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      一株產(chǎn)酯酶窖泥細(xì)菌的篩選、鑒定及酶學(xué)性質(zhì)研究

      2019-07-09 06:22:02楊源源儲鎮(zhèn)江何培新
      中國釀造 2019年6期
      關(guān)鍵詞:鏈長甘油酯酯酶

      韓 麗,李 磊,曾 毅,楊源源,儲鎮(zhèn)江,何培新,2

      (1.鄭州輕工業(yè)大學(xué) 食品與生物工程學(xué)院,河南 鄭州 450002;2.鄭州輕工業(yè)大學(xué) 食品生產(chǎn)與安全協(xié)同創(chuàng)新中心,河南 鄭州 450002)

      酯酶(esterase)是指能夠催化水解羧酸酯的所有酶的總稱,是目前較常見的生物催化劑之一[1],其廣泛存在于動植物和微生物中,尤其在微生物中種類最多[2-3]。微生物酯酶在細(xì)菌中分布最多,其廣泛存在于包括金黃葡萄球菌(Staphylococcus aureus)、鏈球菌(Streptococcus)、芽孢桿菌(Bacillus)和結(jié)核桿菌(Mycobacterium tuberculosis)等多種細(xì)菌中。

      酯酶作為重要的生物催化劑,其催化的反應(yīng)具有較高的底物專一性、區(qū)域選擇性和對應(yīng)選擇性[4],廣泛應(yīng)用于醫(yī)藥、食品、化工、環(huán)保等領(lǐng)域,尤其在白酒釀造業(yè)。隨著工業(yè)的發(fā)展,人們對酯酶的要求越來越高,因此,選育性質(zhì)特殊、催化活性高的酯酶成為近年來研究的熱點[5-8]。目前,研究學(xué)者主要從土壤、海洋樣品中篩選產(chǎn)酯酶細(xì)菌,為了獲得催化性能優(yōu)良、耐極寒或酷熱的酯酶,研究學(xué)者多在高山、極地、深?;蛘呋鹕娇谶M(jìn)行取樣,篩選產(chǎn)酯酶細(xì)菌[9]。鄭鴻飛等[10]從青島前海和膠州灣地區(qū)分離出一株酶活力和穩(wěn)定性較高的菌株EB-1,被鑒定為枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis)的亞種;王文文等[11]從自然發(fā)酵的黃皮果汁中分離出一株細(xì)菌C10,其產(chǎn)生的酯酶最適pH值為9.0、最適溫度為60℃;盛小禹等[12]從溫泉中分離得到一株的棲熱菌(Thermurs sp.)FD3041,其產(chǎn)酯酶FD2TAP的最適溫度為70℃,且在95℃處理60 min后仍然有75%的活性;ZAPPA S等[13]從火山中分離到一株異養(yǎng)古細(xì)菌Pyrococcusabyssi,其培養(yǎng)溫度為100℃,從中分離得到的胞內(nèi)堿性磷酸酯酶最適溫度為70℃。

      現(xiàn)有的報道中多從富含油脂的土壤中篩選能夠產(chǎn)酯酶的真菌或細(xì)菌[14-16],而鮮有從窖泥中篩選產(chǎn)酯酶菌株的報道。本研究從白酒窖泥中篩選出一株高產(chǎn)酯酶的菌株,對其進(jìn)行形態(tài)觀察和分子生物學(xué)鑒定,并對其產(chǎn)生的酯酶進(jìn)行純化和酶學(xué)性質(zhì)分析,以期對窖泥的改良與優(yōu)化提供一定的參考。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      1.1.1 材料

      窖泥:采集于河南周口宋河酒廠。

      1.1.2 試劑

      酵母粉、胰蛋白胨、葡萄糖、瓊脂粉(均為生化試劑):北京索萊寶科技有限公司;氯化鈉、聚乙烯醇、三丁酸甘油酯、羅丹明B(均為分析純)、細(xì)菌基因組脫氧核糖核酸(deoxyribonucleic acid,DNA)提取試劑盒、DNA聚合酶、2000Maker:上海生工生物工程有限公司;硫酸銨、硝酸銨、磷酸氫二鉀、氯化鈉、七水硫酸鎂、七水硫酸亞鐵(均為分析純):天津市永達(dá)化學(xué)試劑有限公司;丁酸酯、己酸酯、辛酸酯、癸酸酯、十二烷酸酯、十四烷酸酯、十六烷酸酯(均為分析純):上海麥克林生化科技有限公司。

      1.1.3 培養(yǎng)基

      三丁酸甘油酯乳化液:稱取3 g聚乙烯醇于80 mL蒸餾水中,沸水浴加熱、攪拌,直至全部溶解,冷卻后用蒸餾水定容至100 mL。采用3.0%的聚乙烯醇溶液制備含100 g/L三丁酸甘油酯的乳液,超聲波處理(功率40%,破碎5 s停3 s,總時間15 min),得到的乳化液為乳白色黏稠狀液體。

      LB液體培養(yǎng)基:胰蛋白胨10 g/L、酵母粉5 g/L、NaCl 10 g/L,pH 7.0。121℃高壓滅菌20 min。固體培養(yǎng)基中加入瓊脂粉20 g/L。

      種子培養(yǎng)基:牛肉膏3 g/L、蛋白胨5 g/L、葡萄糖5 g/L、NaCl 5 g/L、pH 7.0。121℃高壓滅菌20 min。

      發(fā)酵培養(yǎng)基:蛋白胨10 g/L、酵母粉5 g/L、氯化鈉10 g/L、pH 7.0。121℃高壓滅菌20 min。

      富集培養(yǎng)基:三丁酸甘油酯乳化液12 mL、酵母粉0.2 g/L、磷酸氫二鈉3.5 g/L、磷酸氫二鉀1.5 g/L、微量金屬離子,pH 7.5。121℃高壓滅菌20 min。

      三丁酸甘油酯固體培養(yǎng)基:硫酸銨0.5 g/L、硝酸銨0.1 g/L、磷酸氫二鉀1 g/L、氯化鈉1 g/L、七水硫酸鎂0.5 g/L、七水硫酸亞鐵0.1 g/L、酵母粉3 g/L、蛋白胨3 g/L,三丁酸甘油酯乳化液12 mL、瓊脂粉20 g,pH 7.0。121℃高壓滅菌25 min。

      篩選培養(yǎng)基:于三丁酸甘油酯固體培養(yǎng)基中加入2 mL 0.5%羅丹明B溶液,蒸餾水定容至1 L,于121℃高壓滅菌25 min。

      1.2 儀器與設(shè)備

      DH-600A電熱恒溫培養(yǎng)箱:北京中興偉業(yè)儀器有限公司;SW-CJ-2D雙人超凈工作臺:蘇州凈化設(shè)備有限公司;DMEX30生物顯微鏡:寧波舜宇儀器有限公司;FORMA-86C超低溫冰箱:鄭州金友寧儀器有限公司;ZWY-100H搖床:上海智誠分析儀器制造有限公司;AE224分析天平:北京賽多利斯天平有限公司;TGL-16G離心機:上海安亭科學(xué)儀器廠;SC-15恒溫水浴鍋、SCIENTZ-10N真空冷凍干燥機:寧波新芝生物科技有限公司;DYCZ-24KF四板垂直電泳儀:北京六一生物科技有限公司;C1000聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(polymerase chain reaction,PCR)儀:美國伯樂公司。

      1.3 方法

      1.3.1 產(chǎn)酯酶菌株的初篩

      稱取5 g窖泥樣品于100 mL無菌生理鹽水中,充分混勻后按1%(V/V)的接種量接種于富集培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)2 d。將富集液進(jìn)行梯度稀釋(10-1~10-6),每個梯度涂布于兩個三丁酸甘油酯平板,每塊平板涂布200μL,30℃倒置培養(yǎng)2 d至長出單菌落。挑取產(chǎn)生透明圈的單菌落點樣于篩選培養(yǎng)基平板上,30℃培養(yǎng)2 d,觀察透明圈,以菌落直徑和水解圈直徑的比值作為初篩依據(jù),篩選比值較大的菌落于LB固體培養(yǎng)基上分離純化。將得到的產(chǎn)酯酶細(xì)菌接種于5 mL LB液體培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)24 h后,保存于甘油中。

      1.3.2 產(chǎn)酯酶細(xì)菌的復(fù)篩

      將初篩得到的菌株接種于種子培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)24 h。按1%的接種量將種子液接種于發(fā)酵培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)48 h。取發(fā)酵液1 mL,8 000 r/min、4℃條件下離心10 min,即為粗酶液,通過測定酯酶酶活對菌株進(jìn)行復(fù)篩。

      酯酶酶活的測定[17]:采用棕櫚酸對硝基苯酯(p-nitrophenylpalmitate,pPNP)法測定酯酶活力。反應(yīng)體系中加入粗酶液15μL、pPNP(10 mmol/L)35μL、Tris-HCl(0.1 mol/L,pH=8.0)200μL,40℃水浴10 min,在波長410 nm處測定吸光度值。酯酶活力單位定義:在pH=8.0、40℃條件下,每分鐘水解產(chǎn)生1μmol的pNP所需的酶量定義為一個酶活力單位(U)。

      1.3.3 產(chǎn)酯酶細(xì)菌的鑒定

      形態(tài)觀察:將目標(biāo)菌株劃線于LB固體平板,30℃倒置培養(yǎng)24 h,觀察菌株的菌落形態(tài);參考國標(biāo)GB 4789.28—2013《食品微生物學(xué)檢驗培養(yǎng)基和試劑的質(zhì)量要求》對目標(biāo)菌株進(jìn)行革蘭氏染色并鏡檢。

      分子生物學(xué)鑒定:采用細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒提取目的菌株的基因組DNA,以其作為模板,使用引物27F(5′-AGTTTGATCMTGGCTCAG-3′)和1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)進(jìn)行PCR擴增。PCR反應(yīng)體系:DNA模板2 μL,10×PCR buffer(MgCl2)4 μL,2.5 mmol/L脫氧核糖核苷三磷酸(deoxy-ribonucleoside triphosphate,dNTP)mix 3.2μL,上、下游引物(10μmol/L)各0.8μL,pfu DNA聚合酶(2.5 U/mL)0.8μL,雙蒸水(ddH2O)補足至40μL。PCR擴增條件:94℃預(yù)變性5 min;94℃變性30 s,55℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,30個循環(huán);72 ℃再延伸10 min。PCR擴增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,回收PCR擴增產(chǎn)物并送至蘇州金唯智生物科技有限公司進(jìn)行測序。測序結(jié)果提交至美國國立生物技術(shù)信息中心(national center for biotechnology information,NCBI)的GenBank數(shù)據(jù)庫中進(jìn)行Blast同源性比對。選取同源性較高的模式菌株的16S rDNA序列,采用Mega 5.0軟件中的鄰接(neighbor joining,NJ)法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育。

      1.3.4 酯酶的純化

      將目標(biāo)細(xì)菌劃線于LB固體培養(yǎng)基,30℃培養(yǎng)24 h。挑取單菌落接種于50 mL種子培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min條件下培養(yǎng)48 h。按照1%的接種量將種子液接種于1 L發(fā)酵培養(yǎng)基中,30℃、180 r/min培養(yǎng)48 h,8 000 r/min、4℃條件下離心20 min,取上清液備用。

      由分級沉淀得到純化酯酶的最佳硫酸銨飽和度為60%。向上清液中緩慢加入硫酸銨沉淀,使其飽和濃度達(dá)到60%,4℃過夜,5 000 r/min、4℃離心10 min,即可得到蛋白沉淀。將得到的蛋白沉淀溶于Tris-HCl(0.1 mol/L,pH=8.0)中,移入透析袋(截留分子質(zhì)量:8 000~14 000 Da)中,透析液為Tris-HCl(0.1 mol/L,pH=8.0)。每隔4 h換一次透析液,直至硫酸銨沉淀完全去除。取一定量的透析液,加入高濃度的硫酸鋇溶液,如無白色沉淀生成表明硫酸銨已透析完全。透析液5 000 r/min、4℃離心10 min,去除未溶沉淀,然后用液氮速凍,冷凍干燥機過夜[18]。將凍干的酶粉溶解于Tris-HCl(0.1 mol/L,pH=8.0)中,即可得到粗純化的酶液。酶液經(jīng)十二烷基硫酸鈉-聚丙烯酰胺凝膠電泳(sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis,SDS-PAGE)檢測。

      1.3.5 酯酶酶學(xué)性質(zhì)研究

      最適溫度及溫度穩(wěn)定性:將純化的酶液分別在不同溫度(20℃、30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃)條件下孵育10 min,測定酶活,確定酯酶的最適溫度。在pH=8.0的條件下,純化的酶液在不同溫度(20℃、30℃、40℃、50℃、60℃、70℃、80℃)條件下孵育30 min,測定殘余的酶活力來分析酯酶的溫度穩(wěn)定性。

      最適pH及pH穩(wěn)定性:將反應(yīng)體系的pH調(diào)整至5.0~10.0,測定酯酶在不同pH值(5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0)條件下的酶活,確定酯酶的最適pH。酶液在不同pH(5.0、6.0、7.0、8.0、9.0、10.0)的緩沖溶液中40℃孵育30 min,測定殘余的酶活力來分析酯酶的pH穩(wěn)定性。

      底物鏈長的選擇性:反應(yīng)體系中添加不同碳鏈長的對硝基苯酚脂肪酸酯乙醇溶液(10 mmol/L),包括對丁酸酯、己酸酯、辛酸酯、癸酸酯、十二烷酸酯、十四烷酸酯、十六烷酸酯。在相同的體系下測定酯酶對不同底物的水解酶活。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 產(chǎn)酯酶菌株的篩選結(jié)果

      經(jīng)過初篩與復(fù)篩從宋河酒廠窖泥中共篩選出20株產(chǎn)酯酶的細(xì)菌,將其編號為SH-1~SH-20。20株細(xì)菌在三丁酸甘油酯平板上形成的透明圈直徑如表1所示,酯酶酶活如表2所示。

      表1 20株產(chǎn)酯酶細(xì)菌在三丁酸甘油酯平板的透明圈直徑Table 1 Transparent circle diameter of 20 esterase-producing bacteria on tributyrin plates

      由表1可知,從窖泥中分離出的20株菌株中,14株菌株在三丁酸甘油酯平板上產(chǎn)生的透明圈直徑≥5 mm,占窖泥樣品中分離菌株總數(shù)的70%;3株菌株(SH-17、SH-1和SH-18)的透明圈直徑達(dá)>7 mm,其中菌株SH-17的透明圈直徑最大,為7.56 mm。

      表2 20株產(chǎn)酯酶細(xì)菌的酯酶活力測定結(jié)果Table 2 Determination results of esterase activity of 20 esterase-producing bacteria

      由表2可知,pPNP法測定酶活力復(fù)篩結(jié)果與三丁酸甘油酯平板法初篩結(jié)果一致。20株菌株中4株菌株的酶活力>2 U/mL,占篩選菌株的25%,其中菌株SH-17的酯酶活力最高,為2.83 U/mg。因次,選取菌株SH-17進(jìn)行鑒定。

      2.2 菌株SH-17的鑒定結(jié)果

      菌株SH-17在LB固體平板上的菌落形態(tài)、革蘭氏染色結(jié)果如圖1所示。由圖1可知,菌株SH-17的菌落呈淡黃色、光滑、圓潤、圓形,為革蘭氏陰性菌。

      圖1 菌株SH-17的菌落形態(tài)(A)和革蘭氏染色結(jié)果(B)Fig.1 Colony morphology(A)and gram staining result(B)of strain SH-17

      菌株SH-17的16S rDNA PCR擴增產(chǎn)物經(jīng)1%瓊脂糖凝膠電泳檢測,結(jié)果如圖2所示。由圖2可知,菌株SH-17的16S rDNA序列堿基長度在1 450 bp左右,與預(yù)期結(jié)果相符,進(jìn)行測序。將菌株SH-17的16S rDNA測序結(jié)果進(jìn)行Blast比對,采用Mega5.0軟件的NJ法構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹,如圖3所示。

      圖2 菌株SH-17的16S rDNA PCR擴增產(chǎn)物瓊脂糖凝膠電泳圖Fig.2 Agarose gel electrophoresis of 16S rDNA PCR amplification product of strain SH-17

      圖3 基于16S rDNA序列菌株SH-17的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.3 Phylogenetic tree of strain SH-17 based on 16S rDNA sequences

      由圖3可知,菌株SH-17與約氏不動桿菌(Acinetobacter johnsonii)有最高相似度,同源性達(dá)到98.57%。結(jié)合形態(tài)學(xué)特征及革蘭氏染色結(jié)果,鑒定菌株SH-17為約氏不動桿菌(Acinetobacter johnsonii)。

      2.3 酯酶的純化結(jié)果

      采用飽和度60%的硫酸銨對酯酶進(jìn)行純化后,蛋白回收率為(42.19±0.36)%,酶活力回收率為(78.29±0.59)%,純化倍數(shù)為(1.68±0.11)倍。將經(jīng)過硫酸銨沉淀和冷凍干燥后的酶粉溶于Tris-HCl(0.1 mol/L,pH=8.0)中,進(jìn)行SDS-PAGE分析,結(jié)果如圖4所示。由圖4可知,純化的蛋白條帶單一且較清晰,其分子質(zhì)量約為42 kDa。

      圖4 純化蛋白聚丙烯酰胺凝膠電泳結(jié)果Fig.4 Polyacrylamide gel electrophoresis results of purified protein

      2.4 酯酶酶學(xué)性質(zhì)的研究

      2.4.1 酯酶的最適溫度及溫度穩(wěn)定性

      在20~80℃的溫度范圍內(nèi),酯酶活力隨溫度的變化情況如圖5所示。由圖5可知,菌株SH-17所產(chǎn)酯酶在20~80℃的溫度范圍內(nèi)均有活性,且隨著溫度的升高酶活性呈先升高后降低的趨勢。當(dāng)溫度為40℃時,酶活力最高,因此,該酯酶的最適反應(yīng)溫度為40℃。

      圖5 溫度對酯酶酶活的影響Fig.5 Effect of temperature on esterase activity

      酯酶經(jīng)不同溫度(20~80℃)熱處理30 min后,酯酶活力變化結(jié)果如6所示。由圖6可知,酯酶經(jīng)20~40℃處理30 min仍有90%以上的酶活力,而溫度高于40℃之后處理30 min后,酶活不斷降低,當(dāng)溫度高于60℃之后,相對酶活僅為10%,此時的酯酶已喪失大部分活性,說明該酯酶耐高溫性能較差。

      圖6 酯酶的溫度穩(wěn)定性測定結(jié)果Fig.6 Determination results of temperature stability of esterase

      2.4.2 酯酶的最適pH值及pH穩(wěn)定性

      40℃條件下菌株SH-17所產(chǎn)酯酶在pH值為5~10條件下酶活力變化如圖7所示。由圖7可知,菌株SH-17所產(chǎn)酯酶在pH值為5和6時基本無催化活性,當(dāng)pH>6之后,酶的催化活性隨pH值增加而升高,當(dāng)pH=8時,達(dá)到最高催化活性,隨后酯酶的催化活性不斷降低,但在pH=10時該酶仍有20%的催化活性,說明該酶是一種弱堿性酯酶,其最適反應(yīng)pH值為8。

      圖7 pH值對酯酶酶活的影響Fig.7 Effect of pH on esterase activity

      圖8 酯酶的pH值穩(wěn)定性測定結(jié)果Fig.8 Determination results of pH value stability of esterase

      酯酶在40℃條件下經(jīng)不同pH(5~10)處理30 min后,酯酶活力變化結(jié)果如8所示。由圖8可知,酯酶經(jīng)過不同pH處理30 min,在pH7.0~9.0的范圍內(nèi),其活力保持在60%以上;而在pH<7.0或pH>9.0的條件下,其酶活穩(wěn)定性變低。結(jié)果表明,該酯酶在中性偏堿的環(huán)境中相對穩(wěn)定。

      2.4.3 底物碳鏈長的選擇性

      以C4~C16相應(yīng)的酯為底物測定菌株SH-17所產(chǎn)酯酶在40℃、pH=8.0條件下對不同底物的水解酶活,結(jié)果如圖9所示。由圖9可知,該酯酶對6個碳的底物催化活性最高,對于碳鏈長>12的底物催化活性較低。結(jié)果表明,該酯酶對鏈長較短的底物催化活性較高,最適反應(yīng)底物碳鏈長為6。推測該酯酶作用于酯化反應(yīng)時可能對乙酸、己酸等短鏈酸有較高的催化活性,在白酒發(fā)酵過程中可以增加白酒中乙酸乙酯、己酸乙酯等香味成分[19-20],對豐富白酒風(fēng)味具有一定意義且對窖泥的評估和改良也有一定的參考價值。

      圖9 酯酶對不同鏈長底物的水解活力Fig.9 Hydrolytic activity of esterase on substrates with different chain length

      3 結(jié)論

      本研究從白酒窖泥中共篩選出20株產(chǎn)酯酶菌株,其中菌株SH-17的酯酶活力最高,為2.83 U/mL。經(jīng)形態(tài)觀察和分子生物學(xué)技術(shù)鑒定其為約氏不動桿菌(Acinetobacter johnsonii)。經(jīng)飽和度60%的硫酸銨鹽析得到該酯酶分子質(zhì)量約為42 kDa,最適反應(yīng)溫度為40℃、最適pH值為8.0,高溫耐受性差,在中性偏堿的環(huán)境中相對穩(wěn)定,且對碳鏈長較短的底物催化活性較高,最適反應(yīng)底物碳鏈長為6。

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