亞鐵螯合物:實(shí)驗(yàn)室自制[10];無水乙醇、氫氧化鈉,鹽酸,硫酸、醋酸、乙酸鈉、硫酸亞鐵銨、鹽酸羥銨:國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;鄰菲啰啉:天津市大茂化學(xué)試劑廠。所有本實(shí)驗(yàn)使用的試劑均為分析純。
DK-98-11A型電熱恒溫水浴箱:天津市泰斯特儀器有限公司;UV-2500紫外可見分光光度計(jì)、IRPrestige-21傅立葉變換紅外光譜儀:日本島津公司;HERMLE Z323K冷凍離心機(jī):德國Hermle公司;PHS-3C型pH計(jì):上海雷磁儀器廠;AL204分析天平:梅特勒-托利多集團(tuán);DF-101S集熱式恒溫加熱磁力攪拌器:鄭州予華儀器制造有限公司。
1.3.1 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的制備工藝
以分子質(zhì)量<1.0 kDa為配體,以氯化亞鐵為金屬配位螯合劑,在多肽:亞鐵配比為4.31∶1(g∶g)、25.4 ℃和pH 7.5條件下螯合28.5min,用無水乙醇沉淀,靜置2h并于8000r/min條件下離心20 min,制備得到花生肽亞鐵螯合物,經(jīng)紫外(ultraviolet,UV)光譜分析和傅里葉變換紅外(Fourier transform-infrared,F(xiàn)T-IR)光譜分析進(jìn)行結(jié)構(gòu)確證[16]。
1.3.2 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的結(jié)構(gòu)分析
(1)紫外掃描
利用紫外吸收光譜對氯化亞鐵、花生肽及花生肽亞鐵螯合物進(jìn)行紫外掃描和結(jié)構(gòu)解析。
(2)紅外掃描
將花生肽和花生肽亞鐵螯合物提純后,除去樣品結(jié)晶水和游離水,準(zhǔn)確稱取2 mg放入瑪瑙研缽中與干燥光譜純溴化鉀(KBr)200 mg混合研磨均勻(紅外燈下進(jìn)行)、壓片并進(jìn)行紅外光譜掃描和結(jié)構(gòu)解析。
1.3.3 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的熱穩(wěn)定性
準(zhǔn)確稱取花生肽亞鐵金屬配位螯合物配制10.0 mg/L的花生肽亞鐵溶液(pH自然),于10~100℃條件下保溫1h,用無水乙醇沉淀,8 000 r/min條件下離心20 min,取上清液測定亞鐵螯合率。
1.3.4 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的pH穩(wěn)定性
準(zhǔn)確稱取花生肽亞鐵配位螯合物配制10.0 mg/L的花生肽亞鐵溶液,用0.5 mol/L的NaOH或HCl調(diào)節(jié)溶液pH至1.0~13.0,于37 ℃保溫1 h,用無水乙醇沉淀,8 000 r/min離心20 min,取上清液測定亞鐵螯合率。
1.3.5 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的醇溶性
準(zhǔn)確稱取1.0 mg花生肽亞鐵,37℃溶解于100 mL不同體積分?jǐn)?shù)乙醇溶液中(以純水中的花生肽亞鐵溶解度作為參比,定義為100%),8 000 r/min條件離心20 min,取上清液測定亞鐵含量。醇溶性計(jì)算公式如下:
1.3.6 花生肽亞鐵螯合率的測定
采用改進(jìn)的乙醇沉淀法進(jìn)行花生肽亞鐵螯合率的測定[17-18]。取樣品2.00 mL加入8.00 mL無水乙醇,混勻,靜置2 h后于8 000 r/min離心20 min,去除沉淀后將上清液濃縮至2 mL,加入8倍體積的無水乙醇,靜置2 h后8 000 r/min離心20 min,測定上清液中亞鐵含量。鐵含量采取鄰菲啰啉510 nm比色法[16]測定?;ㄉ膩嗚F螯合率計(jì)算公式如下:
式中:M1為2 mL樣品中所含的總鐵含量,mg;M2為上清液中游離鐵含量,mg。
2.1.1 紫外光譜掃描
為確認(rèn)花生肽與亞鐵是否有效螯合,將氯化亞鐵(FeCl2)、花生肽和花生肽亞鐵螯合物分別進(jìn)行紫外光譜掃描,結(jié)果如圖1所示。
圖1 FeCl2、花生肽和花生肽亞鐵金屬配位螯合物紫外吸收光譜Fig.1 Ultraviolet absorption spectrum of FeCl2,peanut peptide and peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
由圖1可以看出,氯化亞鐵在波長310 nm處有吸收峰,未螯合花生肽樣品在波長范圍200~400 nm沒有明顯吸收峰,而花生肽亞鐵螯合物在波長215 nm處有明顯吸收峰。其原因是由于多肽與亞鐵螯合后使紫外吸收發(fā)生了位移,由此可推斷,花生肽與亞鐵進(jìn)行了有效螯合[16]。
2.1.2 紅外光譜掃描
分別將花生肽和花生肽亞鐵螯合物進(jìn)行了紅外光譜掃描,結(jié)果如圖2所示。
圖2 花生多肽和花生肽亞鐵金屬配位螯合物紅外吸收光譜圖Fig.2 Infrared absorption spectrogram of peanut peptide and peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
由圖2可以看出,花生肽與亞鐵配位螯合后,紅外圖譜中的一些主要吸收峰發(fā)生明顯變化。在花生肽紅外光譜圖譜中,由于N-H的伸縮振動(dòng),-NH2在波數(shù)3 404 cm-1處具有吸收峰[19],而花生肽亞鐵配位螯合后,-NH2峰消失,而在波數(shù)1 110 cm-1處出現(xiàn)了PtNH2吸收峰,由此可以說明,亞鐵離子與多肽中的氨基進(jìn)行配位螯合;此外,在波數(shù)1654.92cm-1和1 226.73 cm-1處有兩個(gè)很強(qiáng)的羰基吸收峰,其波數(shù)差(Δσ)為428.19 cm-1,說明花生肽亞鐵配位螯合后,伸縮振動(dòng)和變角振動(dòng)等受到了遏制[16,20]?;ㄉ膩嗚F配位螯合物中的亞鐵離子可能與羰基以共價(jià)配位健鍵合形成共軛結(jié)構(gòu)環(huán),花生多肽中氨基N與羧基O均參與了亞鐵的配位螯合[16],其可能結(jié)構(gòu)如圖3所示。
圖3 花生肽亞鐵金屬配位螯合物可能結(jié)構(gòu)Fig.3 Possible structure of peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
將10.0 mg/L的花生肽亞鐵金屬配位螯合物于10~100℃條件下保溫1 h,乙醇沉淀后測定花生肽亞鐵螯合率,評價(jià)花生肽亞鐵的熱穩(wěn)定性,結(jié)果如圖4所示。
圖4 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的熱穩(wěn)定性Fig.4 Thermal stability of peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
由圖4可以看出,溫度在10~60℃范圍內(nèi),花生肽亞鐵金屬配位螯合物保持較好的熱穩(wěn)定性;溫度超過60℃后,亞鐵螯合率明顯下降。主要是由于溫度過高,花生肽亞鐵熱變性而熱沉,使花生肽亞鐵中的亞鐵離子由結(jié)合態(tài)變?yōu)橛坞x態(tài)[21]。通常情況下,花生肽亞鐵的儲(chǔ)運(yùn)和使用溫度為常溫;溫度37℃條件以下,亞鐵螯合率可保持在88%以上。由此可以說明,花生肽亞鐵金屬配位螯合物具有較好的熱穩(wěn)定性。
考察了花生肽亞鐵配位螯合物在pH值為1~13范圍內(nèi)的pH穩(wěn)定性,結(jié)果如圖5所示。
圖5 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的pH穩(wěn)定性Fig.5 pH stability of peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
由圖5可以看出,花生肽亞鐵金屬配位螯合物在pH值為1~8范圍內(nèi)保持較好的穩(wěn)定性。人體胃液的pH值一般在1.5~2.0左右,而花生肽亞鐵在pH值為1~2范圍內(nèi)也能保持80%以上的亞鐵螯合率,由此可以說明,花生肽亞鐵具有較好的酸耐受性,可耐受胃酸的降解作用。當(dāng)花生肽亞鐵作為亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑采用口服給藥時(shí),可在胃內(nèi)不被胃酸進(jìn)行大量降解,仍可以以結(jié)合形式經(jīng)腸小皮黏膜細(xì)胞進(jìn)入門靜脈有肝臟進(jìn)行代謝[22]。
考察了花生肽亞鐵金屬配位螯合物在不同體積分?jǐn)?shù)乙醇媒介中的溶解性,結(jié)果如圖6所示。
圖6 花生肽亞鐵金屬配位螯合物的醇溶性Fig.6 Alcohol solubility of peanut peptide-ferrous metal coordination chelator
由圖6可以看出,花生肽亞鐵金屬配合螯合物在不同體積分?jǐn)?shù)乙醇溶液媒介中的溶解度存在差異,以水溶液中的溶解度最好(溶解度定義為100%并作對照)。在體積分?jǐn)?shù)為10%的乙醇溶液中也具有較好的溶解性(溶解度為(96.25±1.63)%);隨著乙醇體積分?jǐn)?shù)的增加,花生肽亞鐵溶解度呈下降趨勢,特別是在無水乙醇中溶解度基本不溶[12,14],高濃度乙醇溶液中溶解性變差,不適宜以高濃度乙醇作為花生肽亞鐵的溶媒。由試驗(yàn)結(jié)果可知,在花生肽亞鐵制劑時(shí)可選擇去離子水或低濃度乙醇濃度作為溶媒。
花生肽亞鐵配位螯合物可作為亞鐵營養(yǎng)補(bǔ)充劑,其穩(wěn)定性是應(yīng)用研究的基礎(chǔ),研究其穩(wěn)定性可為花生肽亞鐵營養(yǎng)強(qiáng)化劑的制劑研究及儲(chǔ)運(yùn)提供良好理論支持。本研究對花生肽亞鐵進(jìn)行了結(jié)構(gòu)確診,并分析其熱穩(wěn)定性、pH穩(wěn)定性以及醇溶性。經(jīng)UV和FT-IR分析確定,花生肽亞鐵成功螯合,亞鐵離子與花生肽配體的羰基以共價(jià)配位健鍵合形成共軛結(jié)構(gòu)環(huán),多肽中氨基N與羧基O均參與了亞鐵的配位螯合。研究結(jié)果表明,花生肽亞鐵具有很好的熱穩(wěn)定性和pH穩(wěn)定性?;ㄉ膩嗚F在10~60℃條件下具有較好的熱穩(wěn)定性,在pH值1~8范圍內(nèi)保持較好的pH值穩(wěn)定性,在純水和體積分?jǐn)?shù)為10%稀乙醇溶液中,花生肽亞鐵保持較好的溶解性,而在高濃度乙醇溶液中溶解性較差。