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      HBV激活轉化生長因子β1/Nur77信號通路對肝纖維化的促進作用

      2020-06-02 12:34:42李文庭
      醫(yī)學研究生學報 2020年4期
      關鍵詞:星狀共培養(yǎng)孵育

      李文庭,肖 琿, 楊 亮,音 銘,劉 齊

      0 引 言

      肝纖維化是肝對各種損傷因素的修復應答。這些損傷因素包括肝炎病毒、酒精、藥物、免疫復合物、代謝物(脂肪)等。肝纖維化的特征是細胞外基質(extracellular matrix, ECM)的大量產生超過降解,從而沉積在肝導致肝結構和功能的改變。目前公認,肝星狀細胞(Hepatic stellate cell,HSCs)是ECM的主要效應細胞,其活化是肝纖維化的關鍵因素。因此,抑制HSCs的活化可以延緩或逆轉肝纖維化[1]。在促進肝纖維化進展的各種信號通路和細胞因子中,轉化生長因子β1(transforming growth factor-β1,TGF-β1)被認為是最重要的細胞因子[2]。在肝損傷過程中,肝實質細胞釋放TGF-β1,后者刺激HSCs活化,產生大量的膠原纖維,啟動肝纖維化進程。經典的TGF-β1通路主要是通過Smads實現, 但是隨著研究的深入,學者們發(fā)表越來越多的細胞因子在TGF-β1/Smads通路中發(fā)揮重要作用, 如Nur 77[3-4]。但是對于Nur 77在肝纖維化中的作用罕見報道。

      乙型肝炎病毒(hepatitis B virus,HBV)感染是全球性的健康問題,全世界仍有將近4億攜帶者[5]。慢性HBV感染易啟動肝纖維化進展并發(fā)展為肝硬化甚至肝癌。關于HBV相關肝纖維化的機制研究較少。本研究擬探討TGF-β1/Nur 77信號通路在乙肝肝纖維化中的作用。

      1 材料與方法

      1.1 主要試劑與材料0.4 μmol/L Transwells 購自美國Costar公司,實驗用胎牛血清購于Gibco公司(美國), 含糖DMEM培養(yǎng)基購于Hyclone公司(美國), 質粒抽提試劑盒、RNA及DNA抽提試劑盒均購自Qiagen公司(美國)。RT試劑盒(高效cDNA逆轉錄試劑盒) 購自Applied Biosystems公司(美國)。pCMV6-NTCP,Nur77 gRNA及對照質粒(neo)均購于Origene公司(美國,RC210241)。鼠抗α-SMA購于Abcam公司(ab5694),兔抗Col1A1購于Thermo Fisher Scientific公司(MAI-141),兔抗TIMP-1購于Cell signaling公司 (D10E6),兔抗NTCP 購于SANTA CRUZ公司(sc-98484,美國), 兔抗Nur 77抗體分別購于美國和中國(NB100-56745, Novus,美國; BS3260, 巴傲德,南京), 鼠抗β-actin購于Abcam公司(ab8227),二抗購于GE Healthcare公司(英國)。實驗中所用的Huh 7.5.1細胞,HepAD38細胞及人肝星狀細胞LX-2細胞均由本實驗室保存。重組人TGF-β1蛋白購自R&D System公司(240-B/CF)。

      1.2方法

      1.2.1 組織標本來源選取在中國科學技術大學附屬第一醫(yī)院(安徽省立醫(yī)院) 感染病院的8例住院慢性乙型肝炎患者的肝組織標本。納入標準:既往未接受過抗病毒治療;診斷標準符合慢性乙肝防治指南[6]。排除標準:合并其他嗜肝病毒感染,如丙肝病毒、戊肝病毒及艾滋病毒等;腫瘤;合并其他器官嚴重損害。入組患者行生化、HBV DNA 定量、HBV血清學及病毒學檢查,肝穿刺術。所取肝組織行進一步病理檢查。

      1.2.2組織病理學及免疫組化使用巴德活檢槍針(18 G, 910 cm,美國),通過肝穿刺采集患者肝組織。將患者肝組織固定于10%甲醇中,石蠟包埋切片。行HE和Masson′S染色?;颊吒卫w維化分期采用Metavir標準:S0:無纖維化; S1:少量纖維;S2:纖維組織向小葉外延伸;S3:橋形纖維化;S4:假小葉形成,肝硬化[7]。同時,將組織切片用內源性過氧化物酶和牛血清白蛋白封閉后,使用Nur77抗體4 ℃孵育過夜,次日,將切片用PBS洗凈,在37 ℃下復溫30 min;然后將切片與HRP標記的羊抗兔二抗(稀釋至1∶200)在37 ℃中孵育30 min[8],PBS洗凈后蘇木精復染,最后將切片再次洗凈,顯微鏡下觀察。

      1.2.3細胞培養(yǎng)與病毒制備Huh 7.5.1、 Hep AD38及LX-2 細胞均在含10%胎牛血清的DMEM培養(yǎng)基中培養(yǎng)。培養(yǎng)箱溫度設為37 ℃,CO2的濃度為5%(v/v)。本研究使用的乙肝病毒來源于Hep AD38 細胞上清液。Hep AD38 常規(guī)培養(yǎng)時加G418, 終濃度為200 μg/mL。收集病毒時,停用G418,培養(yǎng)3 d后收集上清,4 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.4質粒的抽提與轉染pCMV6-NTCP、Nur 77 gRNA及對照質粒(neo)的抽提使用質粒抽提試劑盒(Qiagen公司),操作步驟按照說明書進行,實驗結束,測質粒濃度,雙蒸水稀釋至1 μg/μL,-20 ℃保存?zhèn)溆?。pCMV6-NTCP、Nur 77 gRNA及對照質粒(neo)的轉染使用Lipofectamine LTX reagent(Life Technologies, USA)。先將1 μg質粒(pCMV6-NTCP、Nur 77 gRNA及neo)與0.5 μL PLUSTMReagent混勻,溶于培養(yǎng)基中,靜置5 min;同時,將LTX Reagent 2 μL溶于培養(yǎng)基中,靜置5 min;然后將兩者混勻,加入到細胞中。比例如下:質粒(μg)∶PLUSTMReagent (μL)∶LTX Reagent (μL)=1∶0.5∶2, 具體操作見說明書。細胞轉染質粒如下:NTCP-Huh 7.5.1細胞(轉染pCMV6-NTCP的Huh 7.5.1細胞),LX-2-neo (LX-2轉染對照質粒neo),LX-2-Nur77gRNA(LX-2轉染Nur77gRNA)。

      1.2.5NTCP-Huh7.5.1細胞的鑒定及HBV感染模型的建立將Huh 7.5.1按照5×104細胞/mL接種于12孔版,24 h后轉染pCMV6-NTCP,72 h后收集細胞蛋白,檢測NTCP蛋白的表達。將收集的HBV病毒液加入NTCP-Huh 7.5.1細胞中,72 h后,收集細胞上清液總的DNA及細胞RNA。

      1.2.6TGF-β1刺激LX-2細胞將LX-2細胞按照5×104細胞/mL接種于12孔版,24 h后換液,加用TGF-β1刺激72 h (終濃度為10 ng/mL)。換液后再分別轉染Nur77gRNA及對照質粒 (neo),24 h后換液,加用TGF-β1刺激72 h (終濃度為10 ng/mL)。分為LX-2-neo組(LX-2轉染neo)、LX-2-neo+TGF-β1組(LX-2轉染neo后TGF-β1刺激)、LX-2-Nur 77 gRNA+TGF-β1組(LX-2轉染Nur 77 gRNA后TGF-β1刺激)。實驗結束后收集各組細胞RNA及蛋白質,檢測細胞Nur 77、α-SMA、TIMP-1及CoL1A1 mRNA及蛋白表達。

      1.2.7細胞共培養(yǎng)體系的建立NTCP-Huh 7.5.1與LX-2 細胞共培養(yǎng)采用Transwell系統。將HBV感染的NTCP-Huh 7.5.1細胞按照2×104細胞/1 mL接種于Transwell的下室,將轉染NR4A1 gRNA后的LX-2 細胞按照1×104細胞/0.5 mL接種于Transwell的上室,孵育72 h后,收集細胞進行RNA及蛋白質提取。根據轉染方式不同分為:LX-2-neo組(LX-2轉染對照質粒)、LX-2-neo+ HBV組(LX-2轉染對照質粒與HBV感染的NTCP-Huh 7.5.1細胞共培養(yǎng))、LX-2-Nur77gRNA+ HBV組(LX-2轉染Nur 77 gRNA與HBV感染的NTCP-Huh 7.5.1細胞共培養(yǎng))。

      1.2.8逆轉錄PCR(RT-PCR)及定量PCR(qPCR)細胞RNA的提取使用RNA抽提試劑盒(Qiagen公司, 美國),具體操作步驟參照說明書。RT按照說明書操作進行。qPCR在ABI QuantStudio?3 system (Applied Biosystems Inc)中完成。使用SYBR Green Master Mix (Thermo Fisher Scientific, Waltham, USA)標記。通過△△Ct與作為內部對照的GAPDH進行比較,測算目標基因表達 相對量。引物序列如下:α-SMA,F(5′-3′)AAAAGACAGCTACGTGGGTGA,R(5′-3′)GCCATGTTCTATCGGGTACTTC;TIMP-1,F(5′-3′) ACTTCCACAGGTCCCACAAC,R(5′-3′) GCTAAGCTCAGGCTGTTCCA;Col1A1,F(5′-3′) CAGCCGCTTCACCTACAGC,R(5′-3′) TCAATCACTGTCTTGCCCCA;TGF-β1,F(5′-3′) CTCTCCGACCTGCCACAGA,R(5′-3′) AACCTAGATGGGCGCGATCT;NR4A1,F(5′-3′) GGCATGGTGAAGGAAGTTGT,R(5′-3′)CAGGGAAGTGAGGAGATTGG;HBV,F(5′-3′)GGAAAGAAGTCAGAAGGCAA, R(5′-3′)CACCTCTGCCTAATCATC;GAPDH, F(5′-3′) TCACCACCATGGAGAAGGC, R(5′-3′) GCTAAGCAGTTGGTGGTGCA。

      1.2.9Western-blot細胞蛋白質的提取使用試劑盒。提取的蛋白質通過在10%SDSPAGE凝膠上運行,并在聚偏氟乙烯膜(PVDF)上電轉移。用5%牛血清清蛋白孵育后,用一抗在4 ℃孵育過夜。用TBST溶液(Tris 10 mm,NaCl 150 mm,Tween-20 0.05%(v/v))洗滌后,用HRP標記的山羊抗兔二級抗體孵育1 h。然后用TBST再次清洗斑點,然后用ECL染色。通過與β-actin條帶的比較,對相關表達進行定量。

      2 結 果

      2.1肝纖維化分期及免疫組織化學染色檢測肝組織Nur77表達S1期肝組織可見大致正常肝組織及少量纖維形成。S2期肝組織可見肝小葉結構破壞,纖維組織向小業(yè)內延伸; S3期肝組織結構紊亂,可見橋形纖維化; S4期肝組織可見肝小葉結構破壞和假小葉形成。見圖1。免疫組化結果顯示,隨著纖維化分級的增加,肝組織Nur77表達增強。見圖1。

      a-d:肝結構(HE ×100);e-h:膠原(Masson ×100); i-l:肝組織Nur 77的表達(免疫組化染色 ×200)

      圖示隨著肝纖維化分期的增加,肝組織Nur77表達增強

      圖 1 肝組織學變化及免疫組織化學染色檢測不同分期肝組織Nur77的表達

      Figure 1 Liver pathologyand Nur 77 expressionin liver tissue with different fibrosis score

      2.2NTCP-Huh 7.5.1 細胞的構建以及HBV感染測定Western blot檢測顯示,正常Huh 7.5.1細胞不表達NTCP,轉染pCMV6-NTCP后,Huh7.5.1 細胞高表達NTCP,見圖2。

      qPCR結果顯示,HBV感染后72 h,NTCP-Huh 7.5.1上清中HBV DNA水平(×103copies/mL)明顯升高[(5.39±0.96)vs(0.00±0.00),P<0.05],同時細胞中TGF-β1mRNA水平明顯升高[(1.94±0.37)vs(1.00±0.00),P<0.05]。

      2.3TGF-β1/Nur77 信號通路對LX-2活化的影響qPCR結果顯示,TGF-β1刺激LX-2 細胞72h后, Nur 77,α-SMA, TIMP-1及CoL1A1mRNA表達明顯高于無TGF-β1刺激的LX-2細胞(P<0.05)。見表1。此外,與LX-2-neo組Nur 77、 α-SMA、TIMP-1、CoL1A1表達比較,LX-2-neo+ TGF-β1組明顯升高(P<0.01)。LX-2-Nur 77 gRNA+ TGF-β1組Nur 77、α-SMA、TIMP-1、CoL1A1表達較LX-2-neo+ TGF-β1組明顯降低(P<0.01)。見表2。Western-blot結果表明,敲除LX-2細胞Nur 77后,TGF-β1刺激無法增強LX-2細胞α-SMA,、TIMP-1及CoL1A1 mRNA和蛋白表達。見圖3。

      1:Huh 7.5.1; 2:NTCP-Huh 7.5.1

      圖 2 Western-blot 檢測NTCP 表達

      Figure 2 Expression of NTCP in Huh 7.5.1 and NTCP-Huh 7.5.1 cells by Western-blot

      細胞處理Nur 77α-SMATIMP-1CoL1A1LX-2100.00±18.15100.00±5.74100.00±8.52100.00±17.92LX-2+TGF-β1227.14±12.16*213.97±7.86**213.82±23.30*358.34±31.08**

      與LX-2比較,*P<0.01、**P<0.001

      圖 3 Western-blot檢測LX-2 細胞蛋白表達

      Figure 3 Protein expression in LX-2 cells by Western-blot

      2.4敲除LX-2細胞的Nur 77對HBV活化LX-2的影響qPCR表明,與LX-2-對照質粒組 Nur 77、α-SMA、 TIMP-1及CoL1A1表達比較,LX-2-neo+ HBV組均明顯升高(P<0.01);與LX-2-neo+ HBV組Nur 77、α-SMA、TIMP-1及CoL1A1表達比較,LX-2-Nur77gRNA+ HBV組明顯降低(P<0.01)。見表2。Western-blot結果表明,敲除LX-2細胞的Nur 77后,與HBV感染的NTCP-Huh 7.5.1共培養(yǎng)無法增強LX-2細胞Nur 77、α-SMA、TIMP-1及CoL1A1蛋白表達。見圖4。

      圖 4 Western-blot檢測LX-2 細胞蛋白表達

      Figure 4 Protein expression in LX-2 cells by Western-blot

      組別Nur 77α-SMATIMP-1CoL1A1LX-2-neo組100.00±27.27100.00+10.81100.00±8.55100.00±22.31LX-2-neo+ TGF-β1組204.63±38.24**227.72±13.23*216.00±13.20**330.07±71.63**LX-2-Nur 77 gRNA+ TGF-β1組44.77±5.94*##102.93±15.12#110.15±6.22##110.29±14.84##LX-2-對照質粒組100.00±26.14100.00±22.18100.00±3.55100.00±2.76LX-2-neo+ HBV組199.10±12.84▲▲205.60±49.53▲213.16±14.93▲▲271.77±31.05▲▲LX-2-Nur77gRNA+ HBV組42.07±3.53▲☆96.63±15.20☆☆95.58±11.27☆108.97±12.41☆

      與LX-2-neo組比較,*P<0.01、**P<0.001;與LX-2-neo+TGF-β1組比較,#P<0.01、##P<0.001; 與LX-2-對照質粒組比較,▲P<0.01、▲▲P<0.001;與LX-2-neo+ HBV組比較,☆P<0.01、☆☆P<0.001

      3 討 論

      肝纖維化是肝對慢性損傷的愈合反應。在我國,慢性仍是肝纖維化的主要誘因。盡管疫苗的廣泛接種顯著降低了HBV的感染率,慢性HBV感染仍不可避免地會發(fā)展為肝纖維化甚至肝硬化。大量研究證實,TGF-β1對星狀細胞的活化是肝纖維化的核心。隨著研究的深入,發(fā)現,眾多因子在TGF-β1信號的信號傳導中發(fā)揮重要作用[4,9], 如Nur 77。 Nur 77,又被稱為 TR3, NR4A1或者NGF-IB,屬于類固醇激素受體超家族[10]。Nur 77參與了一系列生物學進程,包括糖及脂肪代謝,細胞凋亡,血管內平衡及纖維化等[4, 11-12]。因此,本研究探索了TGF-β1/Nur 77在HBV誘導的星狀細胞活化中的作用,為乙肝肝纖維化的治療提供新的靶點。

      本研究初步觀察了8例在我院行肝穿的慢乙肝初治患者,評估了肝纖維化程度與Nur77 表達的關系,發(fā)現Nur77在肝臟的表達隨著肝纖維化程度的增加而增強,提示Nur 77在乙肝肝纖維化進程中可能發(fā)揮一定的作用。為了深入研究HBV及其相關疾病,科學家們建立了多種細胞模型,如Hep AD38, 這是一種通過基因手段改造后的細胞,可分泌D型HBV,其缺點是不能模擬HBV的自然感染過程。鈉離子?;悄懰峁厕D運蛋白(sodium taurocholate cotransporting polypeptide,NTCP)是HBV的功能性受體,HBV可借此感染肝細胞[13]??茖W工作者也嘗試在肝細胞中過表達NTCP以建立HBV體外感染模型,并取得了豐碩的成果[14]。本研究顯示,感染72小時,NTCP- Huh 7.5.1上清中 HBV DNA水平為5.39±0.96×103copies/ml,明顯高于對照 (P<0.01),說明NTCP-Huh 7.5.1細胞能支持HBV復制,這與課題組前期結果相符[15]。qPCR結果顯示,HBV 感染后的NTCP-Huh 7.5.1高表達TGF-β1,明顯高于正常培養(yǎng)的NTCP-Huh 7.5.1(P<0.01),而TGF-β1被認為是肝纖維化的重要促進因子[16]。

      本研究使用TGF-β1刺激人肝星狀細胞(LX-2)后,LX-2細胞高表達Nur 77,同時,肝纖維化指標α-SMA, TIMP-1及CoL1A1 mRNA表達明顯升高。使用gRNA敲除LX-2細胞Nur 77后,即使再使用TGF-β1刺激,肝纖維化指標仍無明顯升高,這說明TGF-β1通過Nur 77啟動肝纖維化進程。

      為深入探索細胞間相互作用在肝纖維化進程中的作用,學者們開發(fā)出了細胞共培養(yǎng)系統。在這個系統中,可以將肝細胞與肝星狀細胞共培養(yǎng),兩種細胞由0.4um的膜隔開,但可以發(fā)生物質交換和信號傳導[17]。本研究結果顯示, 與感染HBV的Huh 7.5.1細胞共培養(yǎng)后, LX-2細胞明顯活化, α-SMA, TIMP-1及CoL1A1 mRNA表達明顯升高, 敲除LX-2細胞Nur77后, 肝纖維化指標表達明顯下降, 說明HBV啟動TGF-β1/ Nur77信號通路促進肝纖維化進展。

      綜上所述,本文從細胞水平以及組織學兩個層面初步證實了HBV感染可能對TGF-β1/ Nur77信號通路的促進作用,并通過活化肝星狀細胞促進肝纖維化進展。但仍需要擴大樣本量并進行動物實驗進一步明確TGF-β1/ Nur77信號通路在乙肝肝纖維化中的作用及機制,以期為將來為乙肝肝纖維化的藥物開發(fā)提供理論依據。

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