徐兵,陸灝鈺,徐倩,陳義勇
(常熟理工學院生物與食品工程學院,江蘇常熟215500)
銀耳(Tremella fuciformis)又名白木耳,含有酚類、黃酮類及膳食纖維等[1]物質(zhì),銀耳多糖(polysaccharides from Tremella fuciformis,TFP)是銀耳的主要活性成分[2],近年來,國內(nèi)外研究發(fā)現(xiàn),銀耳多糖具有免疫調(diào)節(jié)[3]、抗腫瘤[4]、抗氧化[5]、降血糖[6]等功能,分子修飾對多糖活性有很大的影響[7]。至今已發(fā)現(xiàn)多糖的活性與其結(jié)構(gòu)有著密切的關(guān)系,經(jīng)過乙?;揎椀亩嗵撬苄栽黾樱锘钚缘玫矫黠@的增強[8]。然而目前,銀耳多糖的修飾主要集中在磷酸化[9]、硫酸化[10]等方面,對銀耳多糖乙?;揎椆に嚨难芯可形匆妶蟮馈榱诉M一步研究銀耳多糖乙?;揎椉捌淇寡趸钚裕疚难芯苛艘宜狒昧?、反應時間和反應溫度對TFP 乙?;磻挠绊懀⒗庙憫娣▽EP 乙?;揎椆に嚄l件進行優(yōu)化,同時探討采用IC50法(自由基清除率)測定乙?;y耳多糖(acetylated polysaccharides from Tremella fuciformis,Ac-TFP)的抗氧化活性。旨在為乙?;y耳多糖的工業(yè)化制備奠定基礎(chǔ)。
銀耳:市售;1,1-二苯基-2-苦苯肼(DPPH):上??柹锛夹g(shù)有限公司;三羥甲基氨基甲烷(trihydroxymethyl aminomethane,Tris):上??柹锛夹g(shù)有限公司;無水乙醇、氫氧化鈉、乙酸酐、鹽酸、過氧化氫、硫酸亞鐵、水楊酸、酚酞、鄰苯三酚等試劑均為分析純。
DJ-04 粉碎機:上海淀久中藥機械制造有限公司;HH-2 智能數(shù)顯恒溫水浴鍋:金壇市杰瑞爾電器有限公司;CR22GⅡ高速冷凍離心機:日本HITACHI 公司;RE-52A 型旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀:上海亞榮生化儀器有限公司;Alpha 1-2 LD 冷凍干燥機:德國 CHRIST 公司;ME104E 型分析天平、FE20 型 pH 計:瑞士 METTLER TOLEDO 公司。
1.3.1 銀耳多糖的制備
銀耳經(jīng)過干燥,然后機械粉碎,并過60 目篩,獲得銀耳粉。將銀耳粉末與蒸餾水按照料液比1∶50(g/mL),90 ℃條件下水浴浸提6 h,浸提液離心(4 500 r/min)10 min,合并上清液。將上清液減壓濃縮至一定體積,加入濃縮后體積的1/4 的Sevage 試劑(正丁醇∶三氯甲烷=1∶4,體積比),攪拌 0.5 h,將其混勻,然后離心(4 500 r/min)10 min,得到上清液,加入4 倍體積的95%的乙醇,在4 ℃條件下醇沉24 h,離心,沉淀冷凍干燥后得到TFP 備用。
1.3.2 乙?;y耳多糖(Ac-TFP)的制備
參考宋逍等[11]的方法并適當調(diào)整。精確稱取100 mg TFP 樣品,溶解在10 mL 的蒸餾水中,用氫氧化鈉溶液(0.5 mol/L)調(diào)節(jié)pH 值至9。在30 ℃條件下,向多糖溶液滴加一定量的乙酸酐,滴加完畢后,恒溫反應2 h,待反應結(jié)束,用1 mol/mL 的HCl 將反應液的pH 值調(diào)至7.0,將反應液裝入截留分子量為15 000 kD 的透析袋中,用蒸餾水透析48 h,透析液經(jīng)減壓濃縮后,用4 倍體積分數(shù)為95%的乙醇醇沉24 h,沉淀冷凍干燥即為乙?;y耳多糖(Ac-TFP)。
1.3.3 乙?;〈龋╠egree of substitution,DS)的測定
稱取TFP10 mg,溶解在10 mL 的0.01 mol/L 的NaOH 溶液中,以酚酞作為指示劑(1 ~2),并用0.01 mol/L 的HCl 溶液滴定至紅色退去。記錄滴定時的HCl 用量,并按下列公式計算出取代度[12]:
式中:A 為乙?;?,%;V0為加入 NaOH 溶液的體積,mL;C0為加入 NaOH 溶液的濃度,mol/L;V1為消耗 HCl 溶液的體積,mL;C1為 HCl 溶液的濃度,mol/L;m為樣品質(zhì)量,g。
1.3.4 單因素試驗
1.3.4.1 乙酸酐用量對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
精確稱取100 mg 的TFP,在反應時間3 h,反應溫度 60 ℃的條件下,探討乙酸酐用量(2.0、2.5、3.0、3.5、4.0 mL)對TFP 乙酰化反應的影響,確定最佳乙酸酐用量。
1.3.4.2 反應時間對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
精確稱取100 mg 的TFP,在乙酸酐用量3.0 mL,反應溫度 60 ℃的條件下,探討反應時間(1、2、3、4、5 h)對TFP 乙酰化反應的影響,確定最佳反應時間。
1.3.4.3 反應溫度對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
精確稱取100 mg 的TFP,在乙酸酐用量3.0 mL,反應時間 3 h 的條件下,探討反應溫度(20、30、40、50、60、70 ℃)對TFP 乙?;磻挠绊懀_定最佳反應溫度。
1.3.5 響應面試驗設計
根據(jù)單因素試驗的結(jié)果,通過響應面試驗設計,以取代度值為指標,以反應時間、反應溫度和乙酸酐用量為3 個因素,設計三因素三水平的響應面試驗,優(yōu)化TFP 乙?;揎椆に嚄l件。
1.3.6 Ac-TFP 的結(jié)構(gòu)表征
分別以干燥的 TFP 和 Ac-TFP 粉末與KBr 為1∶1 000 的質(zhì)量比例進行研磨,充分混勻后壓片,在波長為4 000 cm-1~400 cm-1的范圍下進行紅外光譜掃描,比較TFP 和Ac-TFP 的紅外光譜圖。
1.3.7 抗氧化活性測定
1.3.7.1 ·OH 清除能力測定
分別向試管中加入1 mL 9.0 mmol/L 的FeSO4、1 mL 9.0 mmol/L 的水楊酸乙醇溶液,搖勻,然后分別加入1 mL 的不同濃度的修飾后的 Ac-TFP 溶液(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 g/L) 和 1 mL 不同濃度的修飾前的 TFP 溶液(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 g/L),充分混勻后,加入 1 mL 8.8 mmol/L 的 H2O2,混勻,置于 37 ℃水浴鍋中水浴30 min 進行反應,以蒸餾水作為參比,在波長為510 nm處測定各反應溶液的吸光度值A(chǔ)i。空白對照組以相同體積蒸餾水替代多糖樣品測吸光度值。并按照下列公式進行計算·OH 的清除率[13]。
式中:Ai為不同濃度TFP 和Ac-TFP 的吸光度值;Aj為水楊酸以蒸餾水為替代物的吸光度值;A0為不同濃度TFP 和Ac-TFP 以蒸餾水為替代物的吸光度值。
1.3.7.2 DPPH 自由基清除能力測定
分別將2 mL 的不同濃度的TFP 和Ac-TFP 溶液(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 g/L) 和 2 mL 濃度為 0.1 mmol/L的DPPH 溶液振蕩搖勻,搖勻后于25 ℃左右下避光反應30 min,在波長為517 nm 處測定吸光度值,并按照下列公式進行計算DPPH 自由基的清除率[14]。
式中:A2為不同濃度TFP 和Ac-TFP 的吸光度值;A1為不同濃度TFP 和Ac-TFP 以蒸餾水為替代物的吸光度值;A0為DPPH 以蒸餾水為替代物的吸光度值。
1.3.7.3 O2-·清除能力測定
在試管中加入 4.5 mL 的 Tris-HCl 緩沖液(50 mmol/L,pH8.2)、1 mL 不同濃度的 TFP 和 Ac-TFP溶液(0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 g/L)及 3.2 mL 蒸餾水,搖勻后在25 ℃的水浴鍋中水浴20 min,再加入0.3 mL 的7 mmol/L 的鄰苯三酚溶液,置于25 ℃的水浴鍋中反應3 min,隨即用10 mol/L 的HCl 溶液終止反應,并在波長為325 nm 處測定吸光度值為A??瞻讓φ战M以蒸餾水代替多糖樣品,測得的吸光度值為A0。并按照下列公式計算O2-·的清除率[15]。
式中:A 為不同濃度TFP 和Ac-TFP 的吸光度值;A0為不同濃度TFP 和Ac-TFP 以蒸餾水為替代物的吸光度值。
2.1.1 乙酸酐用量對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
乙酸酐的用量對TFP 乙?;磻挠绊懸妶D1。
從圖1 中可知,TFP 乙?;娜〈认仁浅噬仙厔?,在乙酸酐用量為3 mL 時,達到最大值,繼續(xù)增加乙酸酐的用量,TFP 乙酰基的取代度開始下降。這可能是因為隨著乙酸酐用量的增多,增加了TFP 乙?;磻膸茁?,乙酰基取代度隨之增大,但是當乙酸酐的用量過多時,增大了乙酸酐水解的副反應程度,反應體系的pH 值逐漸下降,從而導致TFP 乙?;娜〈戎饾u下降。
圖1 乙酸酐用量對TFP 乙?;〈鹊挠绊慒ig.1 Effect of acetic anhydride amount on substitution degree of Ac-TFP
2.1.2 反應時間對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
反應時間對TFP 乙?;磻挠绊懸妶D2。
圖2 反應時間對TFP 乙?;〈鹊挠绊慒ig.2 Effect of reaction time on substitution degree of Ac-TFP
從圖2 中可知,TFP 乙?;娜〈入S著反應時間的增加而增大,但是在反應時間超過2 h 之后,繼續(xù)延長反應時間,TFP 乙?;〈妊杆俳档停@可能是因為Ac-TFP 產(chǎn)物在體系中并不穩(wěn)定,隨著反應時間的延長,增加了反應物之間的碰撞幾率,部分產(chǎn)物發(fā)生了分解,引起乙?;潭冉档?。
2.1.3 反應溫度對TFP 乙?;磻挠绊?/p>
反應溫度對TFP 乙酰化反應的影響見圖3。
由圖3 可知,在 30 ℃~60 ℃的溫度范圍內(nèi),TFP 乙?;〈戎饾u增大,在反應溫度超過60 ℃,TFP 乙?;娜〈乳_始變小??赡苁且驗樵谝欢ǖ臏囟确秶鷥?nèi),反應溫度越高,反應物的活性就會越強,TFP 乙酰基的取代度就隨之增大,但當溫度超過60 ℃時,由于乙酸酐的水解速度過快,進而導致TFP 乙酰基的取代度相應減小。
圖3 反應溫度對TFP 乙?;〈鹊挠绊慒ig.3 Effect of reaction temperature on substitution degree of Ac-TFP
2.2.1 響應模型的建立
在單因素試驗結(jié)果的基礎(chǔ)上,以乙?;〈葹橹笜?,設計以反應時間(A)、反應溫度(B)和乙酸酐用量(C)三因素的回歸方程來擬合因素與響應值之間的函數(shù)關(guān)系,試驗因素和水平設計見表1,響應面試驗設計方案及結(jié)果見表2,響應面分析得出的回歸模型參數(shù)方差分析見表3。
表1 響應面試驗因素與水平設計表Table 1 Factors and levels designed for response surface analysis
表2 響應面試驗結(jié)果Table 2 Experimental results for response surface analysis
表3 回歸模型方差分析Table 3 Analysis of variance for the fitted quadratic polynomial mode
利用Design-Expert 軟件對表2 中的試驗結(jié)果進行二次方程擬合,得到TFP 對反應時間(A)、反應溫度(B)和乙酸酐用量(C)與乙?;〈龋╕)之間的二次多項回歸方程的模型為:
Y=0.43-0.089A-0.001B-0.018C-0.006 75AB-0.015AC-0.038BC-0.093A2-0.048B2-0.06C2
表3 中的數(shù)據(jù)顯示,F(xiàn) 值為 44.96,P<0.000 1,結(jié)果為二次多項回歸方差的模型極顯著,失擬誤差的P 值為0.095 6,大于0.05,結(jié)果為不顯著,則表明建模成功。擬合得到的二次多項回歸方程系數(shù)R2=0.983 0,證明建??尚哦容^高。
表3 的方差分析結(jié)果中還可看出,試驗組合中的各因素中,A 和C 的P 值都小于0.05,即反應時間和乙酸酐用量對Ac-TFP 乙酰基取代度的影響顯著,并且時間因素的影響最為顯著,3 個因素對Ac-TFP 乙?;〈鹊挠绊懘笮椋悍磻獣r間(A)>乙酸酐用量(C)>反應溫度(B)。
2.2.2 TFP 乙酰化修飾響應面分析
反應時間和反應溫度對TFP 乙?;〈鹊挠绊懶Ч妶D4。
由圖4 可知,相較于反應溫度,反應時間的影響更顯著,曲線更陡,等高線更密集。反應時間和乙酸酐用量對TFP 乙?;〈鹊挠绊懶Ч妶D5。
由圖5 可知,相較于乙酸酐用量,反應時間對TFP乙?;〈鹊挠绊懶Ч鼮轱@著,曲線更陡,等高線更密集。反應溫度和乙酸酐用量對TFP 乙?;〈鹊挠绊懶Ч妶D6。
圖4 反應時間和反應溫度對取代度的影響Fig.4 Effects of reaction time and reaction temperature on substitution degree of Ac-TFP
圖5 反應時間和乙酸酐用量對取代度的影響Fig.5 Effects of reaction time and acetic anhydride amount on substitution degree of Ac-TFP
圖6 反應溫度和乙酸酐用量對取代度的影響Fig.6 Effects of reaction temperature and acetic anhydride amount on substitution degree of Ac-TFP
結(jié)果顯示為反應溫度和乙酸酐用量相比較而言,對TFP 乙?;〈鹊挠绊懴嗖畈淮螅换ビ绊戄^為顯著,從曲線陡的程度看來,乙酸酐用量對TFP 乙?;揎椀挠绊懗潭纫笥诜磻獪囟葘FP 乙酰化修飾的影響程度。
2.2.3 TFP 乙?;揎椬罴压に嚄l件確定及驗證
利用Design-Expert 8.06 軟件對響應面試驗結(jié)果進行分析,可預測得到TFP 乙?;揎椬罴压に嚄l件為:反應溫度61.04 ℃,反應2.37 h,添加的乙酸酐用量2.89 mL,在該條件下,乙?;y耳多糖取代度為0.39。按照此預測條件進行驗證試驗,為使試驗更具有可行性,調(diào)整預測工藝條件為:反應時間2.4 h,反應溫度61 ℃以及乙酸酐用量為2.9 mL。重復試驗3 次,得到的DS 值為0.385,與預測值差異很小,證明建立的模型可靠。
TFP 和Ac-TFP 的紅外光譜圖見圖7。
圖7 TFP 和Ac-TFP 的紅外光譜圖Fig.7 Infrared spectra of TFP and Ac-TFP
TFP 和Ac-TFP 的特征峰與對應的波長和基團振動情況見表4。
表4 TFP 和Ac-TFP 特征峰對應的波長和基團振動情況Table 4 Wave numbers and peaks belong to the Fourier transform infrared(FTIR)spectra of TFP and Ac-TFP
3 416 cm-1左右為糖分子內(nèi)或分子間氫鍵O-H 伸縮振動峰,2 932cm-1左右為次甲基(-CH2-)中的 C-H 的伸縮振動的吸收峰[16]。修飾后Ac-TFP 在1 727.19 cm-1處出現(xiàn)的吸收峰為酯基C=O 雙鍵的收縮振動,同時在1 255.27 cm-1處有一個較弱的酯基C-O 的收縮振動[17],說明乙?;苌镏幸呀?jīng)成功加入了乙酰基。
2.4.1 Ac-TFP 對·OH 清除作用
TFP 和 Ac-TFP 對·OH 的清除作用見圖8。
圖8 TFP 和 Ac-TFP 對·OH 的清除作用Fig.8 Scavenging capacity of TFP and Ac-TFP on hydroxyl free radicals
從圖中8 可以看出,TFP 對·OH 具有較為良好的清除效果。在多糖質(zhì)量濃度為0.2 mg/mL~1.0 mg/mL時,TFP 和 Ac-TFP 對·OH 的清除能力逐漸變強,尤其是在0.8 mg/mL 后,兩者對·OH 的清除效果增強的最為明顯。且TFP 對·OH 的清除作用明顯高于Ac-TFP對·OH 的清除作用,在多糖質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL 時,TFP 對·OH 的清除率達到 77.52%,而 Ac-TFP 對·OH的清除率為60.11%。一般來說,化學基團的引入可能會增強多糖的活性,或使多糖產(chǎn)生新的活性,但同時也可能使某些活性降低或者消失。與TFP 相比,Ac-TFP 對·OH 的清除作用有所減弱,可能與乙?;氲奈恢玫扔嘘P(guān),抑制了多糖的生物活性的發(fā)揮,從而降低了對·OH 的清除作用。
2.4.2 Ac-TFP 對DPPH 自由基的清除作用
TFP 和Ac-TFP 對DPPH 自由基的清除作用見圖9。
圖9 TFP 和Ac-TFP 對DPPH 的清除作用Fig.9 Scavenging capacity of TFP and Ac-TFP on DPPH free radicals
從圖9 可以看出,在一定的多糖質(zhì)量濃度范圍內(nèi),TFP 和Ac-TFP 對DPPH 自由基的清除效果都隨著多糖質(zhì)量濃度的升高而增強,與TFP 相比,Ac-TFP 對DPPH 自由基的清除作用增強,這可能是因為乙?;揎検沟勉y耳多糖分子間的構(gòu)象發(fā)生了改變,乙?;囊朐黾恿硕嗵欠肿拥娜芙庑?,更易于發(fā)揮生物活性作用,使其對DPPH 自由基的清除效果得到了相應的增強。王之珺等[18]研究了乙酰化青錢柳多糖對DPPH自由基的清除能力,發(fā)現(xiàn)乙酰化修飾后的青錢柳多糖對DPPH 自由基的清除能力明顯增強。
2.4.3 Ac-TFP 對 O2-·的清除作用
TFP 和 Ac-TFP 對 O2-·的清除作用見圖10。
圖10 TFP 和 Ac-TFP 對 O2-·的清除作用Fig.10 Scavenging capacity of TFP and Ac-TFP on superoxide anion free radicals
從圖10 可以看出,在一定質(zhì)量濃度范圍內(nèi),TFP和Ac-TFP 對O2-·自由基均有一定的清除作用,且隨著多糖質(zhì)量濃度的升高而增強,且增強的幅度在逐漸增大,但Ac-TFP 的清除作用弱于TFP,表明對TFP 進行乙酰化修飾后會減弱其對O2-·自由基的清除能力。
該文以TFP 為原料,使用乙酸酐法對TFP 進行乙酰化修飾,以取代度為指標,利用響應面優(yōu)化分析確定了TFP 乙?;揎椀淖罴压に嚄l件為:反應時間2.37 h,反應溫度為61.04 ℃,乙酸酐用量為2.89 mL,在此工藝條件下,乙酰基取代度為0.39??寡趸钚越Y(jié)果表明,TFP 和 Ac-TFP 對·OH、DPPH 自由基和 O2-·均有一定的清除能力,且清除能力隨多糖質(zhì)量濃度的升高而增大。與TFP 相比,Ac-TFP 對DPPH 自由基的清除能力有所增強,而對·OH 和O2-·清除能力減弱。