萬建新， 崔 炯， 高 娜， 楊 霞， 李鎮(zhèn)洲， 陳 俊， 鄒臻寰， 尤丹瑜

(福建醫(yī)科大學附屬第一醫(yī)院腎內科，福建福州350005)

血管內皮祖細胞(endothelial progenitor cells，EPCs)是成熟血管內皮細胞的前體細胞。我們前期的研究表明紅細胞生成素(erythropoietin，EPO)能促進5/6腎大部切除大鼠外周血EPCs的動員和增殖，改善外周血EPCs黏附能力和形成血管腔樣結構的能力，促進腎小球毛細血管內皮功能的修復、減輕腎臟的病理改變和改善腎功能［1-2］。但外周血EPCs如何被動員的確切機制尚不清楚。有研究表明EPO可顯著提高健康人群和腎衰竭患者EPCs的數量與功能，并可能與提高EPCs中Akt蛋白激酶的活性有關［3］。最近我們的研究表明EPO可激活5/6腎大部切除大鼠殘腎組織歸巢因子及其受體的表達，這可能也是EPCs參與損傷腎臟修復的重要機制之一［4］。本文觀察EPO干預慢性腎衰竭(chronic renal failure，CRF)大鼠后，外周血EPCs歸巢因子——基質細胞衍生因子1(stromal cell-derived factor 1，SDF-1)及其受體CXC趨化因子受體4(CXC chemokine receptor 4，CXCR4)的表達是否受到影響。

材料和方法

1 材料

1．1 動物 成年雄性6周齡SD大鼠(體重200～250 g)，購自吳氏動物中心(編號為2007000521321)。

1．2 主要試劑 M199培養(yǎng)基和胎牛血清(Gibco)，血管內皮生長因子(vascular epithelial growth factor，VEGF;PeproTech)，重組牛堿性成纖維細胞生長因子(珠海億勝生物制藥)，人纖維連接蛋白(Chemicon)，FITC標記的荊豆凝集素1(Ulex europaeus agglutinin 1，UEA1;Sigma)，DiI標記乙?；兔芏戎鞍?acetylated DiI-labeled low density lipoproteins，acLDL-DiI;Molecular Probe)，人重組EPO(益比奧，三生制藥)，PE標記的血管內皮生長因子受體2(vascular epithelial growth factor receptor 2，VEGFR2;R＆D)，PE標記的CD133單克隆抗體(BD)，PE標記的CD34單克隆抗體(Miltenyi Biotec)，FITC標記的抗大鼠Ⅱ抗(北京中山)，Trizol(Invitrogen)，PCR試劑盒(TaKaRa)，EPO抗體(Santa Cruz)，紅細胞生成素受體(erythropoietin receptor，EPOR)抗體(Santa Cruz)，SDF-1α抗體和CXCR4抗體(Abcam)。

2 方法

2．1 動物模型制備及分組 采用分階段5/6腎切除制備大鼠慢性腎衰竭模型:10%水合氯醛腹腔麻醉后，經側腹部切口，暴露左側腎臟，分離腎動脈及其分支，結扎其中的左上支和中支并剪斷，使左腎梗死約2/3，3 d后再將大鼠右腎摘除。21只SD大鼠隨機分為3組(每組7只):假手術組、CRF模型組和EPO治療組。假手術組僅分離腎動脈及其分支，不予結扎;EPO治療組于第2次手術后3周開始皮下注射30 U/kg EPO，每周3次，連用6周。所有大鼠均于造模后8周處死。

2．2 外周血EPCs分離、培養(yǎng)與鑒定 SD大鼠處死后心臟采血5 mL，采用Ficoll密度梯度離心法分離出單核細胞，并進行細胞培養(yǎng)。EPCs鑒定采用DiIAcLDL和FITC-UEA1雙熒光染色法。EPCs培養(yǎng)和鑒定的方法參見本課題組前期工作［1］。

2．3 實時熒光定量PCR 各組大鼠外周血EPCs總RNA的提取和cDNA的合成按試劑盒的說明書進行。所用的引物序列及擴增長度見表1(由TaKaRa公司協(xié)助設計并合成)。定量擴增用 ABI PRISM 7500 Fast熒光PCR儀，采用SYBR Green PCR方法進行。PCR反應條件為:95℃預變性30 s，95℃ 5 s，60℃ 30 s，72 ℃ 30 s，共30個循環(huán)。反應結束后確認PCR擴增曲線和融解曲線。以GAPDH為內參照，采用比較Ct法相對定量，結果以兩組間目的基因拷貝數比值(relative quantification，RQ)表示。每個cDNA模板標本重復檢測3次，結果取平均值，每次反應3個基因各設陰性空白對照1個。

2．4 Western blotting檢測 各組大鼠外周血EPCs用裂解緩沖液處理，按Bradford蛋白定量試劑盒說明書測定蛋白含量。并按經典方法配制10%SDSPAGE分離膠和5%濃縮膠進行蛋白電泳。將電泳的凝膠以相同大小的NC膜進行轉膜。將封閉好的NC膜分別放入用封閉液稀釋的Ⅰ抗中孵育，用增強化學發(fā)光使膠片顯影，掃描后用 White/Ultraviolet Transilluminator系統(tǒng)軟件分析，蛋白表達量用積分吸光度(integrated absorbance，IA)值來表示。以β-actin為內參照，進行半定量分析，比值表示其相對含量。

3 統(tǒng)計學處理

數據用均數±標準差(mean±SD)表示，經方差齊性檢驗和組內的方差分析。用 SPSS 15．0統(tǒng)計軟件包分析，以P＜0．05為差異有統(tǒng)計學意義。

表1 引物序列Table 1．Sequences of the primers

結 果

1 EPO對外周血EPCs歸巢因子及其受體表達影響

實時熒光定量PCR結果顯示，與CRF組比較，治療組外周血EPCs SDF-1和CXCR4 mRNA表達顯著增高(均P ＜0．05)，見圖1。Western blotting結果顯示，與模型組比較，治療組外周血EPCs SDF-1和CXCR4蛋白表達顯著增高(均P＜0．05)，見圖2。

2 EPO對外周血EPCs EPO及EPOR的影響

實時熒光定量PCR結果顯示，與CRF組比較，治療組外周血EPCs EPO及EPOR mRNA表達顯著增高(均 P ＜0．05)，見圖 3。Western blotting結果顯示，與模型組比較，治療組外周血 EPCs EPO及EPOR蛋白表達顯著增高(均P＜0．05)，見圖4。

Figure 1．Effects of EPOon mRNA expression of SDF-1 and CXCR4 in peripheral blood endothelial progenitor cells from rats．Mean ± SD．n=7．*P ＜ 0．05 vs sham group;#P ＜0．05 vs CRF group．圖1 SDF-1和CXCR4 mRNA在各組大鼠外周血EPCs中的表達

Figure 2．Effects of EPOon protein expression of SDF-1 and CXCR4 in peripheral blood endothelial progenitor cells from rats．Mean ± SD．n=7．*P ＜ 0．05 vs sham group;#P ＜0．05 vs CRF group．圖2 SDF-1和CXCR4蛋白在各組大鼠外周血EPCs中的表達

討 論

EPCs是成熟血管內皮細胞的前體細胞，起源于骨髓的原始細胞。骨髓中的EPCs增殖后進入血液循環(huán)，參與血管新生和器官修復。近年的研究發(fā)現，刺激骨髓動員EPCs，使循環(huán)EPCs數量增加，可能是促進慢性腎臟病修復的一種有效手段［5-6］。EPCs通過自身分化、增殖而形成的新生血管不受原有血管內皮細胞功能的影響，且受損的內皮層可由循環(huán)EPCs重生。這一現象為EPCs在腎缺血、缺氧導致進行性腎損害中的治療作用提供了新的理論依據。慢性腎衰竭患者體內EPCs數量、遷移和融合能力都有所下降［7-8］。外周血 EPCs數量主要決定于骨髓中EPCs的動員，在EPCs動員過程中，EPO是一個重要的細胞因子［9］。但EPCs的動員過程有哪些因素參與目前尚不清楚。

近年的研究表明靶組織中某些與歸巢相關的因子表達上調與EPCs的動員與歸巢有關［10］。SDF-1是CXC趨化因子家族成員，CXCR4是其特異性受體。有研究表明CXCR4在EPCs表面高度表達［5］。SDF-1通過與 CXCR4結合，促進 CD34+造血干/祖細胞逆SDF-1濃度梯度移行和增殖，抑制CD34+造血干/祖細胞凋亡，誘導新生血管形成［11］。SDF-1還能促進內皮細胞和EPCs的存活與增殖，誘導EPCs的定向遷移并參與新血管形成［12-14］。Yin等［15］發(fā)現在動脈損傷后，SDF-1可作為獨立因素動員和歸巢EPCs參與損傷血管的再內皮化。Kuliszewski等［16］發(fā)現在應用通過超聲破壞微泡技術聯合SDF-1基因質粒轉染治療肌肉缺血動物模型后，移植的EPCs能特異歸巢到SDF-1表達的損傷組織。國內近年的研究發(fā)現中藥當歸補血湯可能通過提高循環(huán)VEGF和SDF-1水平來促進兔動脈粥樣硬化模型外周血EPCs的活性［17］。

近年的研究發(fā)現EPOR廣泛表達于許多非造血組織細胞中［18］。EPO本身就是一種低氧誘導因子，在低氧和紅細胞生成素的協(xié)同作用下可誘導EPOR的表達［19］。Lin 等［20］研究證實在低氧條件下，EPO/EPOR可通過增強SDF-1表達，加強干/祖細胞的動員。

綜上所述，我們的研究初步表明EPO對慢性腎衰竭大鼠外周血EPCs的動員可能與其上調外周血內皮祖細胞SDF-1及其受體表達有關。

Figure 3．Effects of EPO on mRNA expression of EPO and EPOR in peripheral blood endothelial progenitor cells from rats．Mean ± SD．n=7．*P ＜ 0．05 vs sham group;#P ＜0．05 vs CRF group．圖3 EPO和EPOR mRNA在各組大鼠外周血EPCs中的表達

Figure 4．Effects of EPO on protein expression of EPO and EPOR in peripheral blood endothelial progenitor cells from rats．Mean ± SD．n=7．*P ＜ 0．05 vs sham group;#P ＜0．05 vs CRF group．圖4 EPO和EPOR蛋白在各組大鼠外周血EPCs中的表達