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      乳桿菌產(chǎn)X-脯氨酰-二肽?;?氨肽酶活性對(duì)契達(dá)干酪抗氧化活性及品質(zhì)的影響

      2020-08-26 03:49:42趙銘琪張秀秀李曉東張宏達(dá)張宏偉
      食品科學(xué) 2020年16期
      關(guān)鍵詞:發(fā)酵劑酪蛋白干酪

      趙銘琪,張秀秀,李曉東*,劉 璐*,張宏達(dá),張宏偉,白 杰

      (東北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品學(xué)院,乳品科學(xué)教育部重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,黑龍江 哈爾濱 150030)

      干酪富含多種乳酸菌,除有些乳酸菌自身具有一定的功能外,其發(fā)酵代謝還會(huì)生成功能性脂類、γ-氨基酸和活性肽等生物活性物質(zhì)[1],其中活性肽是干酪主要的活性物質(zhì),由2~20 個(gè)氨基酸組成,是通過乳酸菌分泌的蛋白酶對(duì)干酪酪蛋白水解生成的,使干酪兼具營養(yǎng)與功能價(jià)值[2-5]。研究表明,抗氧化肽具有清除體內(nèi)自由基的功能,能減輕自由基對(duì)機(jī)體的損傷,是一種理想的天然抗氧化劑[6]。抗氧化肽對(duì)紫外線引起的線粒體損傷和自由基誘導(dǎo)的脂質(zhì)過氧化具有明顯的保護(hù)作用,此外,抗氧化肽的作用機(jī)理還包括給抗氧化酶提供氫、鰲合金屬離子等[7-8]。

      在干酪成熟中后期,發(fā)酵劑乳球菌由于自溶或干酪體系pH值降低,缺少碳水化合物而使其菌數(shù)快速減少,但非發(fā)酵劑乳酸菌,尤其是含有豐富蛋白酶的乳桿菌,可降解蛋白生成滿足自身生長的氨基酸和肽類,逐漸成為優(yōu)勢菌株,促進(jìn)干酪抗氧化肽的產(chǎn)生[9]。這些乳桿菌細(xì)胞內(nèi)含有脯氨酰亞氨基氨肽酶(Pep I)、廣譜性氨肽酶(Pep N、Pep C)、X-脯氨酰-二肽?;?氨肽酶(X-prolyl-dipeptide acyl-aminopeptidase,Pep X)等肽酶。而只有Pep N、Pep C、Pep X與源自酪蛋白的抗氧化肽降解有關(guān)。其中Pep N、Pep C對(duì)包含堿基、疏水性/無電荷或N-末端含有芳香族氨基酸殘基的多肽具有特異性,Pep X能夠切割N-末端富含脯氨酸的多肽,具有脯氨酸忒性的水解活性,可釋放酪蛋白中含有脯氨酸的氨基酸序列。其他氨肽酶不能水解N-末端或者倒數(shù)第2位含有脯氨酸的多肽,而富含脯氨酸的β-酪蛋白又是潛在的抗氧化肽的來源,目前已發(fā)現(xiàn)有超過80%的β-酪蛋白抗氧化肽與脯氨酸相關(guān)[10],因此,可推斷Pep X是干酪成熟過程中的關(guān)鍵蛋白酶。

      近年來,關(guān)于氨肽酶對(duì)干酪成熟過程中糖酵解、蛋白水解程度、質(zhì)地以及風(fēng)味形成方面影響的研究很多,但Pep X與干酪抗氧化活性間的關(guān)系尚不明確。經(jīng)過前期研究發(fā)現(xiàn)市售的契達(dá)干酪具有一定的抗氧化活性,但活性普遍偏低,自由基清除率僅為18%左右,作用效果不明顯[11-14]。因此,本研究以契達(dá)干酪為研究對(duì)象,選取干酪生產(chǎn)過程中常用的非發(fā)酵劑乳桿菌4 株(干酪乳桿菌、鼠李糖乳桿菌、植物乳桿菌、瑞士乳桿菌),利用紫外誘變的方法對(duì)菌株進(jìn)行3 輪紫外誘變,誘變出Pep X活性不同的菌株,進(jìn)行遺傳穩(wěn)定性研究后,利用其制備干酪。在干酪成熟時(shí)期監(jiān)測Pep X活性 及干酪的抗氧化活性,以明確研究Pep X活性對(duì)干酪抗氧化能力的影響并建立二者間的相關(guān)性。而后對(duì)干酪進(jìn)行感官及質(zhì)構(gòu)分析,明確成熟過程中Pep X對(duì)干酪品質(zhì)的影響,以期為干酪的開發(fā)與應(yīng)用提供理論基礎(chǔ)。

      1 材料與方法

      1.1 菌株、材料與試劑

      干酪乳桿菌(Lactobacillus casei)1.0319、鼠李糖乳桿菌(L. rhamnosus)1.0911、植物乳桿菌(L.plantarum)1.0202、瑞士乳桿菌(L. helveticus)1.0612均來自東北農(nóng)業(yè)大學(xué)乳品科學(xué)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室的菌種庫;商業(yè)發(fā)酵劑Lactococcus lactissubsp.lactis和L. lactissubsp.cremoris混合菌種凝乳酶Stamix 1150 北京漢森公司。

      生牛乳取自完達(dá)山牧場;1,1-二苯基-2-三硝基苯肼(1,1-diphenyl-2-picrylhydrazyl,DPPH)、鄰菲羅啉、2,2’-聯(lián)氮雙(3-乙基苯并噻唑啉- 6-磺酸)(2,2’-azino-bis(3-ethylbenzothiazoline-6-sulfonic acid),ABTS) 天津市科密歐化學(xué)試劑開發(fā)中心;磷酸二氫鈉、磷酸氫二鈉北京奧博星生物技術(shù)有限公司;對(duì)硝基苯胺 阿拉丁試劑上海有限公司;檸檬酸鈉、檸檬酸 天津市博迪化工有限公司。

      1.2 儀器與設(shè)備

      pH計(jì) 上海雷磁科技有限公司;數(shù)顯恒溫水浴鍋常州朗越儀器制造有限公司;721可見分光光度計(jì)上海菁華儀器設(shè)備有限公司。

      1.3 方法

      1.3.1 菌株的活化與誘變

      根據(jù)馬春麗等[15]的方法稍作改動(dòng),對(duì)4 株菌進(jìn)行紫外誘變。取菌懸液于平板中,置于15 W紫外燈下照射,時(shí)間分別為20、40、60、80、100、120 s,且照射過程中須不斷攪拌。選取菌株進(jìn)行菌落計(jì)數(shù),并計(jì)算致死率。確定照射時(shí)間后,對(duì)菌株在此條件下誘變3 輪。

      經(jīng)過1、2、3 輪紫外誘變的L. plantarum、L. casei、L. helveticus、L. rhamnosus分別為:UV-P1、UV-P2、UVP3;UV-C1、UV-C2、UV-C3;UV-H1、UV-H2、UVH3;UV-R1、UV-R2、UV-R3。

      1.3.2 Pep X活性的測定

      1.3.2.1 乳桿菌Pep X的粗提

      根據(jù)郭宇星等[16]的方法略作修改,將生長至活菌數(shù)為1.0×109CFU/mL的培養(yǎng)液取出后,4 500 r/min離心20 min,用pH 7.1的Tris-HCl緩沖液洗滌,重復(fù)此操作3 次,即可收集菌體。將收集到的菌體懸浮于Tris-HCl緩沖液中進(jìn)行超聲破碎。超聲破碎后,4 ℃、4 500 r/min離心30 min,取上清液,即為所需酶液。

      1.3.2.2 乳桿菌產(chǎn)PepX活性的測定

      根據(jù)張爽[17]方法略作修改。取0.2 mL酶液,加入到0.05 mL 16.4 nmol/L底物甘氨酰-脯氨酰-對(duì)硝基苯胺對(duì)甲苯磺酸鹽溶液中,37 ℃水浴60 min后,加入乙酸終止反應(yīng),并在410 nm波長處測定吸光度。空白組以Tris-HCl緩沖液代替酶液進(jìn)行同樣操作。Pep X活性定義為:在37 ℃時(shí),每分鐘生成1 μmol對(duì)硝基苯胺為1 個(gè)活力單位。

      1.3.3 契達(dá)干酪的制備

      工藝流程:原料乳→過濾、巴氏殺菌(63 ℃,30 min)→冷卻(32 ℃)→添加發(fā)酵劑和非發(fā)酵劑乳桿菌→發(fā)酵(32 ℃,60 min)→調(diào)整酸度→加氯化鈣→添加凝乳酶→凝乳(32 ℃,90 min)→切割(1 cm3)→攪拌升溫至42 ℃(每3~5 min升高1 ℃)→保溫?cái)嚢瑁?0 min)→靜置→排乳清→凝乳堆砌(每15 min反轉(zhuǎn)堆積一次,反轉(zhuǎn)7 次)→加鹽→成型壓榨→包裝→成熟。

      發(fā)酵劑添加量根據(jù)Liu Lu等[18]方法略作修改,具體如下:空白組僅添加商業(yè)發(fā)酵劑,且發(fā)酵劑添加量(質(zhì)量分?jǐn)?shù),下同)為0.01%。各實(shí)驗(yàn)組中發(fā)酵劑添加量均為0.005%,非發(fā)酵劑乳桿菌添加量均為12%(體積分?jǐn)?shù)),分別記為:UV-C3組、L. casei組、UV-H3組、L. helveticus組、UV-R3組、L. rhamnosus組、UV-P3組、L. plantarum組。

      1.3.4 干酪中PepX活性的測定

      參照郭宇星等[16]的方法略作修改。取5 g樣品和磷酸鹽緩沖液(pH 6.6)5 mL于研缽中研磨2 min,5 000 r/min離心30 min。取0.2 mL上清液加入1.6 mL Tris-HCl(pH 7.1)和0.2 mL 16.4 nmol/L甘氨酰-脯氨酰-對(duì)硝基苯胺對(duì)甲苯磺酸鹽溶液,37 ℃水浴60 min,加入乙酸終止反應(yīng),并在410 nm波長處測定吸光度??瞻捉M以Tris-HCl緩沖液代替酶液進(jìn)行同樣操作。

      1.3.5 干酪抗氧化活性的測定

      1.3.5.1 契達(dá)干酪提取液的制備

      水溶性蛋白的提取在Bottesini等[19]方法基礎(chǔ)上略作修改。在干酪成熟過程中,每30 d進(jìn)行一次蛋白質(zhì)的提取。分別取干酪樣品10 g溶于100 mL水中,用勻漿機(jī)勻漿2 min(過濾、離心),取上清液重復(fù)3 次。

      1.3.5.2 DPPH自由基清除率的測定

      參照Shen Yingbin等[20]方法并略作修改。將1 mL DPPH-甲醇溶液與5 mL 15 mg/mL樣品溶液混合,避光反應(yīng)30 min后,在515 nm波長處測其吸光度As,用甲醇溶液調(diào)零,并用甲醇代替樣品進(jìn)行同樣操作作為空白Ac。DPPH自由基清除率計(jì)算如式(1)所示:

      1.3.5.3 羥自由基清除能力的測定

      參考Liu Jun等[21]方法并略作修改,將1 mL 0.75 mmol/L菲啰啉溶液、1.5 mL磷酸鹽緩沖液(pH 7.4)、1 mL 2 mg/mL樣品以及1 mL 0.75 mmol/L FeSO4溶液混合,并向混合液中加入1 mL 0.01% H2O2溶液。37 ℃條件下水浴30 min,在531 nm波長處測定吸光度As。將水解產(chǎn)物換成同體積的蒸餾水作為對(duì)照Ac,將加入的H2O2換成相同體積的蒸餾水作為對(duì)照Ar。羥自由基清除率計(jì)算如式(2)所示:

      1.3.5.4 還原能力的測定

      根據(jù)Duh等[22]方法略作調(diào)整。取1 mL 15 mg/mL樣品,加入2.5 mL磷酸鹽緩沖液(pH 6.6)和2.5 mL的10 mg/mL鐵氰化鉀溶液,50 ℃保溫20 min,快速冷卻,加入2.5 mL 10 g/100 mL三氯乙酸溶液,混勻后于3 000 r/min離心10 min。取1.5 mL上清液與0.2 mL 0.1 g/100 mL氯化鐵溶液反應(yīng)10 min。以蒸餾水調(diào)零,在700 nm波長處測定其吸光度。

      1.3.6 契達(dá)干酪的質(zhì)構(gòu)分析

      參照Liu Lu等[9]的方法略作修改。用TA.XT plus型質(zhì)構(gòu)儀進(jìn)行測定,測試前探頭下降速率為5 mm/s,測試時(shí)速率為1.0 mm/s,觸發(fā)點(diǎn)值為5 g,兩次下降間隔為5.0 s。

      1.3.7 契達(dá)干酪的感官評(píng)價(jià)

      根據(jù)Ahmed等[23]的方法進(jìn)行感官評(píng)價(jià)。評(píng)價(jià)標(biāo)準(zhǔn)如表1所示。

      表1 契達(dá)干酪感官評(píng)價(jià)Table 1 Criteria for of sensory evaluation of Cheddar cheese

      1.4 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析

      每組實(shí)驗(yàn)重復(fù)3 次,數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)分析采用Statistix 8.1軟件進(jìn)行分析,利用Origin軟件進(jìn)行作圖。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 菌株的誘變

      2.1.1 紫外誘變時(shí)間的確定

      圖1 紫外誘變時(shí)間對(duì)菌株致死率的影響Fig. 1 Effect of UV mutation time on lethality

      如圖1所示,當(dāng)誘變菌株的致死率達(dá)到80%~90%時(shí),可得到變異程度較大的變異菌株[15]。以此為依據(jù),選擇100 s為菌株的最佳誘變時(shí)間。

      2.1.2 誘變前后菌株的Pep X活性

      圖2 誘變前后菌株的Pep X活性變化Fig. 2 Activity of Pep X in strains before and after mutagenesis

      以對(duì)硝基苯胺為標(biāo)準(zhǔn)物的標(biāo)準(zhǔn)曲線為y=5.965 5x+0.070 5,相關(guān)系數(shù)為0.999 5。如圖2所示,誘變可使菌株所產(chǎn)Pep X活性不同程度提升,經(jīng)過3 輪誘變后,L. rhamnosus的Pep X活性最高,最大值為12.73 U/mL。

      2.1.3 誘變菌株遺傳穩(wěn)定性分析

      表2 誘變菌株的傳代穩(wěn)定性實(shí)驗(yàn)結(jié)果Table 2 Genetic stability of mutant strains

      如表2所示,比較誘變菌株的第1、5、10代,三者之間Pep X活性差異均不顯著(P>0.05)。因此,經(jīng)過紫外誘變后,菌株的遺傳性狀相對(duì)穩(wěn)定,可作為非發(fā)酵劑乳桿菌用于后續(xù)的干酪制備。

      2.2 契達(dá)干酪中Pep X活性

      如圖3所示,隨著成熟時(shí)間的延長,在0~90 d內(nèi),干酪中Pep X活性均呈上升趨勢,且均在第90天時(shí)達(dá)到最大值,而后呈現(xiàn)下降趨勢。添加了非發(fā)酵劑乳桿菌的各組干酪中Pep X活性均高于空白組,且經(jīng)過誘變后菌株所產(chǎn)的Pep X活性顯著高于未經(jīng)誘變的菌株(P<0.05)。此外,L. rhamnosus組、UV-R3組中的Pep X活性均高于其他組,其最大值分別為4.87、10.16 U/g(P<0.05)。這是由于Pep X屬于胞內(nèi)酶,干酪成熟過程中的微生物繁殖和代謝反應(yīng)誘導(dǎo)了乳桿菌的自溶現(xiàn)象,使得Pep X活性不斷升高。到后期產(chǎn)生的酶減少,加上成熟過程中環(huán)境的變化,酶活性降低,導(dǎo)致酶活性整體趨勢有所下降??赏茢啵谇?0 d內(nèi),乳桿菌逐漸自溶,致使Pep X活性也達(dá)到最大值。這與宋雪梅[24]的研究結(jié)果相似。

      圖3 契達(dá)干酪成熟過程中Pep X活性變化Fig. 3 Change in Pep X activity in Cheddar cheese during ripening

      2.3 契達(dá)干酪活菌數(shù)

      表3 契達(dá)干酪成熟過程中活菌數(shù)變化Table 3 Changes in viable cell count during the ripening process of Cheddar cheeeessee

      由表3可知,隨著成熟時(shí)間的延長,干酪中非發(fā)酵劑乳桿菌活菌數(shù)顯著下降(P<0.05)。而在成熟的第180天時(shí),各非發(fā)酵劑乳桿菌組干酪活菌數(shù)仍在7.01(lg(CFU/g))以上,符合益生菌食品活菌數(shù)的要求。此外,不同非發(fā)酵劑乳桿菌制備的契達(dá)干酪活菌數(shù)無顯著性差異(P>0.05)。得出非發(fā)酵劑乳桿菌活菌數(shù)對(duì)干酪抗氧化活性的影響可忽略不計(jì)。

      2.4 契達(dá)干酪成熟過程中抗氧化性

      2.4.1 契達(dá)干酪成熟過程中DPPH自由基清除率

      如圖4所示,隨著成熟時(shí)間的延長,在前90 d,水溶性提取物的D P P H自由基清除率均顯著增加(P<0.05),且均在第90天時(shí)達(dá)到最大值(除空白組外最大值均達(dá)到30%以上)而后緩慢下降,且在第150天開始趨于穩(wěn)定。這是由于在成熟前期,酪蛋白在Pep X的作用下不斷降解,生成具有抗氧化活性的肽段,使得干酪抗氧化活性顯著提升。而在90 d后,由于Pep X活性有所下降,抗氧化肽生成速度減慢,且在發(fā)酵劑等作用下,又被分解成不具抗氧化活性的小肽甚至游離氨基酸,最終抗氧化肽的生成與分解會(huì)達(dá)到動(dòng)態(tài)平衡的狀態(tài),使抗氧化活性接近穩(wěn)定的狀態(tài)[25]。

      圖4 契達(dá)干酪成熟過程中DPPH自由基清除率Fig. 4 Change in DPPH radical scavenging rate during the ripening process of Cheddar cheese

      此外,在整個(gè)成熟過程中,非發(fā)酵劑乳桿菌組的DPPH自由基清除率均顯著高于空白組(P<0.05),且UV-R3組中的DPPH自由基清除率均顯著高于其他組(P<0.05),為68.43%。這是由于添加PepX活性越高菌株,水解干酪中的酪蛋白能力越強(qiáng),從而使得契達(dá)干酪水溶性提取物的DPPH自由基清除率越高。

      2.4.2 契達(dá)干酪成熟過程中的羥自由基清除率

      圖5 契達(dá)干酪羥自由基清除率Fig. 5 Change in hydroxyl radical scavenging rate during the ripening process of Cheddar cheese

      如圖5所示,在成熟期的前90 d,契達(dá)干酪的羥自由基清除率均隨著時(shí)間的延長而顯著增加(P<0.05),在第90天達(dá)到最大值,而后開始緩慢下降,在150 d開始趨于平穩(wěn)。在成熟過程中,非發(fā)酵劑乳桿菌組的羥自由基清除率均顯著高于空白組(P<0.05),誘變后非發(fā)酵劑乳桿菌組羥自由基其清除率顯著高于誘變前及空白組(P<0.05)。此外,L. rhamnosus組、UV-R3組的羥自由基清除率均顯著高于其他組(P<0.05),分別為33.73%、67.56%。這是因?yàn)樘砑恿水a(chǎn)Pep X活性高的菌株,其Pep X可水解更多的酪蛋白,生成具有抗氧化活性的肽段,可與羥自由基結(jié)合,抑制其與其他物質(zhì)發(fā)生反應(yīng),從而反映出較高的抗氧化活性[26]。

      2.4.3 契達(dá)干酪成熟過程中還原能力

      圖6 契達(dá)干酪成熟過程中還原能力Fig. 6 Change in reducing power during the ripening process of Cheddar cheese

      由圖6可知,隨著成熟時(shí)間的延長,契達(dá)干酪水溶性提取物的還原能力均呈現(xiàn)顯著上升趨勢,在第90天達(dá)到最大值,而后平緩下降至第150天時(shí),達(dá)到穩(wěn)定狀態(tài)。此外,非發(fā)酵劑乳桿菌組還原能力均顯著高于空白組,且添加了Pep X活性不同的非發(fā)酵劑乳桿菌后,其還原能力也存在著顯著差異(P<0.05)。這是由于同一株非發(fā)酵劑乳桿菌,經(jīng)過紫外誘變后,其Pep X活性顯著高于未經(jīng)誘變的菌株,進(jìn)而導(dǎo)致水解能力有所不同,最終還原能力之間也存在著顯著性差異。此外,L. rhamnosus組、UV-R3組還原能力顯著高于其他相應(yīng)組分,其還原能力(OD值)的最大值分別為0.367 3、0.684 3。這是由于干酪水溶性提取物的還原能力與分子質(zhì)量大小有關(guān),相同情況下,分子質(zhì)量越小其還原能力越強(qiáng)[27],產(chǎn)Pep X活性較強(qiáng)的UV-P3組,其還原能力也隨之提高。

      2.5 相關(guān)性分析

      表4 添加UV-R3干酪中活菌數(shù)、Pep X活性和抗氧化性間的相關(guān)性分析Table 4 Correlation analysis between viable cell count, Pep X activity and antioxidant activity in cheese

      為建立契達(dá)干酪的抗氧化活性與乳桿菌產(chǎn)的Pep X活性間的聯(lián)系,選取抗氧化活性最高的UV-R3組,對(duì)活菌數(shù)、Pep X活性和抗氧化性間的相關(guān)性進(jìn)行分析。如表4所示,干酪的抗氧化活性(DPPH自由基清除率、羥自由基清除能力、還原能力)與干酪的成熟時(shí)間極顯著相關(guān)(P<0.01),說明Pep X活性可直接影響酪蛋白水解成抗氧化活性的肽,并最終影響干酪的抗氧化活性。

      2.6 質(zhì)構(gòu)分析

      由于在第90天時(shí),干酪的抗氧化活性達(dá)到最大值,因此對(duì)成熟90 d后的干酪進(jìn)行質(zhì)構(gòu)分析(表5)。膠凝性、凝聚性和咀嚼性無顯著性的變化??瞻捉M干酪的硬度顯著高于非發(fā)酵劑乳桿菌組(P<0.05),這是由于高活性Pep X菌株的加入加速了酪蛋白的水解度,使得酪蛋白原有的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu)被破壞,導(dǎo)致干酪的結(jié)構(gòu)變得松散,最終硬度下降[28]。而空白組與非發(fā)酵劑乳桿菌組的膠黏性和咀嚼性并無顯著差異(P>0.05)。加入高活性Pep X菌株的非發(fā)酵劑乳桿菌組干酪彈性顯著高于空白組(P<0.05),而加入低活性Pep X菌株的非發(fā)酵劑乳桿菌組干酪彈性與空白組無顯著差異(P>0.05)。這是由于Pep X屬于胞內(nèi)蛋白酶,將大分子的肽段水解,產(chǎn)生更多的共價(jià)鍵,使得干酪的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)破壞,形成更小的網(wǎng)狀結(jié)構(gòu),進(jìn)而提升了干酪的彈性[28]。

      表5 契達(dá)干酪成熟90 d后質(zhì)構(gòu)分析Table 5 Texture analysis of Cheddar cheese ripened for 3 to 6 months

      2.7 感官分析

      如表6所示,隨著成熟時(shí)間的延長,契達(dá)干酪的外觀變化不顯著,且風(fēng)味評(píng)分均在120 d達(dá)到最大值,而后呈緩慢下降趨勢。此外,隨著成熟時(shí)間的延長,各組干酪的苦味得分均呈顯著下降趨勢(P<0.05)。非發(fā)酵劑乳桿菌組干酪苦味顯著高于空白組(P<0.05),這是由于高活性的Pep X加速了酪蛋白水解,產(chǎn)生了苦味肽。

      綜合成熟過程中契達(dá)干酪的感官質(zhì)構(gòu)分析及抗氧化活性情況,可推斷高活性Pep X的非發(fā)酵劑乳桿菌組可在成熟120 d食用,此時(shí)干酪抗氧化活性相對(duì)較高,感官及質(zhì)構(gòu)效果最佳[29-30]。

      表6 契達(dá)干酪成熟90 d后感官分析Table 6 Sensory analysis of Cheddar cheese ripened for 3 to 6 months

      3 結(jié) 論

      利用誘變產(chǎn)生的高Pep X活性乳桿菌制備契達(dá)干酪,可以顯著增加干酪的抗氧化性。在成熟過程的前90 d,其抗氧化活性(DPPH自由基清除率、羥自由基清除率和還原能力)隨著時(shí)間的延長而逐漸升高,在第90天達(dá)到最大值,而后略有下降,在150 d后趨于穩(wěn)定,但120 d后干酪苦味感官評(píng)分顯著降低。UV-R3組的Pep X活性和抗氧化活性顯著高于其他組(P<0.05)。由此,非發(fā)酵劑乳桿菌產(chǎn)Pep X活性與干酪的抗氧化活性間存在極顯著正相關(guān)(P<0.01),且在成熟第120天時(shí),苦味感較小且質(zhì)構(gòu)情況較好。

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