胡慧仙 徐晗
骨髓造血干細(xì)胞調(diào)控及其研究進(jìn)展
胡慧仙 徐晗
在多細(xì)胞生物的組織中,干細(xì)胞群對于組織結(jié)構(gòu)和功能的維持是十分重要的。目前,成體干細(xì)胞(SSC)已經(jīng)在多種具有自我更新功能的組織器官中得到鑒定,如腸上皮、表皮及造血系統(tǒng)等。定植在骨髓中的成熟造血干細(xì)胞(HSC)是SSC中的重要部分,可以持續(xù)不斷地產(chǎn)生各譜系的造血細(xì)胞并釋放入外周血[1]。HSC具有干細(xì)胞的兩大特性,即自我更新和多向分化。HSC的自我更新通過兩種不同的細(xì)胞分裂方式來完成,一種是對稱分裂,即兩個子代細(xì)胞均保持干細(xì)胞特性,理論上這種分裂方式有助于維持干細(xì)胞池中HSC數(shù)量的恒定,當(dāng)機(jī)體造血系統(tǒng)受到損害或移植術(shù)后這種分裂方式對于補(bǔ)充HSC的數(shù)量尤為重要;另一種方式是不對稱分裂,即其中一個子代細(xì)胞仍然維持干細(xì)胞特性,另一個子代細(xì)胞則多向分化成造血細(xì)胞成分。自我更新是維持HSC壁龕的關(guān)鍵性因素,也是發(fā)揮長期造血功能的先決條件。本文就HSC的調(diào)控及相關(guān)細(xì)胞因子、骨髓微環(huán)境和信號通路在調(diào)控中的作用作一綜述。
生物個體發(fā)育中,絕大多數(shù)SSC群都依賴著較保守的信號作用的調(diào)節(jié)。HSC的調(diào)控處于動態(tài)平衡,在多種不同外界條件刺激下,如正常生理情況下的歸巢,急性失血或者感染時,造血功能必須及時進(jìn)行精密調(diào)控以滿足需要。無論是生理情況還是病理情況下,內(nèi)在和外在的信號都毫無疑問地參與了HSC的調(diào)節(jié)過程[2-3]。目前已有多種HSC的關(guān)鍵調(diào)控因子被鑒定,包括細(xì)胞因子、生長因子、轉(zhuǎn)錄因子、細(xì)胞周期調(diào)控因子等。
在經(jīng)典的造血細(xì)胞因子中,起著正性調(diào)節(jié)作用的最重要的細(xì)胞因子是促血小板生成素(TPO)和血清干細(xì)胞因子(SCF)。在體外利用多種造血細(xì)胞因子如IL-3、IL-6、IL-11以及FMS樣的酪氨酸激酶3(Flt-3)配體、TPO、SCF擴(kuò)增HSC的方法已被眾多學(xué)者證實。大多數(shù)情況下,HSC擴(kuò)增失敗的主要原因是HSC的體外分化導(dǎo)致的造血重建能力喪失。有研究顯示[4],通過加入IL-11、Flt-3配體和SCF并體外培養(yǎng)10d左右可適當(dāng)擴(kuò)增小鼠HSC,但是同樣的方法用來培養(yǎng)胎肝來源的HSC卻未能成功,后續(xù)研究發(fā)現(xiàn)此結(jié)果可能與長期的HSC(LT-HSC)表面并不存在Flt-3受體有關(guān)[5-6]。另外,gp130蛋白作為IL-6和IL-11受體的組成部分,在HSC的自我更新中起著一定的作用[7]。近幾年通過純化小鼠HSC等研究發(fā)現(xiàn),SCF受體c-kit和TPO受體cmpl同時表達(dá)于HSC的表面[8-11],且TPO或c-mpl發(fā)生基因突變的小鼠會出現(xiàn)HSC的減少。也有報道稱TPO具有維持HSC生存活力和抑制HSC凋亡等作用[12]。因此,TPO的主要功能在于抑制HSC細(xì)胞凋亡,其作用機(jī)制可能與細(xì)胞因子信號通路抑制劑Lnk有關(guān)。研究顯示Lnk缺乏的小鼠可出現(xiàn)HSC數(shù)量的增加和造血重建功能的增強(qiáng),TPO和Lnk在調(diào)控HSC自我更新方面起著相反的作用,且Lnk在TPO信號調(diào)節(jié)中也起到了強(qiáng)有力的抑制作用[13-14]。
對骨髓中造血細(xì)胞的空間結(jié)構(gòu)研究后發(fā)現(xiàn),原始的造血細(xì)胞與骨內(nèi)膜非常貼近,而定向分化的細(xì)胞多位于股骨的縱向骨髓腔[15-17]。早在1978年,Schofield[18]就提出了壁龕的假說,認(rèn)為其所形成的生理性微環(huán)境可以支持干細(xì)胞的生長。通過HSC及其所處的微環(huán)境的相互作用來研究干細(xì)胞的發(fā)育、增殖以及分化等生理過程一直是HSC研究的熱點(diǎn)。由于哺乳動物干細(xì)胞壁龕解剖結(jié)構(gòu)上的復(fù)雜性,其內(nèi)部的組成成分在細(xì)胞水平和分子水平上尚未研究清楚。長期以來,造血微環(huán)境被認(rèn)為是由血竇內(nèi)皮細(xì)胞、成纖維細(xì)胞、脂肪細(xì)胞、巨噬細(xì)胞以及細(xì)胞外基質(zhì)等構(gòu)成的,成骨細(xì)胞僅僅起到一個支持保護(hù)造血微環(huán)境結(jié)構(gòu)的作用。近年來,越來越多的證據(jù)指出,定位于骨內(nèi)膜表面的間葉細(xì)胞來源的成骨細(xì)胞,是HSC壁龕中的重要組成部分[19-21],對HSC的發(fā)育、增殖、分化和成熟起著非常重要的調(diào)節(jié)作用。Calvi等[15]在轉(zhuǎn)基因小鼠模型中發(fā)現(xiàn)成骨細(xì)胞的增多會引起HSC數(shù)量的相應(yīng)增多。更重要的是,該研究提出成骨細(xì)胞在甲狀旁腺激素的刺激下引起Notch1激活劑Jagged1等表達(dá)的上升,最終導(dǎo)致Notch1信號通路的激活而引起HSC數(shù)量的增加。Visnijic等[22]采用轉(zhuǎn)基因小鼠模型研究成骨細(xì)胞和造血的關(guān)系,發(fā)現(xiàn)給予小鼠更昔洛韋去除所有成熟和未成熟的成骨細(xì)胞8d后,骨髓中B細(xì)胞和紅系祖細(xì)胞明顯減少,同時伴有HSC數(shù)量進(jìn)行性下降以及髓外造血的出現(xiàn),髓外造血最終使得小鼠免于造血衰竭死亡。而停止給予更昔洛韋后,轉(zhuǎn)基因小鼠出現(xiàn)骨吸收顯著增多,并在骨髓中重建了正常造血。該研究說明成骨細(xì)胞對于骨髓中HSC增殖和干細(xì)胞池的維系起著重要的調(diào)節(jié)作用,同時也印證了此種調(diào)控主要依賴于成熟的成骨細(xì)胞。Zhu等[23]對去卵巢大鼠造血功能的研究也顯示,與同期對照比較,去卵巢12周后大鼠成骨細(xì)胞和造血組織容量均明顯減少(P<0.01),兩者呈正相關(guān)(r= 0.506,P<0.01),認(rèn)為成骨細(xì)胞的減少可能是骨髓造血功能減低的關(guān)鍵。Arai等[24]的研究說明促血管生成素1(Ang1)/Tie2信號對骨髓壁龕中處于靜止?fàn)顟B(tài)的G0期HSC數(shù)量的維持是十分關(guān)鍵的,Ang1表達(dá)于成骨細(xì)胞表面,其受體Tie2是一種酪氨酸激酶受體,表達(dá)于內(nèi)皮細(xì)胞和HSC表面。Tie2+的HSC可能通過與N-鈣粘蛋白(N-cadherin)相關(guān)的機(jī)制而黏附于表達(dá)Ang1的成骨細(xì)胞。只有與成骨細(xì)胞密切接觸的造血干細(xì)胞才處于靜止?fàn)顟B(tài),才能維持干細(xì)胞的原始特性。Suzuki等[25]用綠色熒光蛋白基因插入標(biāo)記檢測HSC的定位,觀察到了活體內(nèi)HSC孤立地分散于骨髓內(nèi)膜表面,成骨細(xì)胞與之直接黏附,并受成骨細(xì)胞的調(diào)控。Taichman[26]的研究也有類似的發(fā)現(xiàn),當(dāng)供者的造血干/祖細(xì)胞進(jìn)入受者骨髓后,原始HSC亞群細(xì)胞選擇性地分布在骨內(nèi)膜鄰近成骨細(xì)胞區(qū),并受成骨細(xì)胞的調(diào)控,而定向祖細(xì)胞群則遠(yuǎn)離骨內(nèi)膜而靠近中央血管區(qū),并開始不斷地分裂、分化及成熟,這種不同細(xì)胞的定位分布,進(jìn)一步證明了成骨細(xì)胞對于HSC原始性狀維持的調(diào)節(jié)作用。
盡管成骨細(xì)胞是HSC壁龕的重要組成部分,但它們并不是發(fā)揮調(diào)控作用的唯一細(xì)胞。除了可溶性因子外,基質(zhì)成分及其他的組織細(xì)胞均發(fā)揮著重要的調(diào)節(jié)功能。例如骨橋蛋白,是由成骨細(xì)胞合成的一種基質(zhì)糖蛋白,對HSC發(fā)揮著負(fù)性調(diào)控作用[27-28]。此外,缺乏鈣敏感性受體的HSC無法定位于壁龕的骨內(nèi)膜表面[29],揭示了局部鈣濃度會影響到HSC與骨內(nèi)膜之間的物理性黏附作用。最近的研究還發(fā)現(xiàn),功能缺損的壁龕會引起其中HSC的混亂,也更進(jìn)一步強(qiáng)調(diào)了HSC壁龕中各種調(diào)控作用的重要性[30-31]。
3.1 成骨細(xì)胞通過Notch信號通路參與HSC調(diào)控 Notch信號通路是胚胎發(fā)育調(diào)控的保守通路,由5個跨膜配體和4個受體組成。Notch受體胞外區(qū)與相應(yīng)配體結(jié)合后,受體蛋白發(fā)生裂解,釋放出胞內(nèi)活性片段(NICD)進(jìn)入細(xì)胞核,進(jìn)而啟動下游靶基因的表達(dá)調(diào)控。Notch信號通路在腫瘤的發(fā)生、發(fā)展中有非常重要的地位,有研究表明Notch相關(guān)染色體異位在T細(xì)胞白血病的發(fā)生中起到了重要作用[32]。Radtke等[33]研究表明Notch在淋巴細(xì)胞增殖過程中具有關(guān)鍵性作用,激活的Notch信號可誘導(dǎo)向T淋巴細(xì)胞分化。同時也發(fā)現(xiàn)Notch信號對于HSC的生物學(xué)特性有一定程度的影響,Notch配體家族成員如Delta和Jagged均可促進(jìn)小鼠和人造血祖細(xì)胞的體外擴(kuò)增[34-35],而且Notch信號通路或者下游蛋白Hes1的激活可以促使LT-HSC自我更新能力的增強(qiáng),甚至延長原始造血祖細(xì)胞的生存周期[36]。進(jìn)一步研究發(fā)現(xiàn),Notch信號通路作用與Hes1在HSC中高水平表達(dá)有關(guān),而在更成熟的造血祖細(xì)胞表面呈低水平表達(dá),這種差異表達(dá)說明Notch信號的阻斷可加速HSC的分化,同時也說明Notch信號通路對HSC的“干細(xì)胞”狀態(tài)維持非常重要。為進(jìn)一步闡明Notch信號通路在HSC中的作用,Duncan等[37]通過阻斷HSC中的Notch通路以檢測干細(xì)胞重建造血系統(tǒng)的能力,結(jié)果亦顯示活化的Notch信號能抑制HSC分化,維持其多項潛能性。另外,Calvi等[15]的研究進(jìn)一步明確了成骨細(xì)胞作為HSC壁龕重要組成成分在造血中的作用,同時也表明了活化的甲狀旁腺激素受體能使成骨細(xì)胞高表達(dá)Jagged1蛋白,從而促進(jìn)了原始造血細(xì)胞的自我更新。因此,成骨細(xì)胞不僅作為HSC壁龕的一部分,而且它們可以通過激活Notch/Jagged信號通路來調(diào)控HSC的自我更新[36]。研究和利用Notch信號通路對于今后臨床上用于HSC體內(nèi)擴(kuò)增具有十分重要的意義。
3.2 Wnt信號通路促進(jìn)HSC的自我更新 Wnt信號通路不僅是發(fā)育學(xué),同時也是腫瘤生物學(xué)的研究熱點(diǎn)。最早對Wnt通路的了解來自對致癌病毒和果蠅發(fā)育機(jī)制的研究。Wnt信號通路的啟動激活是由其配體與卷曲蛋白(Fz)家族成員的七螺旋跨膜區(qū)及低密度脂蛋白(LRP)家族中的LRP5/6的共受體相結(jié)合而完成的[8,29]。當(dāng)Fz與LRP共同結(jié)合Wnt信號時則啟動了經(jīng)典Wnt信號通路。經(jīng)典的Wnt信號途徑是通過β-鏈蛋白(β-catenin)和T細(xì)胞因子(TCF)發(fā)揮作用的,而一些Wnt蛋白如Wnt4和Wnt5a,不需LRP5/6參與,只與Fz結(jié)合即可激活其他信號通路,即非經(jīng)典Wnt信號途徑,其主要包括planar細(xì)胞極性(PCP)通路、Wnt-Ca2+途徑以及最新發(fā)現(xiàn)的蛋白激酶A通路[8,17,38]。Austin等[39]早在1997年即提出Wnt信號對小鼠HSC具有一定的調(diào)控作用,當(dāng)時研究胎兒時期造血功能時發(fā)現(xiàn)多種Wnt家族蛋白的表達(dá),并且認(rèn)為Wnt5a可在體外刺激和誘導(dǎo)早期造血干/祖細(xì)胞的增殖和自我更新。Willert等[40]研究發(fā)現(xiàn)純化Wnt3a同樣可以增加小鼠中晚期成熟HSC自我更新的能力。Van等[41]通過免疫表型和克隆形成分析后認(rèn)為Wnt家族蛋白對HSC的正性調(diào)節(jié)作用并不是小鼠種系所獨(dú)有的,人的Lin-CD34+細(xì)胞群在Wnt蛋白的作用下也可以在體外增殖。不僅僅是體外實驗的證據(jù)支持Wnt蛋白可促使HSC增殖,Wnt蛋白家族成員也存在于人胚胎時期和成年時期的骨髓基質(zhì)中,且研究證實Wnt5a可表達(dá)于原始的Lin-CD34+細(xì)胞上。由此可知,Wnt蛋白可能是通過旁分泌或自分泌的相關(guān)機(jī)制來影響HSC的。
到目前為止,Wnt蛋白對HSC作用的細(xì)胞內(nèi)機(jī)制仍不清楚,Reya等[42]的研究認(rèn)為活化的Wnt信號通路能上調(diào)β-catenin、Notch1和同源盒基因(Hox)家族成員HoxB4基因的表達(dá),從而促進(jìn)HSC數(shù)量的倍增,用可溶性的Wnt蛋白拮抗劑能使HSC的增殖能力降低,進(jìn)一步的說明Wnt蛋白與HSC存在一定的相互關(guān)系。然而Kirstetter等[43]研究則認(rèn)為當(dāng)β-catenin在體內(nèi)表達(dá)受到基因座ROSA26的調(diào)控時,并不能引起HSC自我更新能力的增強(qiáng),有關(guān)Wnt通路對HSC的調(diào)節(jié)作用機(jī)制有待進(jìn)一步研究。
3.3 Wnt和Notch信號協(xié)同促進(jìn)HSC的自我更新 Wnt和Notch都是影響造血干細(xì)胞功能的重要通路,眾多實驗揭示造血微環(huán)境中的大多數(shù)細(xì)胞其Notch和Wnt信號都是活化的,且多數(shù)細(xì)胞的生理活動往往同時利用這兩條信號通路。Duncan等[37]研究顯示用Wnt3a刺激HSC后,HSC中Notch信號的活性上調(diào),同時Notch信號通路的下游靶基因如Hesl和Dtxl也同時上調(diào),提示W(wǎng)nt信號通路對HSC中Notch信號通路靶基因差異表達(dá)也起了重要作用。Artavanis等[44]認(rèn)為Notch和Wnt信號通路是相互聯(lián)系的,它們之間存在交叉,如Wnt通路下游活化蛋白Dsh,其氨基端能與Notch受體羧基端結(jié)合,從而影響活化的NICD的形成和向核內(nèi)轉(zhuǎn)移。Duncan等[37]研究報道當(dāng)骨小梁中一部分細(xì)胞受到激活信號刺激時,可引起Wnt和Notch信號通路的同時激活,協(xié)同維持HSC池的特性。雖然Wnt和Notch信號通路均可以促進(jìn)HSC的自我更新,但Duncan等認(rèn)為兩者是通過不同的機(jī)制來實現(xiàn)的。當(dāng)Wnt信號導(dǎo)致小鼠骨髓干細(xì)胞(LSK細(xì)胞)出現(xiàn)增殖時,Notch信號對此功能的抑制作用并沒有出現(xiàn);相反,Notch信號發(fā)揮功能以維持未分化的HSC的特性時,Wnt蛋白也不影響其作用。這些結(jié)果提示W(wǎng)nt和Notch信號通路可以共同促進(jìn)HSC的自我更新。此外,有觀察發(fā)現(xiàn)Wnt3a蛋白可調(diào)控Notch靶基因的表達(dá),且Wnt和Notch的靶基因均通過抑制Wnt信號通路中的GSK-3而影響HSC的生物學(xué)作用,這些發(fā)現(xiàn)提示兩條信號通路可能同時處于一個復(fù)雜的信號調(diào)節(jié)網(wǎng)絡(luò)中而共同調(diào)控HSC池[45]。
HSC作為具有廣闊臨床應(yīng)用前景的種子細(xì)胞,在各個領(lǐng)域已得到廣泛重視。其生物學(xué)特性如自我更新和多向分化,受到所處在的造血微環(huán)境中各種基質(zhì)細(xì)胞及其分泌的細(xì)胞因子的精密調(diào)控,多條細(xì)胞內(nèi)及細(xì)胞外的信號通路也參與了HSC結(jié)構(gòu)和功能的維持。目前對于HSC的多種調(diào)控作用的內(nèi)在機(jī)制尚不十分清楚,其失控很可能是導(dǎo)致多種疾病,如各種類型白血病、骨髓增殖性疾病等的關(guān)鍵性因素。故對其內(nèi)在機(jī)制的深入分析可以為將來研究多種血液系統(tǒng)惡性腫瘤的發(fā)生、發(fā)展過程提供更多的理論依據(jù)。
[1]Ogawa M.Differentiation and proliferation of hematopoietic stem cells[J].Blood,1993,81(11):2844-2853.
[2]Bonig H,Papayannopoulou T.Hematopoietic stem cell mobilization:updated conceptual renditions[J].Leukemia,2013,27(1):24-31.
[3]Wilson A,Trumpp A.Bone-marrow haematopoietic-stem-cell niches[J].Nat Rev Immunol,2006,6(2):93-106.
[4]Miller C L,Eaves C J.Expansion in vitro of adult murine hematopoietic stem cells with transplantable lympho-myeloid reconstituting ability[J].Proc Natl Acad Sci U S A,1997,94(25):13648-13653.
[5]Adolfsson J,Borge O J,Bryder D,et al.Upregulation of Flt3 expression within the bone marrow Lin(-)Sca1(+)c-kit(+)stem cell compartment is accompanied by loss of self-renewal capacity[J].Immunity,2001,15(4):659-669.
[6]Christensen J L,Weissman I L.Flk-2 is a marker in hematopoietic stem cell differentiation:a simple method to isolate long-term stem cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2001,98(25):14541-14546.
[7]Audet J,Miller C L,Rose-John S,et al.Distinct role of gp130 activation in promoting self-renewal divisions by mitogenically stimulated murine hematopoietic stem cells[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2001,98(4):1757-1762.
[8]Adams G B,Alley I R,Chung U I,et al.Haematopoietic stem cellsdepend on Galpha(s)-mediated signalling to engraft bone marrow[J].Nature,2009,459(7243):103-107.
[9]Martinez-Agosto J A,Mikkola H K,Hartenstein V,et al.The hematopoietic stem cell and its niche:a comparative view[J].Genes Dev,2007,21(23):3044-3060.
[10]Solar G P,Kerr W G,Zeigler F C,et al.Role of c-mpl in early hematopoiesis[J].Blood,1998,92(1):4-10.
[11]Yang L,Bryder D,Adolfsson J,et al.Identification of Lin(-)Sca1(+) kit(+)CD34(+)Flt3-short-term hematopoietic stem cells capable of rapidly reconstituting and rescuing myeloablated transplant recipients[J].Blood,2005,105(7):2717-2723.
[12]Pestina T I,Cleveland J L,Yang C,et al.Mpl ligand prevents lethal myelosuppression by inhibiting p53-dependent apoptosis [J].Blood,2001,98(7):2084-2090.
[13]Seita J,Ema H,Ooehara J,et al.Lnk negatively regulates self-renewal of hematopoietic stem cells by modifying thrombopoietin-mediated signal transduction[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2007,104(7):2349-2354.
[14]Tong W,Zhang J,Lodish H F.Lnk inhibits erythropoiesis and E-po-dependent JAK2 activation and downstream signaling pathways[J].Blood,2005,105(12):4604-4612.
[15]Calvi L M,Adams G B,Weibrecht K W,et al.Osteoblastic cells regulate the haematopoietic stem cell niche[J].Nature,2003,425 (6960):841-846.
[16]Kiel M J,Morrison S J.Uncertainty in the niches that maintain haematopoietic stem cells[J].Nat Rev Immunol,2008,8(4):290-301.
[17]Mercier F E,Ragu C,Scadden D T.The bone marrow at the crossroads of blood and immunity[J].Nat Rev Immunol,2012,12 (1):49-60.
[18]Schofield R.The relationship between the spleen colony-forming cell and the haemopoietic stem cell[J].Blood Cells,1978,4(1-2): 7-25.
[19]Zhang J,Niu C,Ye L,et al.Identification of the haematopoietic stem cell niche and control of the niche size[J].Nature,2003,425 (6960):836-841.
[20]Suda T,Arai F,Hirao A.Hematopoietic stem cells and their niche [J].Trends Immunol,2005,26(8):426-433.
[21]Larsson J,Scadden D.Nervous activity in a stem cell niche[J].Cell,2006,124(2):253-255.
[22]Visnjic D,Kalajzic Z,Rowe D W,et al.Hematopoiesis is severely altered in mice with an induced osteoblast deficiency[J].Blood, 2004,103(9):3258-3264.
[23]Zhu L,Zhao X Y,Lu X G.Ovariectomy-associated changes in bone mineral density and bone marrow haematopoiesis in rats [J].Int J Exp Pathol,2009,90(5):512-519.
[24]Arai F,Hirao A,Ohmura M,et al.Tie2/angiopoietin-1 signaling regulates hematopoietic stem cell quiescence in the bone marrow niche[J].Cell,2004,118(2):149-161.
[25]Suzuki N,Ohneda O,Minegishi N,et al.Combinatorial Gata2 and Sca1 expression defines hematopoietic stem cells in the bone marrow niche[J].Proc Natl Acad Sci U S A,2006,103(7): 2202-2207.
[26]Taichman R S.Blood and bone:two tissues whose fates are intertwined to create the hematopoietic stem-cell niche[J].Blood, 2005,105(7):2631-2639.
[27]Nilsson S K,Johnston H M,Whitty G A,et al.Osteopontin,a key component of the hematopoietic stem cell niche and regulator of primitive hematopoietic progenitor cells[J].Blood,2005,106(4): 1232-1239.
[28]Stier S,Ko Y,Forkert R,et al.Osteopontin is a hematopoietic stem cell niche component that negatively regulates stem cell pool size[J].J Exp Med,2005,201(11):1781-1791.
[29]Adams G B,Chabner K T,Alley I R,et al.Stem cell engraftment at the endosteal niche is specified by the calcium-sensing receptor[J].Nature,2006,439(7076):599-603.
[30]Li S,Zhai Q,Zou D,et al.A pivotal role of bone remodeling in granulocyte colony stimulating factor induced hematopoietic stem/progenitor cells mobilization[J].J Cell Physiol,2013,228(5): 1002-1009.
[31]Mohty M,Ho A D.In and out of the niche:perspectives in mobilization of hematopoietic stem cells[J].Exp Hematol,2011,39(7): 723-729.
[32]Ellisen L W,Bird J,West D C,et al.TAN-1,the human homolog of the Drosophila notch gene,is broken by chromosomal translocations in T lymphoblastic neoplasms[J].Cell,1991,66(4):649-661.
[33]Radtke F,Wilson A,Mancini S J,et al.Notch regulation of lymphocyte development and function[J].Nat Immunol,2004,5(3):247-253.
[34]Karanu F N,Murdoch B,Miyabayashi T,et al.Human homologues of Delta-1 and Delta-4 function as mitogenic regulators of primitive human hematopoietic cells[J].Blood,2001,97(7):1960-1967.
[35]Varnum-Finney B,Brashem-Stein C,Bernstein I D.Combined effects of Notch signaling and cytokines induce a multiple log increase in precursors with lymphoid and myeloid reconstituting ability[J].Blood,2003,101(5):1784-1789.
[36]Varnum-Finney B,Xu L,Brashem-Stein C,et al.Pluripotent,cytokine-dependent,hematopoietic stem cells are immortalized by constitutive Notch1 signaling[J].Nat Med,2000,6(11):1278-1281.
[37]Duncan A W,Rattis F M,DiMascio L N,et al.Integration of Notch and Wnt signaling in hematopoietic stem cell maintenance[J].Nat Immunol,2005,6(3):314-322.
[38]Cain C J,Manilay J O.Hematopoietic stem cell fate decisions are regulated by Wnt antagonists:comparisons and current controversies[J].Exp Hematol,2013,41(1):3-16.
[39]Austin T W,Solar G P,Ziegler F C,et al.A role for the Wnt gene family in hematopoiesis:expansion of multilineage progenitor cells[J].Blood,1997,89(10):3624-3635.
[40]Willert K,Brown J D,Danenberg E,et al.Wnt proteins arelipid-modified and can act as stem cell growth factors[J].Nature, 2003,423(6938):448-452.
[41]Van Den Berg D J,Sharma A K,Bruno E,et al.Role of members of the Wnt gene family in human hematopoiesis[J].Blood,1998,92 (9):3189-3202.
[42]Reya T,Duncan A W,Ailles L,et al.A role for Wnt signalling in self-renewal of haematopoietic stem cells[J].Nature,2003,423 (6938):409-414.
[43]Kirstetter P,Anderson K,Porse B T,et al.Activation of the canonical Wnt pathway leads to loss of hematopoietic stem cell repopulation and multilineage differentiation block[J].Nat Immunol, 2006,7(10):1048-1056.
[44]Artavanis-Tsakonas S,Rand M D,Lake R J.Notch signaling:cell fate control and signal integration in development[J].Science, 1999,284(5415):770-776.
[45]Trowbridge J J,Xenocostas A,Moon R T,et al.Glycogen synthase kinase-3 is an in vivo regulator of hematopoietic stem cell repopulation[J].Nat Med,2006,12(1):89-98.
2013-10-11)
(本文編輯:胥昀)
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