趙麗萍 楊歌 張小敏 屈鋒
摘?要?核酸適配體是通過指數(shù)富集配體系統(tǒng)進(jìn)化(SELEX)篩選方法獲得的,能夠與靶標(biāo)分子高親和力和特異性結(jié)合的單鏈DNA或RNA。蛋白質(zhì)是一種非常重要的生物功能大分子,迄今為止,已經(jīng)開發(fā)了許多SELEX技術(shù),用于蛋白質(zhì)的適配體的篩選。目前,適配體的篩選優(yōu)化方法主要集中在提高篩選效率、降低篩選成本,以及提升適配體性能等方面,從而獲得可與靶標(biāo)分子以高親和力和高特異性結(jié)合的適配體。適配體與靶標(biāo)分子親和力的表征是關(guān)鍵的篩選步驟,用于判定所篩選的適配體是否可以滿足后續(xù)應(yīng)用需求。本文歸納總結(jié)了2016年以來蛋白質(zhì)靶標(biāo)的適配體篩選的研究進(jìn)展,對核酸適配體篩選過程中有關(guān)核酸庫的優(yōu)化方法和篩選方法的改進(jìn)、新篩選方法的開發(fā)、核酸適配體的應(yīng)用等方面的研究進(jìn)行了評述。
關(guān)鍵詞?核酸適配體; 蛋白質(zhì); 篩選; 指數(shù)富集配體系統(tǒng)進(jìn)化; 評述
1?引 言
核酸適配體是指通過指數(shù)富集的配體系統(tǒng)進(jìn)化技術(shù)(Systematic evolution of ligands by exponential enrichment,SELEX)在體外篩選獲得的可與靶標(biāo)高特異性和高親和力結(jié)合的單鏈DNA(ssDNA)或RNA。核酸適配體的靶標(biāo)范圍廣,包括蛋白質(zhì)、多肽、小分子、細(xì)胞、細(xì)菌,甚至組織。核酸適配體可通過化學(xué)方法合成,與抗體相比,核酸適配體具有成本低、易修飾、穩(wěn)定性好等特點。此外,核酸適配體有較好的組織滲透性,易進(jìn)入細(xì)胞,且無免疫原性。近年來,以蛋白質(zhì)為靶標(biāo)的核酸適配體在分子生物學(xué)、生物技術(shù)、生物醫(yī)學(xué)等領(lǐng)域廣受關(guān)注。
核酸適配體是通過體外篩選獲得的,故可根據(jù)特定應(yīng)用環(huán)境或靶標(biāo)分子特征進(jìn)行篩選。1990年,Tuerk和Gold[1]首次采用SELEX技術(shù)從隨機(jī)序列中篩選獲得T4 DNA聚合酶的RNA配體序列,并預(yù)測通過SELEX技術(shù)可篩選獲得任何蛋白質(zhì)或其它目標(biāo)分子的高親和力配體。同年,Ellington和Szostak[2]通過親和色譜柱方法篩選獲得具有特異性結(jié)合于有機(jī)染料的RNA配體序列,并將其定義為“適配體”。1992年,Toole等[3]篩選獲得具有抑制人凝血酶催化作用的首個DNA適配體。核酸適配體的篩選過程主要包括隨機(jī)寡核酸庫的建立、核酸庫與靶標(biāo)的相互作用、靶標(biāo)-核酸復(fù)合物的分離、次級庫的形成(通過聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)進(jìn)行擴(kuò)增),再重復(fù)以上篩選步驟。不同的篩選方法,重復(fù)篩選3次不同,一般需4~20輪的篩選。最后對篩選得到的核酸序列進(jìn)行測序,獲得與靶標(biāo)分子以高親和力特異性結(jié)合的適配體序列[4]。
盡管以蛋白質(zhì)為靶標(biāo)的核酸適配體應(yīng)用前景廣泛,但其篩選過程復(fù)雜,一般需要十多輪篩選,耗費(fèi)大量人力、財力和時間,并且,篩選所得的核酸適配體還可能存在親和力不高、特異性不好等問題,影響其后續(xù)應(yīng)用。因此,適配體的篩選仍是目前適配體研究應(yīng)用亟待解決的問題。本研究組在之前的綜述[4]中,歸納總結(jié)了2015年之前的研究工作。近年來,對SELEX技術(shù)的改進(jìn)和發(fā)展的相關(guān)研究主要集中在核酸庫的優(yōu)化和篩選方法的改進(jìn)、適配體的結(jié)構(gòu)優(yōu)化和計算機(jī)輔助篩選等方面。本文綜述了2016年以來,以蛋白質(zhì)為靶標(biāo)的核酸適配體的篩選過程中核酸庫的優(yōu)化方法和篩選方法的改進(jìn)、新篩選方法的開發(fā)、適配體親和力表征方法以及核酸適配體的應(yīng)用等工作。
2?核酸庫的設(shè)計與優(yōu)化
基于對RNA分子可形成功能性空間結(jié)構(gòu)的認(rèn)識,早期的SELEX技術(shù)中優(yōu)先使用RNA隨機(jī)文庫[5]。隨后的研究結(jié)果表明,單鏈DNA(ssDNA)能夠形成比RNA更復(fù)雜的三級結(jié)構(gòu),且ssDNA的化學(xué)性質(zhì)更穩(wěn)定、易合成,篩選過程中不需要額外的逆轉(zhuǎn)錄步驟,相比于RNA適配體篩選更節(jié)省時間和成本[6]。目前,超過85%的適配體篩選使用了ssDNA隨機(jī)文庫[7,8]。
大多數(shù)適配體體外篩選使用ssDNA或RNA的隨機(jī)文庫。然而,它們在體外相對穩(wěn)定,但在體內(nèi)則很容易被核酸酶降解,通常在10 s內(nèi)就會被破壞。此外,小片段的ssDNA或RNA可提供的分子結(jié)構(gòu)簡單,相互作用位點有限; 并且,當(dāng)其進(jìn)入生物體體內(nèi)時,循環(huán)時間短,可被腎臟快速過濾。考慮到ssDNA與RNA的結(jié)構(gòu)多樣性[9]、與靶標(biāo)的結(jié)合能力以及在體內(nèi)的穩(wěn)定性與功能等因素,初始核酸庫的設(shè)計與優(yōu)化是SELEX的重點考慮問題之一。
2.1?核酸庫長度
篩選所用的核酸庫一般是按照核酸合成的標(biāo)準(zhǔn)方法進(jìn)行合成。通常在兩端分別設(shè)計兩段固定的引物序列,中間區(qū)域由4個核苷酸隨機(jī)排序組成,核苷酸數(shù)為N。理論上,每個合成的核酸庫應(yīng)有4N個不同的序列,序列的長度為引物-N-引物。核酸庫中N的選擇主要由經(jīng)驗決定,并因?qū)嶋H合成技術(shù)的限制,核酸庫所含的實際的序列數(shù)約為1014~1015條[10]。較短的隨機(jī)區(qū)域(N<20)可確保合成得到完全覆蓋的序列空間(即每條隨機(jī)序列至少有1個分子),但可能會因序列較短而使核酸分子的結(jié)構(gòu)多樣性減少。另一方面,較長的隨機(jī)區(qū)域(N>40)則可能提供更多的序列的三維結(jié)構(gòu)與結(jié)構(gòu)多樣性,但僅能覆蓋序列空間的一小部分(理論上應(yīng)該存在的序列不能全部出現(xiàn))[11]。目前,已經(jīng)篩選報道的有短至8個核苷酸[12]和長至228個核苷酸的適配體序列[13],而大多數(shù)篩選仍使用隨機(jī)區(qū)域長度N為20~60 nt之間的核酸庫。
不同長度的核酸庫可同時用于蛋白質(zhì)靶標(biāo)的適配體篩選。Lee等[14]采用雙庫策略(Double library (DL) SELEX),將不同長度的兩個核酸庫(16 nt 與20 nt)同時用于篩選VEGF16的ssDNA適配體。兩個核酸庫的部分堿基序列互補(bǔ)。通過DL-SELEX,獲得一對可結(jié)合在蛋白不同位點上的適配體。
此外,也可對次級庫的核酸長度進(jìn)行裁剪,縮短次級庫長度以簡化適配體序列并提高其親和力。He等[15]通過截短(Truncation)SELEX方法篩選了人紅細(xì)胞生成素α的核酸適配體In27。經(jīng)首輪篩選得到次級核酸庫后,對此次級庫進(jìn)行截短,以構(gòu)建由所有可能的核苷酸序列截短組成的步進(jìn)型文庫,重復(fù)以上步驟,直至獲得具有更高親和力的最短適配體序列。所獲得的適配體In27沒有原始的莖環(huán)部分,但仍保留了對靶標(biāo)的親和力。
核酸庫的設(shè)計與優(yōu)化還包括鏡像篩選(Spiegelmer SELEX)[43~46]以及嵌合庫(Chimeric SELEX)的設(shè)計與使用[47]等。此外,還應(yīng)考慮核酸庫中引物序列的設(shè)計[48,49],或結(jié)合生物信息學(xué)分析指導(dǎo)核酸庫的設(shè)計與合成。而且,使用修飾的核酸庫進(jìn)行適配體篩選時,必須考慮由非天然核苷酸可能引起的化學(xué)毒性和免疫原性,以提高修飾適配體的生物相容性。
3?復(fù)合物分離
分離核酸與靶標(biāo)形成的復(fù)合物是SELEX的關(guān)鍵步驟之一?;趶?fù)合物分離技術(shù)開發(fā)的SELEX方法主要包括硝化纖維素膜過濾SELEX、微珠/磁珠SELEX、微柱SELEX、毛細(xì)管電泳(CE)SELEX、微流控自由流電泳SELEX、微流控芯片SELEX、SPR-SELEX、微陣列SELEX、AFM-SELEX等,表1列舉了2016年至今蛋白質(zhì)靶的適配體篩選所用的基于分離的SELEX方法。
3.1?CE-SELEX
CE-SELEX是快速、高效篩選核酸適配體的方法之一。在CE-SELEX中,通常將核酸庫與靶蛋白孵育后,進(jìn)行CE分離分析。高壓電場下,未結(jié)合的核酸序列與核酸-靶蛋白復(fù)合物因遷移速率不同而分離。在毛細(xì)管的出口端收集復(fù)合物,經(jīng)PCR擴(kuò)增、純化,生成次級庫,再進(jìn)行下一輪篩選。通常CE只需1~4輪篩選即可獲得高親和力和特異性的適配體[102]。在CE-SELEX中,靶蛋白與適配體的結(jié)合發(fā)生在自由溶液中,避免了對靶蛋白或核酸庫的固定,同時可降低非特異性結(jié)合,且二者相互作用不受空間位阻影響。CE-SELEX方法可進(jìn)一步改進(jìn)為平衡混合物的非平衡毛細(xì)管電泳(NECEEM)、平衡混合物的平衡毛細(xì)管電泳(ECEEM)及Non-SELEX等系列篩選方法[4]。本研究組建立了兩種新的CE-SELEX模式: 同步競爭結(jié)合篩選方法(Synchronized competition CE-SELEX,scCE-SELEX)和一步快速CE-SELEX(Single-step CE-SELEX,ssCE-SELEX)。Yang等[86]建立了雙靶蛋白的scCE-SELEX方法,將兩種靶蛋白A、B與核酸庫同時孵育,二者競爭結(jié)合達(dá)到動態(tài)平衡狀態(tài)后,將混合物注入CE中進(jìn)行分析。兩種靶蛋白與核酸庫結(jié)合分別形成兩種復(fù)合物,二者具有不同的遷移速率,能夠與未結(jié)合的核酸庫完全分離。在同步競爭結(jié)合篩選過程中,蛋白A和蛋白B彼此為反篩靶,通過競爭效應(yīng)為對方增加篩選壓力,顯著提高了篩選效率,僅需一輪篩選即可得到高親和力(KD值在nmol/L級)和特異性良好的適配體。該方法擴(kuò)展了高效篩選核酸適配體的CE-SELEX方法的應(yīng)用。Zhu等[79,81,82]建立了一種基于在線反應(yīng)的ssCE-SELEX模式,將核酸序列與靶蛋白的混合、孵育、核酸序列與靶蛋白-核酸復(fù)合物的分離、檢測以及復(fù)合物的收集在一步CE運(yùn)行中完成(圖1),并對影響復(fù)合物生成的關(guān)鍵因素(如孵育緩沖溶液、靶蛋白與核酸序列的比例等)及影響靶蛋白-核酸復(fù)合物分離與收集的因素(電壓、溫度、進(jìn)樣時間等)進(jìn)行了考察。進(jìn)一步利用該模式成功篩選了人凝血酶以及牛乳鐵蛋白的適配體。此外,還利用此模式對6種蛋白進(jìn)行了適配體篩選的初步實驗,結(jié)果表明,ssCE-SELEX模式對蛋白靶標(biāo)核酸適配體的篩選具有普適性。近期,本研究組在Biotechnology Advance期刊發(fā)表了多功能CE用于核酸適配體篩選的綜述[102],對近年來CE技術(shù)在核酸適配體篩選方面的應(yīng)用進(jìn)行了全面地歸納和總結(jié)。Krylov研究組[85]提出了理想過濾式毛細(xì)管電泳法(Ideal-filter capillary electrophoresis,IFCE),即在生理pH值和生理離子強(qiáng)度(pH 7,150 mmol/L NaCl)時,可使游離的核酸序列與靶蛋白-核酸復(fù)合物反向移動,分離效率高達(dá)109。同時,較高的離子強(qiáng)度可抑制靶標(biāo)與核酸序列的非特異性結(jié)合,故一步篩選可獲得高親和力適配體序列。
3.2?微流控SELEX
微流控技術(shù)在復(fù)合物分離方面也有明顯優(yōu)勢[103,104]。2005年,Hybarger等[105]首次將微流控芯片技術(shù)運(yùn)用到SELEX。微流控SELEX主要有兩種方式: 將靶分子固定在磁珠上,用核酸庫與磁珠孵育[106],在微通道內(nèi)外加上磁鐵,形成高強(qiáng)度的局域磁場梯度,精確控制大量的微磁珠; 或用溶膠-凝膠包封靶分子,再將核酸庫加入包封的溶膠-凝膠中[107],通過將這些目標(biāo)分子包封在凝膠液滴中,在微流控芯片內(nèi)進(jìn)行分離。與CE-SELEX相似,使用微流控分離所需的樣品量非常少,可嚴(yán)格控制篩選條件,加速適配體進(jìn)化[108]。如篩選過程中通過控制流速,在靶標(biāo)損失最小的情況下去除弱結(jié)合的或非特異性結(jié)合的核酸序列[8],通過1~6輪篩選可獲得高親和力適配體[106]。
Hong等[92]開發(fā)了一種基于磁珠的多功能微流控篩選平臺,該芯片將篩選芯片和定量芯片結(jié)合。將BSA(反篩靶標(biāo))包被的磁珠和粘蛋白1(MUC1)包被的磁珠分別注入到篩選芯片反篩區(qū)域和正篩區(qū)域。將初始ssDNA庫首先注入篩選芯片的反篩區(qū)域,在此區(qū)域中,一部分核酸庫與BSA結(jié)合; 未結(jié)合的核酸庫流入正篩區(qū)域,與MUC1結(jié)合,從而減少了非特異性吸附。同時,可通過倒置熒光顯微鏡觀察熒光信號的變化監(jiān)測整個篩選過程。收集磁珠上與目標(biāo)蛋白結(jié)合的核酸序列進(jìn)行擴(kuò)增生成次級庫,用于下一輪篩選。重復(fù)上述步驟,進(jìn)行多輪篩選,并將每個次級庫注入定量評價芯片,通過熒光強(qiáng)度實時評價每輪篩選的富集程度。由于次級庫可特異性地結(jié)合微通道中的MUC1包被的磁珠,當(dāng)每輪富集的熒光強(qiáng)度不再明顯增加時,停止篩選。該篩選平臺可在流動的環(huán)境中同時進(jìn)行正篩和反篩,并可通過連續(xù)洗滌來施加高強(qiáng)度篩選條件。與常規(guī)孵育方法相比,該篩選方法明顯減少了核酸的非特異性結(jié)合,還可消除弱結(jié)合的核酸。通過2輪篩選,獲得3條與MUC1高親和力(KD值分別為44.8、22.4和65.0 nmol/L)和特異性結(jié)合的適配體序列,并被用于癌細(xì)胞的標(biāo)記和外泌體捕獲。
利用熒光顯微鏡可監(jiān)測微流控SELEX過程,但因觀測區(qū)域的限制,熒光強(qiáng)度的均勻采集比較困難。Xu研究組[88]提出了PMM(Protein microarray integrated into microfluidic chip)-SELEX方法,通過靜電吸附將蛋白固定在芯片上,制備蛋白質(zhì)微陣列芯片,嵌入SELEX微流控芯片中,并注入核酸庫。與靶標(biāo)蛋白結(jié)合的核酸序列被保留在蛋白質(zhì)芯片上,未結(jié)合的序列流出。通過熒光芯片掃描儀對保留在蛋白質(zhì)芯片上的核酸序列進(jìn)行均勻成像,以監(jiān)測篩選過程中蛋白與核酸的結(jié)合。以乳鐵蛋白為靶標(biāo)制備了靶蛋白芯片,以BSA、酪蛋白、乳球蛋白等為反篩靶制備了反篩蛋白芯片,將兩塊蛋白芯片同時嵌入到SELEX微流控芯片,可同時進(jìn)行正篩和反篩。通過7輪篩選得到了KD值為nmol/L級的適配體。
在微流控SELEX中,無法在芯片上直接完成核酸序列的擴(kuò)增,使得與核酸結(jié)合的靶標(biāo)包被磁珠可能在后續(xù)擴(kuò)增與篩選過程中因移液和轉(zhuǎn)移而丟失。Sinha等[87]設(shè)計了一個小型的自動化微流控SELEX平臺,它集樣品的輸送、孵育及核酸擴(kuò)增于一體,用非靶蛋白包被磁珠進(jìn)行1輪反篩后,用靶蛋白進(jìn)行5輪正篩。篩選過程可以在一個芯片中連續(xù)進(jìn)行,6輪篩選只需8 h。微流控中的PCR過程由自制的溫度控制模塊進(jìn)行,利用Arduino電路和溫度傳感器進(jìn)行實時溫度檢測,實現(xiàn)了芯片上的PCR溫度循環(huán)。每次循環(huán)后,收集PCR產(chǎn)物以瓊脂糖凝膠電泳確認(rèn)篩選過程。利用此平臺,篩選了3種與心血管病相關(guān)的蛋白標(biāo)志物的適配體。
微流控SELEX在實際篩選時有所不足,如樣品的注入量不穩(wěn)定、微通道需要進(jìn)行表面修飾提高親水性,并且還沒有商品化的微流控設(shè)備等。
3.3?原子力顯微鏡(AFM) SELEX
原子力顯微鏡(AFM)是可在分子水平上精確檢測分子間親和力、相互作用和識別特征的方法[109]。AFM靈活的懸臂末端的尖頭,可以檢測樣品表面和懸臂之間的微弱力。當(dāng)尖端接觸到樣品表面或與樣品表面靠近接觸時,懸臂的撓度被反射到懸臂背面的激光束記錄下來[110,111]。利用AFM方法可以動態(tài)檢測樣品表面與懸臂梁之間的作用力,并用于高親和力適配體的篩選,即AFM-SELEX。
Yusuke等[112]用AFM-SELEX通過3輪篩選得到了高親和力的凝血酶適配體(KD=200 nmol/L)。將鏈霉親和素固定在懸臂頂端,再結(jié)合生物素化的ssDNA庫,而將凝血酶固定在金片上。當(dāng)懸臂末端與金片接觸時,抗凝血酶的DNA適配體會與金片上的凝血酶結(jié)合,形成的DNA-凝血酶復(fù)合物滯留在金片上,得到高親和力的DNA適配體。Takenaka等[100]提出了一種新型AFM-SELEX方法。通過T和A堿基配對作用將核酸庫(含有35 mer腺嘌呤(A35))固定在金芯片(含10 mer胸腺嘧啶(T10))上,將人血清白蛋白(HSA)固定在懸臂上。當(dāng)HSA與核酸分子的相互作用大于A-T間的相互作用時,該核酸分子會因與蛋白的結(jié)合而使懸臂發(fā)生變化,基于懸臂變化可進(jìn)行高親和結(jié)合的適配體篩選。這個過程中,連接分子間的相互作用(A-T間作用)在減少或控制篩選輪數(shù)方面起著關(guān)鍵作用。通過4輪篩選,得到了HSA的特異性適配體。雖然AFM SELEX方法篩選輪次較少,3~4輪內(nèi)即可得到高親和力的適配體。但是,該方法存在AFM儀器設(shè)備昂貴、需要對靶標(biāo)和適配體進(jìn)行固定,以及初始庫容量較小等局限。
3.4?其它SELEX
分子印跡聚合物具有識別模板分子功能,也可用于適配體篩選。Liu研究組[67]開發(fā)了一種基于聚糖印跡磁性納米顆粒(MNPs)的SELEX方法,有效地篩選到與糖蛋白特異性結(jié)合的適配體。采用硼酸鹽親和可控定向表面印跡方法合成了多糖印跡MNPs,以此多糖印跡MNPs為親和界面與靶標(biāo)糖蛋白結(jié)合,再以靶標(biāo)糖蛋白結(jié)合的MNPs為親和底物篩選適配體。多糖印跡的MNPs對糖蛋白表現(xiàn)出較高的親和力和特異性,因此可優(yōu)先結(jié)合目標(biāo)糖蛋白,同時排除不需要的物質(zhì)。以RNase B和轉(zhuǎn)鐵蛋白兩種具有代表性的糖蛋白作為靶蛋白,通過3輪篩選得到對兩種靶蛋白具有高親和力和特異性的適配體。該方法具有親和度高、速度快、避免陰性篩選等優(yōu)點。
4?非純化靶蛋白的適配體篩選
4.1?全細(xì)胞蛋白的適配體篩選(Cell-SELEX)
目前報道的適配體篩選多使用重組蛋白或具有穩(wěn)定構(gòu)象的純化蛋白,但當(dāng)靶蛋白處于修飾狀態(tài)或其結(jié)合域可能被掩蔽時,不能很好地識別核酸分子[113]。例如,雖然EGFRⅧ蛋白的RNA適配體可以結(jié)合在大腸桿菌中表達(dá)的重組EGFRⅧ蛋白,但不能識別真核細(xì)胞表面表達(dá)的全長EGFRⅧ蛋白[114]。
Cell-SELEX是將整個細(xì)胞作為靶標(biāo),由于細(xì)胞表面復(fù)雜,包含了大量的蛋白,因此,可針對多種靶標(biāo)分離出相應(yīng)的適配體。全細(xì)胞篩選具有以下優(yōu)點: 不需要預(yù)先了解靶標(biāo)分子構(gòu)象; 細(xì)胞表面分子呈現(xiàn)自然構(gòu)象和分布; 可避免純化過程中靶標(biāo)結(jié)構(gòu)的破壞; 還具有篩選未知分子適配體的潛力[115~118]。
Haghighi等[98]以淋巴球抗原(CD20)蛋白過表達(dá)的HEK293T細(xì)胞為靶標(biāo),經(jīng)過11輪篩選得到KD為nmol/L級的CD20適配體。該適配體被用于細(xì)胞的特異性識別,有望替代抗體用于免疫缺陷、自身免疫性疾病、白血病和淋巴瘤的診斷和治療。He等[119]報道了兩種由Cell-SELEX篩選獲得的適配體,它們可與紫杉醇耐藥卵巢癌細(xì)胞系(A2780T)表面的兩種不同的糖蛋白特異性結(jié)合。這兩種核酸適配體對目標(biāo)細(xì)胞均有較高的選擇性和較強(qiáng)的親和力,并且適配體與靶細(xì)胞的結(jié)合不依賴于二價離子,對血清中的核酸酶有較強(qiáng)的耐受性,可用于人血清中耐藥卵巢癌細(xì)胞的檢測。Bing等[120]經(jīng)5輪篩選獲得了堿性磷酸酶(Alkaline phosphatase,AP)二聚體的適配體BG2,該適配體可結(jié)合堿性磷酸酶二聚體而非其單體,可用于細(xì)胞和組織上蛋白質(zhì)二聚體的原位檢測。
Cell-SELEX可以解決真實細(xì)胞表面蛋白的適配體篩選,但很難直接篩選到細(xì)胞表面表達(dá)量較少的蛋白的適配體。此外,還需要去除死細(xì)胞(如利用流式細(xì)胞儀分選以及基于微珠的方法等)以減少非特異性結(jié)合的干擾; 全細(xì)胞的靶標(biāo)組成復(fù)雜而且需要多輪篩選才能獲得高親和力和高選擇性的適配體。篩選過程中通常需要反篩步驟,以提高適配體的特異性,如篩選某腫瘤細(xì)胞的腫瘤標(biāo)志物的核酸適配體時,需要以其它腫瘤細(xì)胞或正常細(xì)胞為反篩靶。與單一靶標(biāo)的適配體篩選方法相比,全細(xì)胞表面靶蛋白的鑒定是Cell-SELEX篩選的難點,可將與適配體特異性結(jié)合的靶標(biāo)提取后,通過質(zhì)譜的方法對靶蛋白進(jìn)行鑒定。但是,由于某些靶蛋白含量低、疏水性強(qiáng)、不易提取等,使得其分離、鑒定和表征較為困難,真正的全細(xì)胞蛋白靶的適配體篩選還難以實現(xiàn)。
4.2?體內(nèi)蛋白的適配體篩選(In-vivo SELEX)
體外篩選的適配體可能因不具有組織通透性而無法在體內(nèi)發(fā)揮作用。體內(nèi)篩選(In-vivo SELEX)是指利用疾病相關(guān)模型的小鼠直接進(jìn)行體內(nèi)篩選。首先,將修飾后具有抗核酸酶性能的核酸庫通過靜脈注射到荷瘤小鼠中,收集目標(biāo)靶器官/組織,提取結(jié)合的核酸序列后在體外進(jìn)行擴(kuò)增得到次級庫。將次級庫注入動物體內(nèi),重復(fù)進(jìn)行體內(nèi)篩選。篩選時,可使用熒光分子層析成像(FMT)對深埋器官中的腫瘤進(jìn)行成像,觀察核酸序列在體內(nèi)的結(jié)合和遷移。體內(nèi)篩選策略用于鑒定原位定位結(jié)合腫瘤的適配體,具有藥物靶向遞送和有效設(shè)計診斷試劑的潛力。Chen等[121]通過In-vivo SELEX鑒定了前列腺癌骨轉(zhuǎn)移小鼠模型中的骨靶向適配體,篩選獲得Toll樣受體4(TLR4)阻斷適配體,有望用于急性中風(fēng)治療[122]。Mai等[123]在淋巴瘤小鼠模型中篩選了對淋巴瘤骨髓細(xì)胞具有高特異性的ssDNA適配體。
體內(nèi)篩選具有原位和實時篩選的優(yōu)點,但篩選的適配體具有明顯的個體差異,因此,即便篩選成功也在很大程度上限制了其普適性應(yīng)用。如果使用修飾的核酸,還需考慮聚合酶擴(kuò)增修飾核酸的能力限制。此外,體內(nèi)結(jié)合的核酸序列的提取過程更加復(fù)雜,增加了篩選難度和成本。
5?基于生物信息學(xué)的SELEX(In-silico SELEX)
In-silico SELEX是一種基于計算機(jī)技術(shù)的非實驗篩選和優(yōu)化適配體的新方法,可為適配體篩選的3個關(guān)鍵過程提供計算解決方案,包括: 增強(qiáng)型初始庫的設(shè)計、序列的富集、高親和適配體的鑒定。In-silico SELEX主要包括兩個步驟: (1)根據(jù)二級結(jié)構(gòu)設(shè)計增強(qiáng)型的初始庫。對核酸庫的分析表明,高親和力的適配體的熱力學(xué)參數(shù)與其他序列存在差異。例如,GTP適配體二級結(jié)構(gòu)的自由能明顯低于相同長度的其它隨機(jī)序列。因此,在初始核酸庫的設(shè)計中可以減少具有簡單莖環(huán)結(jié)構(gòu)或微分支結(jié)構(gòu)的序列,同時,最大化穩(wěn)定低能結(jié)構(gòu),以形成增強(qiáng)型的初始庫,用于下一步篩選。(2)通過分子對接計算進(jìn)行篩選。不同的分子對接工具可用于識別與靶標(biāo)結(jié)合的序列。Zhang等[124]開發(fā)了改良版DOVIS包,可用于RNA庫的高通量虛擬篩選。根據(jù)分子對接分析的數(shù)據(jù)(如結(jié)合自由能和適配體的平衡解離常數(shù)),選擇適配體候選序列進(jìn)一步研究。
Yokoyama等[95]運(yùn)用G4啟動子衍生的適配體篩選技術(shù)(G4PAS)與In-silico maturation (ISM)技術(shù),通過計算機(jī)輔助定向進(jìn)化成功篩選了肝細(xì)胞生長因子(HGF)的適配體,并進(jìn)一步通過ISM方法將HGF適配體的特異性提高了45倍。Ahirwar等[96]設(shè)計了人雌激素反應(yīng)元素(ERE)的RNA類似物作為初始文庫,篩選了雌激素受體α(ERα)的類適配體。首先,對單鏈RNA類似物進(jìn)行建模,并使用AutoDock Vina、HADDOCK和PatchDock軟件完成與靶標(biāo)的對接,判斷其作為ERα適配體的可能性。進(jìn)一步通過等溫滴定量熱法測定ERα-RNA相互作用的熱力學(xué)參數(shù),并驗證了計算機(jī)模擬預(yù)測結(jié)果。最后獲得Ka=1.02±0.1×108 mol/L的RNA序列為ERα-適配體ERaptR4,并通過細(xì)胞化學(xué)和固相免疫分析證實了ERaptR4適配體的靶向特異性。Bavi等[97]篩選了上皮細(xì)胞粘附蛋白(EpCAM)的15-mer RNA適配體。首先,生成初始庫序列,并模擬其全部序列的3D結(jié)構(gòu),通過分子對接、分子動力學(xué)模擬以及結(jié)合自由能計算篩選適配體,并估算其親和力。進(jìn)一步通過流式細(xì)胞術(shù)和熒光顯微鏡驗證了該RNA適配體可結(jié)合癌細(xì)胞表面過表達(dá)的EpCAM。
6?蛋白質(zhì)適配體的應(yīng)用
6.1?疾病相關(guān)蛋白的檢測
蛋白質(zhì)的適配體可作為檢測探針用于各種傳感檢測。基于適配體的光學(xué)檢測、電化學(xué)檢測以及結(jié)合各種納米材料的檢測方法都可以顯著提高檢測靈敏度[125]。Díaz-Fernández等[65]經(jīng)過8輪篩選得到了特異性識別前列腺特異性抗原(PSA)糖基化部分的適配體,將此適配體用于夾心式電化學(xué)傳感器的設(shè)計可以檢測人血清中的PSA(檢出限為0.66 ng/mL)。該傳感器檢測的前列腺增生患者血清的結(jié)果低于標(biāo)準(zhǔn)ELISA方法的檢測結(jié)果,表明該傳感器可精確檢測到含量更低的具有明顯糖基結(jié)構(gòu)的PSA。所設(shè)計的傳感器可為臨床前列腺特異性抗原檢測提供新的方法,有望改良現(xiàn)有臨床檢測方法,獲得更精準(zhǔn)的檢測結(jié)果,減少不必要的前列腺癌活檢。Ruan研究組[126]以甲胎蛋白特異性結(jié)合的適配體修飾的CdTe量子點(QDs)為供體,以抗AFP抗體的金納米粒(AuNPs)為受體,基于FRET原理,實現(xiàn)快速靈敏檢測血清中的AFP(線性范圍為0.5~45 ng/mL,檢出限為400 pg/mL)。隨著越來越多的生物標(biāo)志物的適配體被篩選報道,所建立的各種傳感器方法可以方便地用于多種生物標(biāo)志物的檢測,并且有望用于相關(guān)疾病的更好診斷,甚至現(xiàn)場檢測。
6.2?生物成像
適配體熒光探針具有腫瘤穿透性好、生物相容性好、信噪比低和分辨率高的優(yōu)點[127],在生物成像中的應(yīng)用越來越廣泛。特別是以活細(xì)胞為篩選靶標(biāo)的多種具有特殊生物學(xué)功能適配體的出現(xiàn),為基于適配體的熒光探針在生物成像領(lǐng)域的應(yīng)用奠定了基礎(chǔ),也提供了優(yōu)異的分子工具[128]。Bavi等[97]通過In-silico SELEX篩選了EpCAM的RNA適配體,利用熒光顯微成像觀察到所篩選的RNA適配體可特異性地與EpCAM陽性細(xì)胞結(jié)合,而不與EpCAM陰性細(xì)胞系結(jié)合。此實驗結(jié)果表明,RNA適配體分子小,對腫瘤生物標(biāo)志物EpCAM具有良好的選擇性和高親和力,有望用于新型分子成像和靶向治療。
6.3?治療藥物
由于適配體具有可與小分子藥物和蛋白配體競爭結(jié)合靶標(biāo)的能力[129],被認(rèn)為具有潛在的藥物性能,可用于疾病治療。此外,適配體還具有激活目標(biāo)受體的功能,或可作為載體向目標(biāo)細(xì)胞或組織遞送治療藥物[130]。例如,適配體有作為抗病毒藥物的潛力。有研究表明,針對gp120的合成衍生物的RNA適配體可中和HIV-1[131]。此外,RIG-I的RNA適配體可以抑制新城疫病毒(NDV)、皰疹性口炎病毒(VSV)和流感病毒的復(fù)制[129]。
6.4?生物標(biāo)記物的發(fā)現(xiàn)
與疾病相關(guān)的新生物標(biāo)志物的發(fā)現(xiàn)有助于疾病的早期發(fā)現(xiàn)和及時治療。生物標(biāo)志物還可用于靶向給藥及細(xì)胞成像等,開發(fā)新型生物標(biāo)志物及其識別探針在醫(yī)學(xué)研究和臨床檢測領(lǐng)域十分必要,也有強(qiáng)烈的市場需求。目前,抗體是最常用的識別分子。與抗體相比,適配體有可能可以根據(jù)病變細(xì)胞表面未知膜蛋白的分子差異,將病變細(xì)胞與正常細(xì)胞區(qū)分開來,因此適配體在發(fā)現(xiàn)新的生物標(biāo)志物方面有巨大的潛力。采用Cell-SELEX方法進(jìn)行適配體篩選,能夠發(fā)現(xiàn)新的腫瘤生物標(biāo)志物,而不需要事先對腫瘤生物標(biāo)志物進(jìn)行了解[132]。先構(gòu)建針對靶細(xì)胞的核酸庫,然后根據(jù)核酸庫的結(jié)合活性對不同蛋白進(jìn)行分離,最后,通過質(zhì)譜分析鑒定蛋白。例如,Berezovski等[133]在未成熟和成熟樹突狀細(xì)胞中分別發(fā)現(xiàn)了6個和3個生物標(biāo)志物。Jia等[134]通過Cell SELEX和基于適配體的蛋白的純化策略,鑒定出CD109作為鼻咽癌的潛在生物標(biāo)志物,用于早期診斷和靶向治療。
7?總結(jié)與展望
自1990年SELEX技術(shù)被提出以來,核酸適配體的研究取得了長足進(jìn)步,被認(rèn)為是具有發(fā)展前景的新型分子探針,所篩選的核酸適配體數(shù)量增加迅速。近年來,隨著對傳統(tǒng)SELEX篩選方法的改進(jìn)以及高通量測序和計算機(jī)輔助設(shè)計等新技術(shù)的快速發(fā)展,核酸適配體的篩選效率已顯著提高(如篩選輪次顯著減少、篩選周期明顯縮短以及適配體的親和力提高等),但仍未有自動化、標(biāo)準(zhǔn)化的適配體篩選程序和方法。親和力的測定方法雖多,但沒有統(tǒng)一的標(biāo)準(zhǔn)或界限,用于判定篩選的適配體是否可以滿足后續(xù)應(yīng)用的要求。不同的篩選方法測定的親和力難以對應(yīng),甚至在數(shù)量級上有很大差異,也缺少可將不同方法測定的親和力之間進(jìn)行轉(zhuǎn)換的標(biāo)尺。特別是,有效好用的適配體(如凝血酶等靶標(biāo)分子的“明星”適配體)還十分有限,遠(yuǎn)不能滿足實際應(yīng)用的需求。因此,適配體篩選的機(jī)理和高效篩選方法還有待深入研究,適配體所面臨的這些問題也將會轉(zhuǎn)化為促進(jìn)適配體發(fā)展和應(yīng)用的研究動力。
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