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      拓撲替康誘導(dǎo)肺癌細胞HTB-56凋亡早期線粒體膜電位的變化

      2013-01-14 06:23:56劉思思韓佩妍王武龍2鄒吳海歌王若雨高文斌
      中華肺部疾病雜志(電子版) 2013年1期
      關(guān)鍵詞:瓊脂糖膜電位線粒體

      高 豐 劉思思 韓佩妍 王武龍,2鄒 瑞 王 剛 曹 陽 吳海歌王若雨 高文斌

      2116622 遼寧大連,包頭醫(yī)學(xué)院第二附屬醫(yī)院放療科

      3116622 遼寧大連,大連大學(xué)附屬中山醫(yī)院腫瘤科4116622 遼寧大連,大連大學(xué)生命科學(xué)與技術(shù)學(xué)院

      高 豐,劉思思,韓佩妍,等.拓撲替康誘導(dǎo)肺癌細胞HTB-56凋亡早期線粒體膜電位的變化[J/CD].中華肺部疾病雜志:電子版,2013,6(1):51-53.

      目前肺癌已經(jīng)成為發(fā)病率、病死率最高的惡性腫瘤之一,近幾十年肺癌的治療尚未能獲得較大的進展,非小細胞肺癌的5年生存率仍然低于15%,大部分患者多在確診后1年內(nèi)死亡[1-3]。拓撲替康(topotecan,TPT)是半合成喜樹堿合成物,主要作用于拓撲異構(gòu)酶Ⅰ(topoisomeraseⅠ,Topo-Ⅰ),并與Topo-Ⅰ相結(jié)合,形成酶-DNA-TPT結(jié)合物,阻止腫瘤細胞DNA修復(fù),進而導(dǎo)致腫瘤細胞雙鏈斷裂。TPT抑制肺癌細胞生長,誘導(dǎo)其凋亡可能涉及caspase-3、8、9及Fas-FasL系統(tǒng)的激活,但誘導(dǎo)其凋亡的機制尚存在爭議。我們在前期基礎(chǔ)研究上,初步明確了TPT對肺癌HTB-56細胞凋亡的影響[4-5],本研究擬進一步觀察TPT對肺癌HTB-56細胞線粒體的影響,并探討TPT對線粒體早期功能的影響及其與細胞凋亡的關(guān)系。

      材料與方法

      一、實驗材料

      人肺癌細胞HTB-56細胞由本教研室保存,TPT是貴州漢方制藥有限公司產(chǎn)品,JC-1為BioVision公司的產(chǎn)品,二甲基亞砜購于sigma公司DMEM購于Gibco公司。

      二、實驗方法

      1.細胞培養(yǎng):人肺癌細胞HTB-56培養(yǎng)于青霉素105IU/L、鏈霉素 100 mg/L,37℃,5%CO2,飽和濕度條件下,含有10%小牛血清的DMEM培養(yǎng)基中。實驗用的細胞均處于對數(shù)分裂期。

      2.確定實驗用的TPT的濃度:依照前期實驗結(jié)果確定 TPT 實驗用量為 6.4 μmol/L[4-5]。

      3.細胞線粒體膜電勢檢測:在TPT給藥后分別于 0 h、1 h、2 h、4 h、8 h 檢測細胞線粒體跨膜電位。參照J(rèn)C-1試劑盒步驟進行實驗。流式細胞儀分析,通過熒光顏色的轉(zhuǎn)變檢測線粒體膜電位的變化。檢測在流式細胞儀FACSCALIBUR上進行。JC-1的單體和聚合物熒光信號分別在FL-1和FL-2探測器上獲得。由于JC-1發(fā)射的雙波長,使用電子補償?shù)募m正綠色熒光(單體)和紅色熒光(聚合物)的重疊部分。圖分析采用CELL QUEST軟件進行,每組實驗至少進行3次,圖象顯示代表性的結(jié)果。

      4.瓊脂糖凝膠電泳:細胞3×105接種,過夜貼壁,調(diào)節(jié)藥物濃度,分別TPT作用12 h、24 h、48 h和72 h,收集細胞,離心,PBS洗 2次,加入 600 μl含10 mmol·L的 Tris-HC1,加入 10 mmol/L的 EDTA和2 g/L的Triton X-100的裂解液于4℃裂解10~15 min;將裂解液收集于1.5 ml的EP管中,與等體積酚混勻,抽提1次,12 000 r/min,4℃離心10 min取550 μl上清于另一EP管中,加入等體積的1︰1酚、氯仿混合液抽提1次,再次離心。取500 μl上清,加入300 mmol/L的乙酸鈉和等體積的異丙醇,沉淀過夜。離心,70%乙醇洗滌2~3次;干燥后加入 TE(Tris10 mmol/L;EDTA 1.0 mmol/L 和0.6 g/L的Rnase A)37℃溫育30 min;樣品放在20 g/L的瓊脂糖凝膠上電泳1 h,溴乙啶染色后在紫外燈下觀察拍照。

      結(jié) 果

      一、線粒體膜電位變化

      JC-1試劑盒測定結(jié)果表明,正常細胞的膜電位高,488 nm激發(fā)時發(fā)出很強的紅色熒光,而凋亡細胞線粒體的膜電位發(fā)生去極化,紅色熒光減弱,綠色熒光增強,綠/紅熒光的比值發(fā)生了變化。圖1顯示:加入TPT藥物作用4 h后可以引起細胞線粒體膜電位的下降,作用8 h后,細胞線粒體膜電位明顯下降。且該兩藥物組的綠/紅熒光比值與對照組比較,均有顯著差異(P<0.05)。8 h組的綠/紅熒光比值與其他各藥物配比組比較,有顯著性差異(P<0.05)。

      圖1 TPT作用于HTB-56細胞不同時間細胞線粒體膜電位(綠光與紅光比值)的影響

      二、瓊脂糖凝膠電泳

      經(jīng)TPT處理48 h、72 h的HTB-56細胞出現(xiàn)明顯的DNA-Ladder,對照組及12 h、24 h組未見明顯的亮帶影,見圖2。

      討 論

      TPT是半合成喜樹堿合成物,其作用靶點主要在Topo-Ⅰ,通過與Topo-Ⅰ結(jié)合,形成酶-DNA-TPT穩(wěn)定結(jié)合物,阻止DNA雙鏈解螺旋的發(fā)生,抑制修復(fù),進而導(dǎo)致雙鏈斷裂,產(chǎn)生抗腫瘤作用。TPT抗瘤譜廣,可用于結(jié)腸癌、卵巢癌、肺癌、進展期的宮頸癌[6-7]。

      腫瘤細胞惡性生長方式與其異常增殖、分化有關(guān),而且與細胞凋亡異常相關(guān)。細胞凋亡的途徑包括外部途徑,即通過細胞外死亡受體激活細胞內(nèi)的凋亡酶半胱氨酸特異性蛋白酶(caspase-8),和內(nèi)部途徑,即通過改變線粒體外膜通透性(mitochondrial outer membrane permeabilization,MOMP)使多種促細胞凋亡因子從線粒體內(nèi)外膜間隙(intermembrane space,IMS)釋放到胞質(zhì),從而激活Caspase-9,最后激活Caspase-3。這些活化的Caspase降解細胞內(nèi)的重要蛋白,引起細胞凋亡[8]。有研究認(rèn)為,即使Caspase-9受抑制,僅有MOMP改變也可能導(dǎo)致細胞死亡[9]。

      我們在前期試驗中已證實了TPT對肺癌細胞HTB-56有抑制作用,其機制是誘導(dǎo)凋亡,且與caspase-3、8 有關(guān)[4-5]。線粒體與細胞凋亡關(guān)系密切,線粒體跨膜電位破壞是細胞凋亡級聯(lián)反應(yīng)過程中最早發(fā)生的事件之一,其發(fā)生在染色質(zhì)濃縮、DNA斷裂等細胞核凋亡特征出現(xiàn)之前,線粒體跨膜電位崩潰,細胞凋亡不可逆轉(zhuǎn)。本實驗中應(yīng)用JC-1檢測早期膜電位的變化,在線粒體膜電位較高時,JC-1聚集在線粒體的基質(zhì)中,形成聚合物產(chǎn)生紅色熒光,線粒體膜電位較低時,JC-1不能聚集在線粒體的基質(zhì)中,此時JC-1為單體,產(chǎn)生綠色熒光。正常的細胞膜電位較高,而當(dāng)出現(xiàn)凋亡時,膜電位下降。本實驗中證實在4 h時該實驗方法檢測出線粒體膜電位的變化,經(jīng)過繼續(xù)培養(yǎng)至48 h,72 h通過瓊脂糖凝膠電泳出現(xiàn)明顯的凋亡。由此可見HTP-56細胞出現(xiàn)早期凋亡,且該凋亡與線粒體有關(guān)。線粒體是細胞維持生命活動的重要細胞器,在細胞存活及凋亡過程中發(fā)揮著重要的作用。

      凋亡是一個復(fù)雜的現(xiàn)象,不同的誘因可通過相同的信號傳導(dǎo)途徑誘發(fā)細胞凋亡,并且不同的信號傳導(dǎo)途徑也不是孤立發(fā)揮作用,而是緊密聯(lián)系和相互作用的,整個信號傳導(dǎo)系統(tǒng)呈現(xiàn)復(fù)雜的網(wǎng)狀調(diào)控結(jié)構(gòu)。隨著越來越多的研究,可以使得我們可以找到更多、更有效的治療腫瘤的切入點,并且有效拮抗凋亡抑制因子的作用,最大限度地選擇性地誘導(dǎo)腫瘤細胞凋亡,并有效地利用誘導(dǎo)凋亡來控制腫瘤。

      1 Horn L,Sandler AB.Emerging date with antiangiogenictherapies in early and advanced non-small cell lung cancer[J].Clin Lung Cancer,2009,10(1):S7-S16.

      2 Jemal A,Siegel R,Xu J,et al.Cancer statistics,2010[J].CA Cancer J Clin,2010,60(5):277-300.

      3 Schiller JH,Harrington D,Belani CP,et al.Comparison of four chemotherapy regimens for advanced non-small-cell lung cancer[J].N Engl J Med,2002,346(2):92-98.

      4 高文斌,鄭真真,高 豐,等.低劑量拓撲替康誘導(dǎo)肺癌腦轉(zhuǎn)移HTB-56/DDP細胞株凋亡機制研究[J].中華肺部疾病雜志:電子版,2012,5(5):440-444.

      5 高文斌,馬建增,鄭真真,等.拓撲異構(gòu)酶Ⅰ抑制劑對小鼠Lewis肺癌細胞殺傷和誘導(dǎo)凋亡作用的研究[J].中國實用醫(yī)刊,2011,38(12):54-55.

      6 Staker BL,Hjerrild K,F(xiàn)eese MD,et al.The mechanism of topoisomerase I poisoning by a camptothecin analog[J].Proc Natl Acad Sci USA,2002,99(24):15387-15392.

      7 Facompre M,Carrasco C,Colson P,et al.DNA binding and topoisomerase I poisoning activities of novel disaccharide indolocarbazoles[J].Mol Pharmacol,2002,62(5):1215-1227.

      8 Green DR,Reed JC.Mitochondria and apoptosis[J].Science,1998,281(5381):1309-1312.

      9 Glaser T,Weller M.Caspase-dependent chemotherapy induced death of glioma cells requires mitochondrial cytochrome C release[J].Biochem Biophys Res Commun,2001,281(2):322-327.

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