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      影響堿提酸沉法提取燕麥蛋白因素的分析

      2013-10-26 11:09:12劉建壘郝利平
      關(guān)鍵詞:等電點液料燕麥

      劉建壘,郝利平

      (山西農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科學(xué)與工程學(xué)院,山西 太谷03080)

      燕麥,又稱莜麥、玉麥、雀麥、鈴鐺麥,分為帶稃型燕麥(Avena sativa L.)和裸粒型燕麥(Avena nuda L.)兩大類,在我國以裸燕麥為主?,F(xiàn)代研究表明燕麥具有降血脂、降血糖、免疫增強、抗氧化、益生等多種保健功能[1~3]。燕麥中蛋白質(zhì)含量最高可達20%,在禾谷類作物中居首位[4]。燕麥蛋白功效比(PER)達2.25~2.38,氨基酸分數(shù)(AAS)高達68.2,生物價(BV)為74.5~79.6,均是植物蛋白中的佼佼者[5~7]。燕麥蛋白質(zhì)含人體8種必需氨基酸,其配比接近FAO/WHO推薦的模式,限制性氨基酸賴氨酸和色氨酸含量相對較高[8,9],賴氨酸含量為大米和小麥粉的2倍以上,有益于增進智力和骨骼發(fā)育,能彌補我國傳統(tǒng)膳食結(jié)構(gòu)所導(dǎo)致的“賴氨酸缺乏癥”缺陷[10],色氨酸具有改善睡眠,預(yù)防糙皮病、抑郁癥和調(diào)節(jié)情緒等功能,被稱為“第二必需氨基酸”[11]。

      本研究選用產(chǎn)量高、抗旱性好,適應(yīng)性強的燕麥新品種晉燕14號為研究對象,用Box-Behnken試驗設(shè)計對影響堿提酸沉法提取燕麥蛋白的參數(shù)進行優(yōu)化,分析各影響因素及其交互作用對蛋白提取率的影響,以期為燕麥全粉中蛋白質(zhì)的提取和利用提供理論依據(jù)和數(shù)據(jù)支撐。

      1 材料與方法

      1.1 材料與試劑

      燕麥:晉燕14號,由山西省農(nóng)業(yè)科學(xué)院高寒區(qū)作物研究所提供(脫脂燕麥全粉中蛋白質(zhì)含量為15.6%);其他試劑均為分析純。

      1.2 主要儀器設(shè)備

      KDN 型定氮儀(HYP8.14.20孔消化裝置、2C型蒸餾裝置),上海釬檢儀器有限公司;JY-15 A 750克多功能粉碎機,永康市江業(yè)制造有限公司;UV-2100型紫外可見分光光度計,尤尼柯(上海)儀器有限公司;p HS-25型數(shù)顯p H計,上海精密科學(xué)儀器有限公司;JDG-0.2真空凍干試驗機,蘭州科近真空凍干技術(shù)有限公司;SHY-2 A水浴恒溫振蕩器,江蘇金壇市金城國勝實驗儀器廠。

      1.3 試驗方法

      1.3.1 工藝流程

      燕麥→粉碎、脫脂→脫脂燕麥全粉→堿液浸提→等電點沉淀→水洗至中性→真空冷凍干燥→燕麥蛋白。

      1.3.2 方法

      分別對p H值、料液比、提取溫度、提取時間進行單因素試驗,以蛋白質(zhì)的提取率為指標,確定燕麥蛋白的提取條件,重復(fù)3次。在單因素試驗基礎(chǔ)上用Box-Behnken試驗設(shè)計對p H、料液比、提取溫度、提取時間,4個因素進行優(yōu)化,確定堿提酸沉法制備燕麥蛋白的最佳工藝條件。

      1.3.3 燕麥蛋白等電點的確定

      在得到的最佳提取條件下提取燕麥蛋白,取8等份蛋白提取上清液,分別用1 mol·L-1HCl緩慢調(diào)其 p H 至3.0、3.5、4.0、4.5、5.0、5.5、6.0、6.5,靜置6 h,4000 r·min-1離心15 min,測定沉淀前后上清液中蛋白質(zhì)含量,計算蛋白分離率。

      1.3.4 測定與計算方法

      固體中蛋白質(zhì)含量測定:凱氏定氮法,參照GB5009.5-2010。

      溶液中蛋白質(zhì)含量測定:Bradford法[12],其標準曲線為y=6.4343x-0.0079,R2=0.9978。

      2 結(jié)果與分析

      2.1 堿提酸沉法提取燕麥蛋白單因素試驗結(jié)果

      2.1.1 p H值對蛋白質(zhì)提取率的影響

      由圖1可見,隨p H的升高,燕麥蛋白的提取率呈上升趨勢。其中,p H在8~10內(nèi),隨p H的升高燕麥蛋白的提取率迅速上升,在p H 10~12內(nèi),燕麥蛋白的提取率上升緩慢。研究發(fā)現(xiàn),當(dāng)p H超過11時,蛋白提取液顏色加深,呈棕褐色,有異味,且溶液變得十分粘稠,不利于進一步的分離。因此,選擇p H 10為試驗條件下的最佳p H,此時蛋白提取率達59.35%。

      圖1 p H值對蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.1 Effect of p Hon extraction rate of oat granules

      2.1.2 液料比對蛋白質(zhì)提取率的影響

      由圖2可見,在液料比為8~16內(nèi),隨液料比的升高,燕麥蛋白的提取率迅速上升,液料比為16時,燕麥蛋白的提取率最高,達60.36%;當(dāng)液料比超過16時,蛋白的提取率變化不大。

      圖2 液料比值對蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.2 Effect of liquid-to-solid ratio on extraction rate of oat granules

      2.1.3 浸提溫度對蛋白質(zhì)提取率的影響

      由圖3可見,在溫度20~40℃內(nèi),隨溫度的升高,燕麥蛋白的提取率上升較快;在40~50℃時,燕麥蛋白的提取率上升最快;當(dāng)溫度為50℃時,燕麥蛋白的提取率達59.99%,為最大值;超過50℃后,燕麥蛋白的提取率迅速下降。

      圖3 浸提溫度值對蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.3 Effect of temperature on extraction rate of oat granules

      2.1.4 浸提時間對蛋白質(zhì)提取率的影響

      由圖4可見,在時間為30~90 min內(nèi),隨時間的延長,燕麥蛋白的提取率呈上升趨勢,在90 min時,燕麥蛋白的提取率最大,為63.31%;超過90 min后,燕麥蛋白的提取率變化不大。

      圖4 浸提時間值對蛋白質(zhì)提取率的影響Fig.4 Effect of time on extraction rate of oat granules

      2.1.5 Box-Behnken試驗設(shè)計優(yōu)化堿提酸沉法提取燕麥蛋白工藝

      2.1.5.1 Box-Behnken試驗因素的確定

      根據(jù)單因素試驗結(jié)果,采用Box-Benhnken試驗設(shè)計,對影響燕麥蛋白提取率的4個因素(p H、液料比、溫度和時間)進行全因素響應(yīng)面分析,因素水平表如表1所示。

      表1 響應(yīng)面試驗設(shè)計因素水平編碼表Table 1 Factor levels and their coding

      2.1.5.2 響應(yīng)面試驗及方差分析

      Box-Behnken試驗設(shè)計與結(jié)果如表2所示。為了更準確估計試驗誤差,對中心點p H 10、液料比16、浸提溫度50℃、浸提時間90 min重復(fù)5次,得中心點條件下的平均蛋白提取率達63.20%。進一步用 Design-Expert.V8.0.6 進 行 響 應(yīng) 面分析,得到回歸方程:提取率 Y=2.33 A-0.96B+2.16C+1.35D+4.74 A*B-1.68 A*C+0.88 A*D-1.25B*C-0.16B*D+0.68C*D-5.02 A2-9.99B2-5.54C2-4.66D2+63.20。

      表2 Box-Behnken試驗設(shè)計與結(jié)果Table 2 Result of Box-Behnken design

      續(xù)表2

      對模型進行矢擬性檢驗和方差分析,結(jié)果見表3。結(jié)果表明,此二次多項式模型的一次項和交互項極顯著,平方項在顯著范圍內(nèi),而立方項不顯著。該模型的失擬性不顯著,模型極顯著,說明該模型是合理可行的,能對各因素變化對燕麥蛋白提取率的影響有良好的預(yù)測作用。

      表3 模型的矢擬性檢驗Table 3 Lack of fit test

      進一步對二次多項式模型及各系數(shù)進行方差分析,結(jié)果見表4。由表4可見,p H、溫度對燕麥蛋白提取率的影響極顯著,時間對燕麥蛋白提取率的影響顯著;交互作用中p H和液料比的交互作用極顯著,其他因素間的交互作用均不顯著;4個因素的二次項對燕麥蛋白提取率的影響極顯著。

      2.1.5.3 響應(yīng)曲面分析

      響應(yīng)面圖能直觀地反映各因素對蛋白提取率的影響。從圖5可見,燕麥蛋白提取率隨p H和液料比的變化先增大后減小,且坡度較大,等高線密集,并出現(xiàn)極大值,表明兩者的交互作用顯著;其他因素間的響應(yīng)面平緩,交互作用不顯著,這與方差分析的結(jié)果一致。為進一步求得各因素的最優(yōu)條件,以提取率最大為目標,對各因素在試驗范圍內(nèi)進行最優(yōu)化處理,得到最佳提取工藝為:p H 10.11、液料比15.96、溫度50.87℃、時間93.56 min,此時提取率達63.76%。驗證試驗得該條件下燕麥蛋白的提取率達64.23%,純度達86.4%。

      表4 二次多項式模型的方差分析表Table 4 Analysis of variance for Response Surface Quadratic Model

      圖5 p H與液料比對蛋白提取率影響的響應(yīng)面及等高線圖Fig.5 Response surface plot and contour map for extraction rate of OPI under different p Hand liquid-solid ratio

      2.1.6 燕麥蛋白等電點的確定

      由圖6可見,堿提酸沉法提取的燕麥蛋白的等電點為4.2,分離率達94.65%。p H 在4.0~4.5內(nèi),燕麥蛋白的分離率均達93.4%以上,分離效果較好。

      圖6 燕麥蛋白等電點的確定Fig.6 Determination on pI of oat protein

      3 結(jié)論與討論

      堿提酸沉法制備燕麥蛋白的最佳工藝為:p H 10.11、液料比15.96、溫度50.87℃、時間93.56 min,此時,提取率達64.23%,純度達86.4%,得到的燕麥蛋白的等電點為4.2,分離率達到94.65%。

      堿提酸沉法制備燕麥蛋白的p H不能超過11,否則會導(dǎo)致蛋白提取液顏色加深,產(chǎn)生異味,且溶液變得十分粘稠,不利于進一步的分離;為提高燕麥蛋白的提取率,同時減少燕麥蛋白的變性,提取溫度控制在50℃左右為宜;當(dāng)液料比超過16,或浸提時間超過90 min后,增加液料比或延長浸提時間對蛋白提取率的影響不大。

      用此方法制備的燕麥蛋白粉顏色稍有褐變,可能是由于提取過程中蛋白質(zhì)與還原糖發(fā)生了美拉德反應(yīng),或燕麥中的酚類物質(zhì)氧化所致,其褐變機理及脫色方法還需進一步研究。

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