郭 斌,王志耕,2,*,孔 鵬,梅 林,2,薛秀恒,2
(1.安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)茶與食品科技學(xué)院,安徽合肥 230036;2.安徽省乳制品工程技術(shù)研究中心,安徽合肥 230000)
牛初乳乳清IgG的低溫乙醇和三聚磷酸鈉預(yù)提取技術(shù)研究
郭 斌1,王志耕1,2,*,孔 鵬1,梅 林1,2,薛秀恒1,2
(1.安徽農(nóng)業(yè)大學(xué)茶與食品科技學(xué)院,安徽合肥 230036;2.安徽省乳制品工程技術(shù)研究中心,安徽合肥 230000)
探討了初乳乳清IgG的低溫乙醇法和三聚磷酸鈉法兩種預(yù)提取方法。通過(guò)正交實(shí)驗(yàn)確定了低溫乙醇法最佳工藝參數(shù)為:乙醇濃度30%、pH6.7、離子強(qiáng)度0.06mol/kg,IgG純度和回收率分別為39.28%、79.32%;三聚磷酸鈉法最佳工藝參數(shù)為:三聚磷酸鈉添加量0.5%、pH 4.0、溫度45℃,IgG純度和回收率分別為33.74%、82.31%。兩種方法結(jié)合超濾法作為安全有效的預(yù)提取法均可應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)食品級(jí)IgG。
牛初乳,免疫球蛋白,低溫乙醇,三聚磷酸鈉
免疫球蛋白(Ig)是牛初乳中最引人注目的免疫因子,Ig總含量為50mg/mL,其中約80%~86%為免疫球蛋白G(IgG)。從功能性食品角度考慮,天然牛初乳IgG具有較廣譜的抑菌效果,特別是對(duì)導(dǎo)致胃腸道疾病的病原微生物具有良好的抑制和殺滅效果。具有活性的牛初乳IgG到達(dá)腸道后可特異性地結(jié)合、清除腸道中的致病菌,從而起到預(yù)防治療疾病的作用[1]。從牛乳中分離的IgG已成為嬰幼兒配方奶粉及其它保健品中的重要添加成分,牛IgG的含量直接決定了產(chǎn)品質(zhì)量及價(jià)格[2]。現(xiàn)代社會(huì)建立的龐大乳品工業(yè)體系已經(jīng)能夠保證牛初乳作為一種功能性食品及其制造基料的來(lái)源。超濾法是目前公認(rèn)最有前途的提取初乳IgG的工業(yè)化方法之一[3],但牛初乳是一種成分復(fù)雜的高蛋白基料,直接超濾難免會(huì)造成嚴(yán)重的膜污染,增加超濾膜的清洗成本,降低超濾膜的壽命[4]。因此,對(duì)牛初乳進(jìn)行預(yù)處理是十分必要的。目前,低溫乙醇分離法已經(jīng)廣泛應(yīng)用于人血白蛋白、人血免疫球蛋白的工業(yè)化[5],生產(chǎn)血漿IgG的低溫乙醇法可為初乳乳清中IgG的工業(yè)化提供借鑒。三聚磷酸鈉作為一種食品添加劑,通常被添加在肉類食品中用于增加產(chǎn)品的保水性,亦可以作為絮凝劑使用[6]。二者作為食品級(jí)IgG工業(yè)化制備的沉淀劑有安全無(wú)毒、操作簡(jiǎn)便等優(yōu)勢(shì)。本實(shí)驗(yàn)擬研究低溫乙醇和三聚磷酸鈉在初乳乳清IgG預(yù)提取中的應(yīng)用。
1.1 材料與儀器
牛初乳 采集自六安華園乳業(yè)有限公司飼養(yǎng)的無(wú)乳腺炎、分娩后3d內(nèi)的健康乳牛;牛IgG標(biāo)準(zhǔn)品、羊抗牛IgG免疫血清(效價(jià)1∶32) 索來(lái)寶生物試劑公司;凝乳酶 科漢森公司;其他試劑 均為分析純。
Expert 18K-R型冷凍離心機(jī) 長(zhǎng)沙新奧實(shí)驗(yàn)儀器有限公司;TU-1901雙光束紫外可見光分光光度計(jì) 北京普析通用儀器有限公司;pH-3B精密pH計(jì)上海精密科學(xué)儀器有限公司;HJ-3型控溫磁力攪拌器 江蘇金壇市金城國(guó)勝實(shí)驗(yàn)儀器廠;HH-S型恒溫水浴鍋 江蘇金壇國(guó)勝實(shí)驗(yàn)儀器廠。
1.2 實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1 初乳乳清的制備 將牛初乳經(jīng)4℃、4000r/min下離心20min脫脂后,加入0.06‰的凝乳酶,置于35℃的恒溫培養(yǎng)箱中30min,待其凝固結(jié)塊后打碎凝塊,在4℃、4000r/min下離心20min去除酪蛋白,即得到初乳乳清。
1.2.2 乙醇處理法 以乙醇作為提取沉淀劑時(shí),影響目標(biāo)蛋白純度和回收率的主要因素有乙醇濃度、pH、離子強(qiáng)度、溫度、蛋白濃度等[7],本實(shí)驗(yàn)選取乙醇濃度(8%、20%、25%、30%、40%,V/V)、pH(4.6、5.8、6.7、7.4、8.1)、離子強(qiáng)度(0.03、0.06、0.09、0.12、0.15mol/kg)三個(gè)因素設(shè)計(jì)單因素實(shí)驗(yàn)。以0.5mol/L的冰醋酸溶液和0.1mol/L的氫氧化鈉溶液調(diào)整初乳乳清至所需的pH,取50mL乳清加入相應(yīng)體積-20℃的無(wú)水乙醇,再加入NaCl調(diào)整離子強(qiáng)度,置于4℃的冰箱中靜置2h后,4℃、4000r/min下離心20min,取沉淀用無(wú)菌PBS溶液溶解定容至50mL。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)的結(jié)果設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn)如表1,每組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)三組重復(fù)。
表1 低溫乙醇分離初乳乳清IgG實(shí)驗(yàn)因素水平表
1.2.3 三聚磷酸鈉處理法 選取三聚磷酸鈉添加量(0.05%、0.1%、0.2%、0.3%、0.4%、0.5%、1%、1.5%,W/V)、pH(3.5、4.0、4.6、5.8、6.7、7.4、8.1)、溫度(4、25、35、45、55℃)三個(gè)因素設(shè)計(jì)單因素實(shí)驗(yàn)。以0.5mol/L的冰醋酸溶液和0.1mol/L的氫氧化鈉溶液調(diào)整初乳乳清至所需的pH,取50mL乳清添加不同比例的三聚磷酸鈉,分別置于不同溫度下2h后,4℃、4000r/min下離心20min,去除沉淀,取上清液[8]。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果設(shè)計(jì)正交實(shí)驗(yàn)如表2,每組實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)三組重復(fù)。
表2 三聚磷酸鈉分離初乳乳清IgG實(shí)驗(yàn)因素水平表
1.2.4 總蛋白含量測(cè)定 采用南京建成生物工程研究所提供的蛋白定量(雙縮脲法)測(cè)試盒測(cè)定。
1.2.5 IgG含量測(cè)定 采用免疫透射比濁法[9]測(cè)定。
1.2.5.1 抗體稀釋液的配制 稱取Tris 6.21g、NaCl 4.50g、PEG 6000 25.00g、BSA 0.50g、NaN30.50g,用適量蒸餾水溶解,以1mol/L HCl溶液調(diào)整pH至7.4,定容至500mL。
1.2.5.2 IgG標(biāo)準(zhǔn)曲線的制作 將牛IgG標(biāo)準(zhǔn)品配制成0.100、0.150、0.250、0.400、0.650、0.900、1.150、1.400、1.650、1.950mg/mL的溶液,用抗體稀釋液將羊抗牛IgG免疫血清稀釋16倍,取210μL稀釋后的抗體液與12μL標(biāo)準(zhǔn)IgG溶液混勻,37℃孵育40min,以0濃度的樣品管作為空白,在340nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度。制作標(biāo)準(zhǔn)曲線如圖1。
圖1 免疫透射比濁法IgG濃度標(biāo)準(zhǔn)曲線
1.2.5.3 樣品IgG含量的測(cè)定 取210μL稀釋后的抗體液與12μL待測(cè)樣品混勻,37℃孵育40min,以0濃度的樣品管作為空白,在340nm波長(zhǎng)處測(cè)定吸光度,由標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計(jì)算出樣品IgG的濃度。
1.2.6 純度和回收率的計(jì)算
1.2.7 統(tǒng)計(jì)分析 應(yīng)用SAS 9.1中的duncan方差分析進(jìn)行數(shù)據(jù)分析。
2.1 乙醇處理法
2.1.1 乙醇濃度對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響添加不同濃度乙醇的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖2,計(jì)算IgG純度和回收率如圖3。
圖2 不同乙醇濃度對(duì)IgG濃度和總蛋白濃度的影響
圖3 不同乙醇濃度對(duì)IgG純度和回收率的影響
由圖2可以看出,IgG濃度隨著乙醇濃度的增加呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢(shì),在乙醇濃度為25%時(shí)達(dá)到最大,之后隨著乙醇的濃度不斷增大,IgG的活性被破壞而濃度減??;而總蛋白濃度一直呈增加趨勢(shì),主要由于乙醇降低了可溶蛋白質(zhì)的介電常數(shù)[10],可溶性蛋白質(zhì)不斷沉淀下來(lái)。由圖3可知,IgG的純度和回收率均在乙醇濃度為25%時(shí)達(dá)到最大,分別為36.14%和65.70%。因此,乙醇濃度應(yīng)選擇為25%。
2.1.2 pH對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響 不同pH的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖4,計(jì)算IgG純度和回收率如圖5。
圖4 不同pH對(duì)IgG濃度和總蛋白濃度的影響
圖5 不同pH對(duì)IgG純度和回收率的影響
IgG在pH3.5~7.0范圍內(nèi)相對(duì)較為穩(wěn)定[1]。由圖4可以看出,IgG濃度隨著pH的增大呈平穩(wěn)的增加趨勢(shì),在pH8.1時(shí)達(dá)到最大,而總蛋白濃度隨著pH的增大逐漸降低,在pH為7.4時(shí)達(dá)到最小,此時(shí)可溶性蛋白的沉淀量最小,說(shuō)明初乳乳清中等電點(diǎn)處于pH7.4的蛋白質(zhì)含量較少。如圖5所示,在pH為7.4時(shí),IgG的純度也達(dá)到最大值38.52%,回收率的變化比較平穩(wěn),綜合考慮純度和回收率,確定pH為7.4。
圖6 不同離子強(qiáng)度對(duì)IgG濃度和總蛋白濃度的影響
圖7 不同離子強(qiáng)度對(duì)IgG純度和回收率的影響
2.1.3 離子強(qiáng)度對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響 不同離子強(qiáng)度的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖6,計(jì)算IgG純度和回收率如圖7。
由圖6可以看出,IgG濃度隨著離子強(qiáng)度的增加逐漸增加,在離子強(qiáng)度為0.09時(shí)達(dá)到最大,之后逐漸降低;總蛋白濃度一直呈下降趨勢(shì),但總體變化情況較為平穩(wěn)。由圖7可以看出,離子強(qiáng)度為0.12mol/kg時(shí)IgG純度達(dá)到最大值34.71%,回收率為74.27%;離子強(qiáng)度為0.09mol/kg時(shí),IgG回收率達(dá)到最大值76.22%,純度為34.53%。綜合考慮IgG純度和回收率,選擇離子強(qiáng)度為0.09mol/kg。
2.1.4 正交實(shí)驗(yàn) 低溫乙醇分離初乳乳清IgG正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果見表3。
表3 低溫乙醇分離初乳乳清IgG實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果分析
表4 低溫乙醇分離初乳乳清IgG方差分析表(純度)
表5 乙醇分離初乳乳清IgG方差分析表(回收率)
由表4對(duì)IgG純度正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的方差分析表明,乙醇濃度、pH、溫度對(duì)IgG提取純度的影響均達(dá)到極顯著水平(p<0.01),各因素的影響程度為乙醇濃度>pH>離子強(qiáng)度。實(shí)驗(yàn)的最佳條件為A1B3C2,以此條件進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)測(cè)得IgG純度為39.66%,回收率為63.41%。
由表5對(duì)IgG回收率正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的方差分析表明,pH、離子強(qiáng)度對(duì)IgG提取純度的影響均達(dá)到極顯著水平(p<0.01),乙醇濃度的影響達(dá)到顯著水平(p<0.05),各因素的影響程度為pH>離子強(qiáng)度>乙醇濃度。實(shí)驗(yàn)的最佳條件為A3B1C1,此條件下IgG純度為39.28%,回收率為79.32%。
以IgG純度和IgG回收率兩個(gè)指標(biāo)為參考對(duì)象得到的兩組最佳實(shí)驗(yàn)條件中,后者比前者在回收率提高了15.91%的情況下,純度只降低了0.38%,因此,選擇后者作為最佳工藝參數(shù)更加合適。
2.2 三聚磷酸鈉處理法
2.2.1 三聚磷酸鈉添加量對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響 添加不同三聚磷酸鈉的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖8,計(jì)算IgG純度和回收率如圖9。
圖9 不同三聚磷酸鈉添加量對(duì)IgG純度和回收率的影響
由圖8可以看出,IgG濃度隨著三聚磷酸鈉添加量的增加呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(shì),在三聚磷酸鈉添加量為0.1%時(shí)達(dá)到最大;總蛋白濃度呈現(xiàn)先減小后增大的趨勢(shì),在三聚磷酸鈉添加量為0.4%時(shí)達(dá)到最小,三聚磷酸鈉與乳清中某些蛋白質(zhì)結(jié)合使得可溶性蛋白質(zhì)含量降低[6]。由圖9可以看出,在三聚磷酸鈉添加量為0.4%時(shí),IgG純度為33.59%,亦為最大值。綜合回收率的變化情況,三聚磷酸鈉的添加量可確定為0.4%。
2.2.2 pH對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響 不同pH的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖10,計(jì)算IgG純度和回收率如圖11。
圖10 不同pH對(duì)IgG濃度和總蛋白濃度的影響
由圖10可以看出,IgG濃度在pH為4.0時(shí)最大,之后隨著pH的增大不斷降低,由于IgG隨著pH的增大達(dá)到了等電點(diǎn)逐漸沉淀下來(lái),上清液中的IgG含量降低;總蛋白濃度在pH為4.6時(shí)最大。由圖11可以看出,IgG純度在pH為4.0時(shí)最大,為31.48%,而IgG回收率此時(shí)也達(dá)到最大值,為69.61%;因此,選擇pH為4.0。
圖11 不同pH對(duì)IgG純度和回收率的影響
2.2.3 溫度對(duì)初乳乳清IgG純度和回收率的影響 不同溫度的各組樣品測(cè)定IgG濃度和總蛋白濃度結(jié)果如圖12,計(jì)算IgG純度和回收率如圖13。
圖12 不同溫度對(duì)IgG濃度和總蛋白濃度的影響
圖13 不同溫度對(duì)IgG純度和回收率的影響
由圖12可以看出,IgG濃度隨著溫度的升高呈現(xiàn)先增加后減小的趨勢(shì),總蛋白濃度的變化情況亦然,兩者均在溫度為35℃時(shí)達(dá)到最大,超過(guò)35℃后活性IgG含量逐漸降低。由圖13可以看出,IgG回收率在4~35℃內(nèi)逐漸升高,在35~65℃內(nèi)逐漸降低,在35℃時(shí)達(dá)到最大;IgG純度變化趨勢(shì)較為平穩(wěn),在45℃時(shí)達(dá)到最大,之后逐漸降低。綜合純度和回收率應(yīng)選擇35℃為提取溫度。
2.2.4 正交實(shí)驗(yàn) 三聚磷酸鈉分離初乳乳清IgG正交實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)和結(jié)果見表6。
由表7對(duì)IgG純度正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的方差分析表明,pH對(duì)IgG提取純度的影響達(dá)到極顯著水平(p<0.01),三聚磷酸鈉添加量的影響達(dá)到顯著水平(p<0.05),溫度的影響不顯著。其最佳實(shí)驗(yàn)條件為A3B2C3,以此條件進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)測(cè)得IgG純度為33.74%,回收率為82.31%。
由表8對(duì)IgG回收率正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果的方差分析表明,三聚磷酸鈉添加量、pH和溫度三個(gè)因素對(duì)IgG回收率的影響均達(dá)到極顯著水平(p<0.01),各因素的影響程度為pH>三聚磷酸鈉添加量>溫度。其最佳實(shí)驗(yàn)條件為A3B3C3,以此條件進(jìn)行驗(yàn)證實(shí)驗(yàn)測(cè)得IgG純度為30.72%,回收率為86.50%。
表6 三聚磷酸鈉分離初乳乳清IgG實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果分析
表7 三聚磷酸鈉分離初乳乳清IgG方差分析表(純度)
表8 三聚磷酸鈉分離初乳乳清IgG方差分析表(回收率)
以IgG純度和回收率兩個(gè)指標(biāo)為參考對(duì)象得到的兩組最佳實(shí)驗(yàn)條件中,后者比前者的回收率雖然提高了4.19%,但純度卻降低了3.02%。在生產(chǎn)中,在回收率差異較小的情況下,IgG純度作為直接衡量產(chǎn)品質(zhì)量的指標(biāo)[11]應(yīng)給予優(yōu)先考慮,因此,應(yīng)選擇前者作為實(shí)驗(yàn)的最佳工藝參數(shù)。
3.1 低溫乙醇提取初乳乳清IgG的最佳工藝參數(shù)為:乙醇濃度為30%,pH為6.7,離子強(qiáng)度為0.06mol/kg,此時(shí)IgG純度為39.28%,回收率為79.32%。
3.2 三聚磷酸鈉提取初乳乳清IgG的最佳工藝參數(shù)為:三聚磷酸鈉添加量0.5%,pH為4.0,溫度為45℃,此條件下IgG純度為33.74%,回收率為82.31%。
3.3 兩種方法提取牛初乳IgG操作簡(jiǎn)便、安全可靠、成本低廉。在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中結(jié)合超濾法進(jìn)一步提取濃縮IgG的純度可提高至56.51%,可應(yīng)用于工業(yè)化生產(chǎn)食品級(jí)IgG。
[1]曹勁松.初乳功能性食品 [M].北京:中國(guó)輕工業(yè)出版社,2000:1-5,226-227.
[2]Leyton W Gapper,David E J Copestake.Analysis of bovine immunoglobulin G in milk,colostrum and dietary supplements:a review[J].Anal Bioanal Chem,2007:93-109.
[3]郭本恒,程玉倩,駱承庠.乳鐵蛋白 [J].中國(guó)乳品工業(yè),1995,23(3):117-120.
[4]陳少洲,陳芳.膜分離技術(shù)與食品加工[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2005:32-33.
[5]浦奕奕.低溫乙醇法在人血白蛋白工業(yè)化生產(chǎn)中的應(yīng)用[J].考試周刊,2008,19(4):236-237.
[6]羅磊,羅登林,張紹華.多聚磷酸鹽在豬血清IgG分離純化中的應(yīng)用[J].食品科學(xué),2008,29(5):104-107.
[7]中國(guó)輸血協(xié)會(huì),血液制品工作委員會(huì).血液制品及單采血漿站管理[R].2008:22.
[8]Lee Y Z,Sim J S,Ai-Mashikhi S,et al.Separation of immunoglobulins from bovine blood by polyphosphate precipitation and chromatography[J].J Agric Food Chem,1988,36:922-928.
[9]蔣衛(wèi),陳來(lái)同,胡曉倩.紫外分光光度法測(cè)定動(dòng)物血清IgG含量方法的研究[J].中國(guó)生化藥物雜志,2008,29(2):119-120.
[10]趙凱,章以浩.醫(yī)學(xué)生物制品學(xué)[M].北京:人民衛(wèi)生出版社,2007:1171-1281.
[11]Lidia Elfstranda,Helena Lindmark Mansson,et al.Immunoglobulins,growth factors and growth hormone in bovine colostrum and the effects of processing[J].International Dairy Journal,2002,12:879-887.
Study on pre-extraction technology of whey IgG from bovine colostrum with low-temperature ethanol and sodium tripolyphosphate methods
GUO Bin1,WANG Zhi-geng1,2,*,KONG Peng1,MEI Lin1,2,XUE Xiu-heng1,2
(1.College of Tea&Food Science and Technology,Anhui Agricultural University,Hefei 230036,China;2.Dairy Engineering Research Center of Anhui Province,Hefei 230000,China)
Two methods of pre-extraction for whey IgG from bovine colostrum with low-temperature alcohol and sodium tripolyphosphate were discussed in this test.The optimal technological parameters of low-temperature ethanol method were obtained through orthogonal tests:ethanol concentration of 30%,pH 6.7,and ionic strength of 0.06mol/kg,the purity and recovery of IgG were 39.28%and 79.32%,respectively;the optimal technological parameters of Sodium tripolyphosphate method were:Sodium tripolyphosphate addition of 0.5%,pH 4.0,temperature of 45℃,the purity and recovery of IgG were 33.74%and 82.31%,respectively.The two kinds of methods,as a safe and effective pre-extraction,combined with ultrafiltration can be applied to industrial production of food-grade IgG.
bovine colostrum; IgG; low-temperature ethanol; sodium tripolyphosphate
TS252.1
B
1002-0306(2011)10-0344-05
2010-10-12 * 通訊聯(lián)系人
郭斌(1985-),男,碩士研究生,研究方向:營(yíng)養(yǎng)與食品衛(wèi)生學(xué)。