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      一株香蘭素高產(chǎn)菌株的復(fù)合誘變篩選

      2020-01-06 07:29:48邢晨光
      生物化工 2019年6期
      關(guān)鍵詞:香蘭素亞硝酸鈉致死率

      邢晨光

      (廈門歐米克生物科技有限公司,福建廈門 361000)

      香蘭素(Vanillin),又名香草醛、香草素;在自然環(huán)境中存在于蘆筍、咖啡、香莢蘭等植物中,具有濃厚的奶香氣味,留香持久[1-2],是一種非常重要的食品香料;在食品、煙草、日化品中可以作為一種增香劑,提升香氣品質(zhì)。由于其廣泛的使用領(lǐng)域,國內(nèi)外所生產(chǎn)出的香蘭素遠遠不能滿足目前的市場需求[3-5]。

      目前,市場上香蘭素的生產(chǎn)來源主要包括植物提取、化學(xué)合成、微生物轉(zhuǎn)化和酶法合成[6]。植物中香蘭素含量較低,導(dǎo)致提取收率較低、成本較大,因此植物提取的香蘭素遠遠不能滿足市場需要;化學(xué)合成法生產(chǎn)由于環(huán)境污染等問題也越來越受到抵制,因此微生物轉(zhuǎn)化以及酶合成法已經(jīng)成為了生產(chǎn)香蘭素的一種趨勢,成為后續(xù)研究發(fā)展的重要方向[7]。

      本文采用以沙鏈霉菌(Streptomyces psammoticus)OMK-4為出發(fā)菌株,采用紫外誘變、NaNO2誘變以及復(fù)合誘變的方法,在原有基礎(chǔ)上篩選出一株高產(chǎn)且具有穩(wěn)定遺傳的香蘭素菌株。該研究結(jié)果對微生物安全、高效篩選香蘭素高產(chǎn)菌株以及香蘭素的工業(yè)化生產(chǎn)都具有重要的參考意義。

      1 材料與方法

      1.1 原始菌株

      沙鏈霉菌OMK-4,保藏于廈門歐米克生物科技有限公司菌種室。

      1.2 主要設(shè)備

      高效液相色譜(美國安捷倫,1260Ⅱ)、高效氣相色譜(日本島津,GC-2030)、生物傳感器(山東科學(xué)院,SBA-40E)、紫外分光光度計(日本島津,UV-1780)、pH計(瑞士梅特勒,S-210S)、搖床(上海博訊,BSD-YX2600)、生物安全柜(新加坡ESCO,AC2-5S1)等。

      1.3 主要試劑

      1.3.1 分析純試劑:

      香蘭素標品(sigma)、阿魏酸標品(sigma)、硝酸鉀(西隴科學(xué))、硫酸亞鐵(西隴科學(xué))、亞硝酸鈉(西隴科學(xué))、磷酸二氫鉀(西隴科學(xué))、磷酸氫二鉀(西隴科學(xué))、硫酸銨(西隴科學(xué))、碳酸鈣(西隴科學(xué))、氯化鈉(西隴科學(xué))、可溶性淀粉(西隴科學(xué))、硫酸鎂(西隴科學(xué))、酵母浸粉(OXOID)、尿素(西隴科學(xué))等。

      1.3.2 化學(xué)純試劑

      玉米漿粉(天津利隆生化)、瓊脂(北京中科昆蟲生物)、斐林試劑(北京萬佳首化生物)

      1.4 主要培養(yǎng)基

      1.4.1 固體平板培養(yǎng)基

      可溶性淀粉20.0 g,氯化鈉 l0.5 g,硝酸鉀 1.0 g,磷酸氫二鉀 0.5 g,硫酸鎂 0.5 g,硫酸亞鐵 0.01 g,瓊脂25.0 g;水1 000 mL;pH 7.4~7.6。

      1.4.2 種子培養(yǎng)基

      可溶性淀粉3.5 g,磷酸二氫鉀0.5 g,尿素0.3 g,硫酸鎂0.1 g,碳酸鈣0.3 g,酵母浸粉1.0 g,玉米漿粉1.0 g,硫酸銨0.6 g,阿魏酸0.2 g;水1 000 mL;pH 7.5左右。

      1.4.3 發(fā)酵培養(yǎng)基

      可溶性淀粉5.0 g,磷酸二氫鉀 0.3 g,尿素 0.5 g,硫酸鎂0.1 g,碳酸鈣 2.0 g,酵母浸粉1.0 g,硫酸銨0.5 g,阿魏酸2.0 g;水1 000 mL,pH 7.5~8.5。

      1.5 分析方法

      1.5.1 菌體濃度

      取培養(yǎng)液用蒸餾水稀釋一定倍數(shù)后混勻,在620 nm波長下,利用分光光度計測定吸光度。

      1.5.2 殘?zhí)菧y定

      采用斐林試劑滴定法進行測定。

      1.5.3 香蘭素含量的測定

      采用HPLC進行香蘭素含量的檢測,檢測條件為:色譜柱ZORBAX Eclipse XDB-C18 4.6*150 mm,流動相為0.1%磷酸緩沖液∶甲醇(Av/Bv)=55∶45,流速為0.8 mL/min,柱溫30 ℃,檢測波長為280 nm紫外檢測,進樣量為0.5 μL。

      1.6 菌懸液的制備

      將菌種OMK-4接種于裝有高氏1號培養(yǎng)基的試管斜面中,放于恒溫培養(yǎng)箱,37 ℃培養(yǎng)24 h。取10 mL無菌水清洗試管斜面中的菌體,倒入裝有玻璃珠的無菌錐形瓶中,充分震蕩均勻后得到菌懸液,根據(jù)需要進行梯度稀釋獲得105CFU/mL的菌懸液。

      1.7 紫外條件下誘變OMK-4

      取10 mL菌懸液放于無菌培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)皿距離20 W紫外燈30 cm,分別照射0 s、10 s、30 s、50 s、70 s、90 s、120 s和150 s。照射完畢后將其放置在暗室中靜置30 min備用。將照射過的菌懸液稀釋后取0.5 mL涂布至高氏1號培養(yǎng)基中,涂布均勻,凝固后制成計數(shù)板,倒置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每個濃度取3個對照,記錄菌數(shù),計算紫外誘變的致死率。

      1.8 亞硝酸鈉誘變處理OMK-4

      將10 mL含有0 mol/L、0.05 mol/L、0.10 mol/L、0.15 mol/L、0.20 mol/L、0.25 mol/L和0.30 mol/L亞硝酸鈉的無菌水溶液分別加入100 mL的無菌三角瓶中,每瓶加入配置稀釋好的菌懸液5 mL,每個梯度3個平行。將以上樣品分別放置于震蕩搖床中,37 ℃、200 r/min的條件下分別震蕩培養(yǎng)1 min、3 min、5 min、7 min、9 min,培養(yǎng)完成后加入一定量的磷酸氫二鈉無菌水溶液做為終止劑,終止誘變。稀釋后取0.5 mL涂布至高氏1號培養(yǎng)基中,涂布均勻,凝固后制成計數(shù)板,倒置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每個濃度取3個對照,記錄菌數(shù)及亞硝酸鈉誘變的致死率。

      1.9 紫外-亞硝酸鈉復(fù)合誘變處理OMK-4

      取10 mL菌懸液放于無菌培養(yǎng)皿中,置于20 W紫外燈的30 cm處,分別照射30 s、50 s、70 s、90 s、120 s和150 s。照射完畢后將其放置于暗室中靜置30 min,向各個培養(yǎng)皿中加入0.15 mol/L的亞硝酸鈉在37 ℃、200 r/min條件下震蕩培養(yǎng)5 min。誘變完成后立即加入一定量的磷酸氫二鈉水溶液終止反應(yīng)。稀釋后取0.5 mL均勻涂布至高氏1號培養(yǎng)基中,凝固后制成計數(shù)板,倒置于37 ℃恒溫培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h,每個濃度取3個對照,記錄菌數(shù)并計算紫外-亞硝酸鈉復(fù)合誘變的致死率。

      1.10 誘變菌株穩(wěn)定性實驗

      將紫外誘變、亞硝酸鈉誘變、紫外-亞硝酸鈉復(fù)合誘變通過隔代培養(yǎng)篩選出的菌株在固體培養(yǎng)基中連續(xù)傳代10代,每一代培養(yǎng)32 h。培養(yǎng)結(jié)束后將其接種于種子培養(yǎng)基中,24 h后移種至發(fā)酵培養(yǎng)基中,發(fā)酵36 h后檢測發(fā)酵液中香蘭素的含量。

      2 結(jié)果與討論

      2.1 紫外誘變最佳條件及穩(wěn)定性實驗

      使用功率為20 W的紫外燈,照射距離為30 cm,對菌懸液進行0~150 s的處理,記錄菌落數(shù)并計算紫外誘變的致死率,結(jié)果如圖1所示。隨著照射時間的延長,致死率逐漸增大;當(dāng)照射時間為30 s時,菌株的致死率達到45.1%;照射時間為70 s時,致死率為83.4%;照射時間超過110 s,致死率達到100%。

      圖1 紫外誘變不同時間菌株的致死率

      紫外照射10 s、30 s、50 s、70 s和90 s后的誘變菌株,分別命名為Z1、Z2、Z3、Z4和Z5,其發(fā)酵液中香蘭素的含量如圖2所示。菌株Z4(紫外照射70 s)發(fā)酵產(chǎn)香蘭素的效果較好,最終香蘭素產(chǎn)量達到了23.9 g/L,且經(jīng)過10代的傳代培養(yǎng),遺傳性狀穩(wěn)定,產(chǎn)量是原始菌株OMK-4的1.35倍。

      圖2 紫外誘變后菌株產(chǎn)香蘭素含量

      2.2 亞硝酸鈉誘變最佳條件和穩(wěn)定性實驗

      使用不同濃度的亞硝酸鈉分別處理菌株不同時間,終止反應(yīng)后將其稀釋涂布在平板上,培養(yǎng)24 h記錄菌落數(shù);由此得出亞硝酸鈉誘變的致死率,結(jié)果如圖3所示。當(dāng)亞硝酸鈉濃度超過0.2 mol/L,菌株在誘變過程中致死率基本達到100%;當(dāng)亞硝酸鈉濃度為0.05~0.10 mol/L,菌株在誘變過程中的致死率低于65.23%;當(dāng)亞硝酸鈉濃度為0.15 mol/L時,菌株在誘變處理過程中處理9 min時達到100%致死率,處理1 min時致死率為21.15%,效果較為明顯。

      圖3 亞硝酸鈉誘變不同時間菌株的致死率

      選用0.15 mol/L作為亞硝酸鈉誘變的最優(yōu)處理濃度,在其處理的不同時間下選取一株生長態(tài)勢最優(yōu)的菌株,分別命名為Y1、Y2、Y3和Y4;這些菌種發(fā)酵液中香蘭素的含量如圖4所示。菌株Y3在誘變過程中發(fā)生了正突變,產(chǎn)量高達23.78 g/L;經(jīng)過傳代10代的培養(yǎng),遺傳性狀穩(wěn)定,產(chǎn)量是初始菌株的1.37倍。

      圖4 亞硝酸鈉誘變后菌株產(chǎn)香蘭素含量

      2.3 紫外-亞硝酸鈉復(fù)合誘變菌株的篩選和穩(wěn)定性實驗

      按照1.9的處理方法對菌株進行復(fù)合誘變,得出菌株復(fù)合誘變篩選的致死率,其結(jié)果如表1和圖5所示。紫外誘變10 s、0.15 mol/L亞硝酸鈉處理3 min,致死率達到44.4%;紫外誘變50 s、0.15 mol/l亞硝酸鈉處理3 min,致死率達到了90.5%;紫外誘變70 s、0.15 mol/l亞硝酸鈉處理3 min,致死率達到100%。因此可知在0.15 mol/L亞硝酸鈉處理3 min、0~50 s的紫外照射條件下,菌株致死率變化較大。

      圖5 復(fù)合誘變不同時間菌株的致死率

      從復(fù)合誘變的涂布平板上各選擇一株生長態(tài)勢優(yōu)良的菌株進行傳代培養(yǎng),分別命名為F1、F2、F3,其傳代培養(yǎng)10代后發(fā)酵36 h的發(fā)酵液中香蘭素的含量如圖6所示。菌株F2和F3在誘變過程中均發(fā)生了正突變,經(jīng)過10代遺傳后,香蘭素產(chǎn)量均高于初始菌株;其中,菌株F2香蘭素產(chǎn)量為24.1 g/L是初始菌株產(chǎn)香蘭素的1.39倍;菌株F3香蘭素產(chǎn)量為24.81 g/L,是初始菌株產(chǎn)香蘭素的1.43倍。

      表1 復(fù)合誘變篩選對菌株致死率的影響

      圖6 復(fù)合誘變后菌株產(chǎn)香蘭素含量

      2.4 菌株發(fā)酵上罐實驗

      將菌株Z4、Y3、F2、F3分別進行30 L發(fā)酵罐實驗,考察誘變菌株上罐后生長濃度及香蘭素產(chǎn)量,其結(jié)果如圖7所示。4株菌株發(fā)酵產(chǎn)香蘭素的濃度均比原始菌株要高,其中最低的菌株Z4比原始菌株高出35.5%;菌株F3產(chǎn)量最高,比原始菌株高出44.4%。在菌體濃度方面可以看出菌株F3菌體濃度最高,生長優(yōu)勢明顯。因此,在發(fā)酵周期一致的情況下,誘變菌株F3比原始菌株菌體濃度提高到原有濃度的1.1倍,香蘭素濃度是原始菌株的1.45倍,達到24.98 g/L。

      圖7 不同誘變菌株30L發(fā)酵菌體濃度和香蘭素濃度

      3 結(jié)論

      通過紫外照射誘變、亞硝酸鈉化學(xué)誘變以及紫外-亞硝酸鈉復(fù)合誘變,共計篩選出4株新的菌株,產(chǎn)香蘭素含量均比原始菌株要高,其中通過復(fù)合誘變篩選獲得的菌株F3,香蘭素效價比原始菌株提高了44.4%,為香蘭素的工業(yè)化生產(chǎn)提供了重要的數(shù)據(jù)支持。

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