楊超, 劉貝,魏微,胡芬, 姚洋,孫志華
(湖北文理學(xué)院附屬醫(yī)院, 襄陽市中心醫(yī)院 腫瘤科,襄陽 441000)
腫瘤相關(guān)巨噬細(xì)胞(tumor-associated macrophage,TAM)是指浸潤于腫瘤間質(zhì)中的巨噬細(xì)胞(macrophage, M)[1]。TAM長期在腫瘤微環(huán)境下會(huì)逐漸形成獨(dú)特的表型,同時(shí)在功能上也會(huì)發(fā)生明顯改變。根據(jù)活化狀態(tài)和功能,TAM可以分為M1和M2型[2-3]。研究發(fā)現(xiàn),在人類常見的多種腫瘤中,TAM隨腫瘤發(fā)展而逐漸以M2型為主,M2型巨噬細(xì)胞(M2 macrophage,M2-M)更有助于腫瘤的生長、侵襲和轉(zhuǎn)移[4-6]。因此,有效調(diào)控腫瘤微環(huán)境中的TAM表型有望成為腫瘤治療的方向之一。肝細(xì)胞生長因子(hepatocyte growth factor,HGF)是M2-TAM在腫瘤微環(huán)境中分泌的一種重要的細(xì)胞因子[7]。為了解在非小細(xì)胞肺癌中HGF以及M2-TAM的作用,本研究探討了HGF及其上游靶基因miR-142-5p在以M2-TAM為主的非小細(xì)胞肺癌中的功能,同時(shí)驗(yàn)證M2-TAM對(duì)非小細(xì)胞肺癌的促生長和轉(zhuǎn)移作用。
1.1 材料與試劑小鼠RAW264.7巨噬細(xì)胞和小鼠肺癌Lewis細(xì)胞由襄陽市中心醫(yī)院醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)中心保存,10% FBS、青霉素和鏈霉素購自Invitrogen公司,RPMI 1640和DMEM培養(yǎng)液購自Life Technologies公司,Transwell小室、培養(yǎng)板購自Corning公司,TRIzol RNA提取試劑盒、Thermo反轉(zhuǎn)錄試劑盒購自Thermo Fisher Scientific公司,RNA純化試劑盒和RT-PCR試劑盒購自QIAGEN公司,ELISA試劑盒購自聯(lián)科生物公司,CCK-8、PBS和RIPA裂解緩沖液購自Beyotime Biotechnology公司,ELISA檢測儀購自Thermo公司,IL-4購自Sigma公司,Matrigel購自Bio-Rad公司,熒光素酶活性檢測試劑盒以及HGF-Wt和HGF-Mut質(zhì)粒購自Promega 公司,si-HGF (EMU037921-20UG)購自Sigma-Aldrich公司??故驝D206-PE抗體和CD163-FITC抗體購自BD Pharmingen公司。FACSCallibur流式細(xì)胞儀購自BD公司。
1.2 方法
1.2.1 細(xì)胞共培養(yǎng) 將1×105個(gè)/mL的小鼠M和肺癌Lewis細(xì)胞均分別接種到含10%滅活FBS的完全RPMI 1640培養(yǎng)液中,在37 ℃、 5%CO2完全飽和濕度條件下常規(guī)培養(yǎng),每2~3 d傳代1次,取處于對(duì)數(shù)生長期的細(xì)胞進(jìn)行試驗(yàn)。采用100 μg/mL的IL-4在體外將M誘導(dǎo)成為M2-M,通過Transwell系統(tǒng)將M與小鼠肺癌Lewis細(xì)胞共培養(yǎng),得到M2-TAM和普通TAM。
1.2.2miR-142-5p、CD206、CD163和HGFmRNA表達(dá)的RT-PCR檢測 取上述收集到的細(xì)胞,按照TRIzol試劑使用說明書抽提總RNA,采用Thermo NanoDrop 2000分光光度計(jì)檢測其濃度和純度,并采用Agilent-2100凝膠電泳系統(tǒng)檢測總RNA的完整性。應(yīng)用Primer 5.0軟件設(shè)計(jì)引物(表1),以GADPH為內(nèi)參。引物由TaKaRa公司合成。將TRIzol法提取得到的2組細(xì)胞總RNA反轉(zhuǎn)錄成cDNA。反應(yīng)條件:95 ℃預(yù)變性30 s,95 ℃變性5 s,60 ℃退火30 s,共45個(gè)循環(huán)。同時(shí)擴(kuò)增各個(gè)樣本的目的基因和內(nèi)參基因,每組細(xì)胞設(shè)計(jì)3個(gè)重復(fù)孔。通過GAPDH基因水平校正,采用2-ΔΔCt分析法檢測CD206、CD163、miR-142-5p和HGFmRNA的相對(duì)表達(dá)量。
表1 試驗(yàn)所用的引物序列
1.2.3 CD206、CD163的FACS檢測 分別采用PE標(biāo)記抗CD206,F(xiàn)ITC標(biāo)記抗CD163單抗處理細(xì)胞,F(xiàn)ACS檢測細(xì)胞表面CD206和CD163的表達(dá),試驗(yàn)重復(fù)3次,采用Cellquest軟件分析結(jié)果。
1.2.4 HGF、TGF-β、血管內(nèi)皮生長因子(vascular endothelial growth factor,VEGF)和IL-10的ELISA檢測 將處于對(duì)數(shù)生長期的各組細(xì)胞接種至6孔板,每組重復(fù)4個(gè)孔,繼續(xù)培養(yǎng)48 h。收集細(xì)胞上清液,以4 ℃ 1 000×g離心10 min。取離心后的上清液,采用ELISA檢測HGF、TGF-β、VEGF、IL-10的水平。
1.2.5 miR-142-5p和HGF靶向關(guān)系的驗(yàn)證 合成含有熒光素酶基因的HGF野生型質(zhì)粒(HGF-Wt)和突變型質(zhì)粒(HGF-Mut)。用dual-luciferase reporter assay system (Promega公司)實(shí)施熒光素酶報(bào)告基因檢測試驗(yàn)。將HGF-Wt或HGF-Mut與miR-142-5p模擬物(miR-142-5p mimic)或陰性對(duì)照物(NC mimic)共轉(zhuǎn)染M2-TAM。轉(zhuǎn)染48 h后測定熒光素酶活性。所有試驗(yàn)一式3份,重復(fù)3次。
1.2.6 細(xì)胞轉(zhuǎn)染 將M2-TAM以1×105個(gè)/孔密度接種于12孔板,孵育24 h,待細(xì)胞生長穩(wěn)定后進(jìn)行轉(zhuǎn)染。將M2-TAM隨機(jī)分組,采用miR-142-5p模擬物(miR-142-5p mimic)和抑制劑(miR-142-5p inhibitor)構(gòu)建M2-TAM-miR-142-5p過表達(dá)和低表達(dá)細(xì)胞模型及相應(yīng)對(duì)照組,采用si-HGF和si-NC轉(zhuǎn)染M2-TAM以構(gòu)建M2-TAM-HGF低表達(dá)細(xì)胞模型。
1.2.7 M2-TAM對(duì)小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖影響的檢測 取各組細(xì)胞2×103個(gè),接種于96孔板中。貼壁培養(yǎng)24 h后向每孔加入10 μL CCK-8溶液。將培養(yǎng)板在培養(yǎng)箱內(nèi)孵育4 h,用酶標(biāo)儀測定光密度[D(450 nm)]值。分別測定細(xì)胞在轉(zhuǎn)染后0、12、24、48和72 h細(xì)胞增殖能力的變化。
2.1 CD206、CD163在各組細(xì)胞中的表達(dá)RT-PCR和FACS檢測結(jié)果顯示,M2-TAM特異性分子標(biāo)志物CD206和CD163在M2-M中的表達(dá)量明顯高于M,在M2-TAM中的表達(dá)量明顯高于TAM(P<0.001)。(表2、圖1和圖2)
表2 各組細(xì)胞CD206和CD163表達(dá)量的比較
注:A.RT-PCR檢測M、M2-M、TAM和M2-TAM中CD206 mRNA的表達(dá);B.RT-PCR檢測M、M2-M、TAM和M2-TAM中CD163 mRNA的表達(dá)。***P<0.001。
圖2 FACS分析各組細(xì)胞中CD206和CD163的表達(dá)
2.2 miR-142-5p、HGF在各組細(xì)胞中的表達(dá)RT-PCR和ELISA檢測結(jié)果顯示,與M相比,M2-M中miR-142-5p的表達(dá)水平明顯降低(P<0.001);與TAM相比,M2-TAM中miR-142-5p的表達(dá)水平也明顯降低 (P<0.001)。與之相反,HGF的表達(dá)水平在M2-M中顯著高于M(P<0.001),在M2-TAM中也顯著高于TAM (P<0.001)。(圖3)
注:A.RT-PCR檢測M和M2-M中miR-142-5p的表達(dá);B.RT-PCR檢測TAM和M2-TAM中miR-142-5p的表達(dá);C.RT-PCR檢測M和M2-M中HGF mRNA的表達(dá);D.RT-PCR檢測TAM和M2-TAM中HGF mRNA的表達(dá);E.ELISA檢測M和M2-M中HGF蛋白的表達(dá);F.ELISA檢測TAM和M2-TAM中HGF蛋白的表達(dá)。***P<0.001。
2.3 miR-142-5p和HGF的靶向關(guān)系為進(jìn)一步探究HGF和miR-142-5p之間的調(diào)控機(jī)制,采用TargetScan進(jìn)行分析。結(jié)果顯示,HGF的mRNA中存在與miR-142-5p相互作用的結(jié)合位點(diǎn)。為了驗(yàn)證miR-142-5p能否與HGF結(jié)合,分別將HGF-Wt、HGF-Mut共轉(zhuǎn)染到M2-TAM中,同時(shí)進(jìn)一步實(shí)施了熒光素酶報(bào)告基因檢測試驗(yàn)。結(jié)果顯示,與HGF-Mut相比,miR-142-5p模擬物能顯著降低HGF-Wt報(bào)告基因質(zhì)粒的熒光素酶活性(P<0.001)。這表明miR-142-5p能與HGF的3'UTR特異性結(jié)合。(圖4)
注:A.TargetScan分析miR-142-5p與HGF之間的結(jié)合位點(diǎn);B.熒光素酶報(bào)告基因檢測試驗(yàn)檢測miR-142-5p與HGF的結(jié)合關(guān)系。***P<0.001。
2.4 miR-142-5p對(duì)HGF、TGF-β、VEGF、IL-10表達(dá)的影響為進(jìn)一步探究miR-142-5p與HGF之間的作用關(guān)系,采用miR-142-5p mimic和miR-142-5p inhibitor構(gòu)建M2-TAM-miR-142-5p過表達(dá)和低表達(dá)細(xì)胞模型,同時(shí)進(jìn)一步采用RT-PCR和ELISA檢測各組中HGF、TGF-β、VEGF、IL-10的表達(dá)水平。結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-142-5p 后,HGF、TGF-β、VEGF、IL-10的表達(dá)水平均下降(P<0.001),而低表達(dá)miR-142-5p后,結(jié)果相反(P<0.001)。(圖5)
注:A.RT-PCR檢測過表達(dá)和低表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM中miR-142-5p的表達(dá);B.RT-PCR檢測過表達(dá)和低表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM中HGF mRNA的表達(dá);C.ELISA檢測過表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM中HGF、TGF-β、VEGF、IL-10的表達(dá);D.ELISA檢測低表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM中HGF、TGF-β、VEGF、IL-10的表達(dá)。***P<0.001。
2.5 miR-142-5p在M2-TAM調(diào)節(jié)肺癌細(xì)胞增殖中的作用鑒于miR-142-5p對(duì)HGF的抑制作用,為進(jìn)一步探究miR-142-5p對(duì)M2-TAM的作用機(jī)制,采用Transwell系統(tǒng)構(gòu)建M2-TAM-肺癌細(xì)胞共培養(yǎng)模型,通過CCK-8進(jìn)一步檢測肺癌細(xì)胞增殖能力的變化。結(jié)果顯示,過表達(dá)miR-142-5p后,小鼠肺癌Lewis細(xì)胞的增殖能力明顯下降(P<0.01);而低表達(dá)miR-142-5p后,小鼠肺癌Lewis細(xì)胞的增殖能力明顯上升(P<0.01)。(圖6)
注:A.CCK-8檢測過表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM對(duì)小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖能力的作用;B.CCK-8檢測低表達(dá)miR-142-5p后M2-TAM對(duì)小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖能力的作用。**P<0.01。
2.6 HGF在M2-TAM調(diào)節(jié)肺癌細(xì)胞增殖中的作用為了研究由M2-TAM釋放的HGF對(duì)非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖的調(diào)控作用,采用HGF拮抗劑構(gòu)建HGF低表達(dá)細(xì)胞模型,并通過ELISA驗(yàn)證轉(zhuǎn)染成功(P<0.001)。進(jìn)一步采用CCK-8檢測HGF對(duì)小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖能力的影響。結(jié)果顯示,HGF低表達(dá)后,小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖能力下降(P<0.01)。(圖7)
注:A.ELISA檢測HGF拮抗劑作用后M2-TAM中HGF的表達(dá);B.CCK-8檢測HGF低表達(dá)后M2-TAM對(duì)小鼠肺癌Lewis細(xì)胞增殖能力的作用。**P<0.01。
M是維持機(jī)體內(nèi)穩(wěn)態(tài)和抵御外來病原體的重要固有免疫細(xì)胞群。然而,在腫瘤微環(huán)境中,TAM通常促進(jìn)腫瘤細(xì)胞增殖、免疫抑制和血管生成,從而支持腫瘤的生長和轉(zhuǎn)移。通常,腫瘤中TAM的豐富與疾病預(yù)后不良有關(guān)[8]。已有多項(xiàng)研究證實(shí),在膠質(zhì)瘤、卵巢癌、肝內(nèi)膽管上皮癌、肺腺癌、胰腺癌和黑色素瘤中,TAM表現(xiàn)出M2活化的表型特征,M2-TAM與腫瘤患者生存時(shí)間呈負(fù)相關(guān)[9]。本研究通過體外試驗(yàn)發(fā)現(xiàn),miR-142-5p在M2-ATM中低表達(dá),miR-142-5p可通過靶向負(fù)調(diào)控HGF抑制非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞的增殖。
越來越多的研究發(fā)現(xiàn),miRNA在非小細(xì)胞肺癌中異常表達(dá),并通過與靶基因相互作用促進(jìn)或抑制腫瘤的發(fā)展。如miR-484在非小細(xì)胞肺癌中高表達(dá),可促進(jìn)癌細(xì)胞增殖和遷移[10];miR-661在非小細(xì)胞肺癌中高表達(dá),可通過直接靶向RUNX3在非小細(xì)胞肺癌中作為致癌基因發(fā)揮作用[11];miR-124則通過下調(diào)SOX8抑制非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞的增殖[12]。研究發(fā)現(xiàn),miR-142-5p在非小細(xì)胞肺癌中表達(dá)下調(diào),且miR-142-5p可以靶向PIK3CA并通過抑制PI3K/AKt通路來抑制腫瘤的生長[13]。本研究探討了miR-142-5p在不同表型M和TAM中的表達(dá),發(fā)現(xiàn)在M2-M和M2-TAM中,miR-142-5p的表達(dá)均顯著下調(diào)。
HGF是一種多功能細(xì)胞因子,可促進(jìn)細(xì)胞增殖、遷移和細(xì)胞外基質(zhì)入侵。HGF的多種生物學(xué)功能是通過與其受體c-MET的結(jié)合來介導(dǎo)的[14]。c-MET屬于絡(luò)氨酸激酶受體(receptor tyrosine kinascs,RTK)超家族成員,為原癌基因Met編碼的一類具有自主磷酸化活性的跨膜受體[15]。已有研究證明,HGF在非小細(xì)胞肺癌中高表達(dá),且HGF/c-MET信號(hào)通路可以影響非小細(xì)胞肺癌的發(fā)展[16]。與miR-142-5p相反,HGF在M2-TAM中高表達(dá),且在干擾HGF的表達(dá)后,M2-TAM對(duì)非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖能力的促進(jìn)作用顯著減弱,進(jìn)一步證實(shí)HGF在TAM與肺癌細(xì)胞增殖調(diào)控中發(fā)揮關(guān)鍵作用。另一方面,關(guān)于miRNA與HGF/c-MET信號(hào)通路之間的分子機(jī)制及其對(duì)肺癌發(fā)展的影響,有研究證明,miR-198可以抑制非小細(xì)胞肺癌中的HGF/c-MET信號(hào)通路來克服放療耐藥性,誘導(dǎo)細(xì)胞凋亡[17];miR-34a通過靶向MET可以部分克服HGF介導(dǎo)的表皮生長因子受體(epidermal growth factor receptor,EGFR)突變肺癌細(xì)胞對(duì)吉非替尼的耐藥[15];miR-182通過靶向MET基因抑制肺癌細(xì)胞從上皮向間質(zhì)的轉(zhuǎn)化和轉(zhuǎn)移[18]。本研究通過TargetScan預(yù)測和熒光素酶報(bào)告基因檢測試驗(yàn)也發(fā)現(xiàn)miR-142-5p與HGF存在堿基結(jié)合位點(diǎn)。過表達(dá)miR-142-5p抑制了HGF和其他M2型細(xì)胞因子TGF-β、VEGF、IL-10在M2-TAM中的表達(dá),同時(shí)負(fù)調(diào)節(jié)了M2-TAM對(duì)非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖能力的促進(jìn)作用;而低表達(dá)miR-142-5p所產(chǎn)生的作用恰好相反。此外,下調(diào)HGF的表達(dá)也負(fù)調(diào)節(jié)了M2-TAM對(duì)非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖能力的促進(jìn)作用。由此可見,在M2-TAM中,miR-142-5p可能通過靶向下調(diào)HGF的表達(dá)影響HGF作用下的HGF/c-MET信號(hào)通路,從而抑制非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞的增殖。
本研究初步探究了miR-142-5p靶向抑制HGF的表達(dá)對(duì)非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖的影響,為TAM以M2型為主的非小細(xì)胞肺癌細(xì)胞增殖的分子機(jī)制提供了一種新思路。然而,本研究尚存在不足之處,如miR-142-5p的上游機(jī)制、體外試驗(yàn)的局限性等,都尚待進(jìn)一步的探究和完善。