賀慧艷,左 健,王倩倩,2,尹 娜,3,劉益民,王 玉
近年來(lái),顱神經(jīng)電刺激治療癲癇和抑郁障礙等中樞神經(jīng)系統(tǒng)疾病受到了很多學(xué)者的重視,其中三叉神經(jīng)電刺激(trigeminal nerve stimulation,TNS)對(duì)癲癇的治療作用已在癲癇患者和動(dòng)物模型中得到證實(shí)[1,2]。本研究小組前期通過(guò)TNS 預(yù)處理大鼠,發(fā)現(xiàn)其癲癇發(fā)作程度明顯低于對(duì)照組[3],進(jìn)一步驗(yàn)證了TNS 具有顯著的抗癲癇作用,這為臨床癲癇的治療提供了一種新技術(shù),但到目前為止尚無(wú)關(guān)于TNS抗癲癇作用機(jī)制的研究報(bào)道。興奮性和抑制性神經(jīng)傳遞的失衡是癲癇發(fā)作的核心機(jī)制[4],興奮性氨基酸谷氨酸經(jīng)特異性囊泡型轉(zhuǎn)運(yùn)體轉(zhuǎn)運(yùn)到突觸囊泡內(nèi),再經(jīng)胞吐作用釋放至突觸間隙,進(jìn)而引起突觸后神經(jīng)元發(fā)生相應(yīng)的改變[5]。本實(shí)驗(yàn)中,我們用囊泡型谷氨酸轉(zhuǎn)運(yùn)體-1(vesicular glutamate transporter 1,VGLUT1)特異性標(biāo)記谷氨酸能神經(jīng)元突觸囊泡[6],通過(guò)腹腔注射匹羅卡品(Pilo)誘導(dǎo)慢性癲癇大鼠模型,并對(duì)其進(jìn)行慢性周期性經(jīng)皮三叉神經(jīng)電刺激,觀察經(jīng)皮三叉神經(jīng)慢性電刺激對(duì)慢性癲癇大鼠海馬和皮層內(nèi)VGLUT1 表達(dá)的影響,探討TNS 干預(yù)慢性癲癇形成的可能機(jī)制。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物及分組 選用成年健康雄性SD大鼠150 只,普通級(jí),體重200±20 g,由安徽醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供,置于自由飲水進(jìn)食、晝夜均衡、溫度20 ℃~25 ℃、濕度50%的環(huán)境中,喂養(yǎng)1 w以適應(yīng)環(huán)境。
1.2 癲癇模型的建立 隨機(jī)選用100 只大鼠腹腔注射(ip)東莨菪堿(1 mg/kg)以拮抗匹羅卡品的外周膽堿能反應(yīng),30 min 后以匹羅卡品(360 mg/kg,美國(guó)Sigma 公司)腹腔注射誘導(dǎo)癲癇持續(xù)狀態(tài)(SE)。大鼠行為學(xué)觀察根據(jù)我們修改后的Racine5級(jí)評(píng)價(jià)標(biāo)準(zhǔn)[7]。Ⅰ級(jí):出現(xiàn)面部抽搐,鼻毛抽動(dòng),前爪抓耳及咀嚼動(dòng)作;Ⅱ級(jí):出現(xiàn)點(diǎn)頭運(yùn)動(dòng),一側(cè)前肢陣攣;Ⅲ級(jí):出現(xiàn)肢體陣攣和輕微的身體抽搐;Ⅳ級(jí):肢體陣攣,甩尾,牙關(guān)緊閉,全身抽搐;Ⅴ級(jí):全身陣攣,失去平衡,跌倒并全身僵直。本研究以發(fā)作達(dá)到Ⅲ級(jí)或Ⅲ級(jí)以上癇性發(fā)作且持續(xù)時(shí)間超過(guò)30 min為誘導(dǎo)癲癇持續(xù)狀態(tài)成功的標(biāo)準(zhǔn),對(duì)于沒(méi)有達(dá)到該標(biāo)準(zhǔn)的大鼠,每30 min 追加匹羅卡品(30 mg/kg)直至達(dá)到標(biāo)準(zhǔn)。SE 大鼠自出現(xiàn)Ⅲ級(jí)或Ⅲ級(jí)以上癇性發(fā)作1 h 后,給予地西泮(10mg/kg,ip)以終止發(fā)作,隨后將SE 大鼠隨機(jī)分為模型組(Pilo 組,n=50)和經(jīng)皮三叉神經(jīng)慢性電刺激組(TNS 組,n=50),正常對(duì)照組(n=50)給予同劑量的生理鹽水腹腔注射;各組又隨機(jī)分為24 h、72 h、7 d、14 d、28 d 5個(gè)亞組,每亞組10 只大鼠。
1.3 經(jīng)皮三叉神經(jīng)電刺激 參照我們以前的方法[3]對(duì)TNS 組大鼠進(jìn)行經(jīng)皮三叉神經(jīng)電刺激(北京博洋生物器械有限公司KD-2A 型經(jīng)皮電刺激儀),簡(jiǎn)述如下:將經(jīng)10%水合氯醛(0.3 ml/kg,ip)麻醉后的大鼠俯臥固定,把兩個(gè)膜式電極對(duì)稱放置于三叉神經(jīng)分支-眶上神經(jīng)分布區(qū)域,即眼眶上方約1 cm、中內(nèi)1/3 交界處,外接經(jīng)皮電刺激儀;設(shè)置刺激參數(shù):頻率140 HZ、電流10 mA、脈寬0.5 ms、正相脈沖,每次刺激30 s 后間歇5 min,每天連續(xù)刺激2 h,持續(xù)刺激一個(gè)月。正常對(duì)照組和Pilo 組大鼠的各刺激參數(shù)均設(shè)置為0,其余操作同TNS 組;各組操作均在固定時(shí)間段進(jìn)行。
1.4 取材 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物分別在刺激結(jié)束后24 h、72 h、7 d、14 d、28 d 行斷頭取腦,每組每個(gè)時(shí)點(diǎn)大鼠數(shù)量為10 只,其中5 只用于免疫熒光雙標(biāo),另5 只用于Western blot 半定量分析。用于免疫熒光雙標(biāo)的大鼠取材:10%水合氯醛(0.35 ml/kg,ip)麻醉后固定大鼠,開(kāi)胸經(jīng)左心室行升主動(dòng)脈插管,先以0.9%生理鹽水100 ml 快速灌注以沖凈腦內(nèi)血液,接著用4%多聚甲醛100 ml 先快后慢灌注固定全身,直至出現(xiàn)全身僵硬、尾巴僵直??焖贁囝^取腦并于4%多聚甲醛中固定過(guò)夜,PBS 清洗后在30%蔗糖中脫水至組織塊沉底,以O(shè)CT 包埋后行冰凍切片,冠狀面連續(xù)切片以觀察海馬和皮層,冰凍切片厚約10 μm。用于Western blot 的大鼠取材:大鼠經(jīng)上述方法沖凈腦內(nèi)血液后,無(wú)需4%多聚甲醛灌注固定,快速斷頭取腦,迅速冰上分離皮層和海馬,二者分別儲(chǔ)存于相應(yīng)凍存管中,-80 ℃冰箱保存以備Western blot 半定量分析。
1.5 免疫熒光雙標(biāo)觀察皮層和海馬內(nèi)VGLUT1 的變化 將新鮮冰凍切片用4 ℃純丙酮中固定、0.3%Triton X-100 通透、5%BSA 封閉后加一抗:豚鼠抗VGLUT1(1∶1000,Millipore)和兔抗MAP2(1∶200,Millipore),室溫下孵育1 h、4 ℃孵育過(guò)夜,PBS 漂后在避光條件下加入熒光標(biāo)記二抗即山羊抗豚鼠TRITC(1∶500,ImmunoReagents)和驢抗兔DyLight488(1∶200,EarthOx),37 ℃避光孵育1 h,然后PBS 漂洗、抗熒光淬滅封片液封片。陰性對(duì)照分別以PBS 代替相應(yīng)一抗,其余操作同上。在熒光顯微鏡(Olympus IX71)下觀察,采用同一曝光度分別對(duì)每張切片進(jìn)行拍照,用Image Pro Plus6.0軟件進(jìn)行圖像分析,分別計(jì)數(shù)海馬和皮層平均每個(gè)神經(jīng)元胞體陽(yáng)性表達(dá)數(shù)、平均熒光強(qiáng)度。
1.6 Western blot 檢測(cè)皮層和海馬內(nèi)VGLUT1的表達(dá)情況 以蛋白裂解液(含1 mmol PMSF)提取組織總蛋白,經(jīng)BCA 法蛋白定量后加入2×SDS 上樣緩沖液,沸水浴10 min 變性,樣本(30 μg)經(jīng)10%SDS-聚丙烯酰胺凝膠電泳分離,經(jīng)電轉(zhuǎn)膜儀轉(zhuǎn)印蛋白至PVDF 膜,用含5%(w/v)脫脂奶粉的洗脫緩沖液室溫封閉1 h,加入一抗豚鼠抗VGLUT1(1∶5000)和小鼠抗β-actin(1∶1000),4 ℃孵育過(guò)夜,TBST 緩沖液清洗后加入HRP 標(biāo)記的二抗(1∶10000),37 ℃孵育1 h;TBST 緩沖液清洗、ECL 化學(xué)發(fā)光,曝光后顯影、定影。以β-actin 作為內(nèi)參照物,掃描并用Quantity one 4.62 軟件進(jìn)行圖像分析,測(cè)量相對(duì)光密度值(relative optical density,ROD),計(jì)算相對(duì)表達(dá)量。
2.1 海馬內(nèi)VGLUT1 的免疫熒光結(jié)果 正常對(duì)照組大鼠海馬內(nèi)VGLUT1 有廣泛表達(dá),齒狀回門區(qū)和CA3區(qū)的表達(dá)量較多,錐體細(xì)胞層和齒狀回的顆粒細(xì)胞層表達(dá)量較少。Pilo 組大鼠海馬內(nèi),VGLUT1 表達(dá)量較正常對(duì)照組明顯增多,平均熒光強(qiáng)度明顯增強(qiáng),尤以CA3區(qū)、齒狀回門區(qū)和內(nèi)分子層變化最為明顯,錐體細(xì)胞層和齒狀回的顆粒細(xì)胞層表達(dá)量也明顯增多,呈先上升后下降的趨勢(shì),于72 h 左右達(dá)到高峰。以CA1區(qū)錐體細(xì)胞層VGLUT1的表達(dá)變化為例:Pilo 組與TNS 組較正常對(duì)照組在24 h、72 h、7 d、14 d、28 d 時(shí)VGLUT1 表達(dá)均明顯增多。與Pilo 組相比,TNS 組平均每個(gè)神經(jīng)元胞體VGLUT1 陽(yáng)性表達(dá)數(shù)及平均熒光強(qiáng)度在24 h 明顯增多(P<0.01),在72 h、7 d、14 d、28 d 均明顯減少(P<0.05,P<0.01)。
2.2 皮層內(nèi)VGLUT1 的免疫熒光結(jié)果 在正常對(duì)照組大鼠的皮層中VGLUT1 有基礎(chǔ)表達(dá),表達(dá)量較少,主要集中在神經(jīng)元胞體和突起部位。Pilo組與TNS 組大鼠的皮層中VGLUT1 的表達(dá)較正常對(duì)照組明顯增多,均呈上升的趨勢(shì),在72 h 左右達(dá)到高峰隨后逐漸下降。與Pilo 組相比,TNS 組皮層內(nèi)VGLUT1 的表達(dá)在24 h 明顯增多(P<0.01),在72 h、7 d、14 d、28 d 均明顯減少(P<0.05,P<0.01)。皮層內(nèi)平均每個(gè)神經(jīng)元胞體VGLUT1 陽(yáng)性表達(dá)情況在相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)與上述結(jié)果并不完全一致,主要表現(xiàn)為在14 d 和28 d 時(shí),TNS 組與Pilo 組相比差異仍有顯著統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.01),我們推斷這可能是由分布在非胞體部位的VGLUT1 的表達(dá)發(fā)生了變化所致。
2.3 海馬和皮層內(nèi)VGLUT1 的半定量分析(Western blot)VGLUT1 在海馬和皮層內(nèi)的Western blot 分析結(jié)果與免疫熒光相似,Pilo 組與TNS 組大鼠海馬和皮層內(nèi)VGLUT1 的相對(duì)表達(dá)量在24 h、72 h、7 d、14 d、28 d 時(shí)均高于相應(yīng)時(shí)間點(diǎn)正常對(duì)照組(P<0.05,P<0.01)。與Pilo 組相比,TNS 組VGLUT1 相對(duì)表達(dá)量在24 h 明顯增多(P<0.01),在72 h、7 d、14 d、28 d 時(shí)明顯減少(P<0.05,P<0.01)。海馬內(nèi)VGLUT1 的相對(duì)表達(dá)量在28 d 時(shí)、皮層內(nèi)在14 d 和28 d 時(shí)均降至正常水平(P>0.05)。
腦內(nèi)興奮-抑制平衡是保證腦穩(wěn)態(tài)的重要條件,其復(fù)雜的調(diào)節(jié)機(jī)制是通過(guò)各種神經(jīng)遞質(zhì)介導(dǎo)的,谷氨酸是哺乳動(dòng)物腦內(nèi)主要的興奮性神經(jīng)遞質(zhì),它經(jīng)VGLUT1 特異地轉(zhuǎn)運(yùn)入突觸囊泡,再經(jīng)胞吐作用釋放至突觸間隙,進(jìn)而引起突觸后神經(jīng)元發(fā)生相應(yīng)的改變[5,6]。VGLUT1 的表達(dá)水平通過(guò)影響谷氨酸能突觸囊泡的量子大小而影響谷氨酸在生理或病理狀態(tài)下的釋放進(jìn)而影響突觸的可塑性[7,8]。Boulland JL 等人[9]發(fā)現(xiàn)在匹羅卡品誘導(dǎo)的癲癇大鼠模型的慢性期,海馬CA1-CA3區(qū)VGLUT1 表達(dá)明顯增多,且含VGLUT1 的突觸終端也明顯增多。與此一致,我們發(fā)現(xiàn)慢性癲癇大鼠模型的海馬和皮層內(nèi)VGLUT1 的表達(dá)均較正常對(duì)照組顯著增加,我們推斷慢性癲癇大鼠模型海馬和皮層內(nèi)谷氨酸能神經(jīng)元興奮性突觸傳遞增強(qiáng)。
Navarro Mora G 等[10]發(fā)現(xiàn),經(jīng)匹羅卡品誘導(dǎo)的大鼠即使在急性期沒(méi)有出現(xiàn)癲癇持續(xù)狀態(tài)后期也可觀察到癲癇自發(fā)性反復(fù)發(fā)作,這可能是匹羅卡品誘導(dǎo)一次癲癇發(fā)作后腦內(nèi)發(fā)生一系列的可塑性改變而致腦興奮性增高,最終發(fā)展成為具有自發(fā)性反復(fù)發(fā)作特點(diǎn)的慢性癲癇模型;在一次SE 后予以盡早的干預(yù)有可能改變這一發(fā)展過(guò)程從而起到減少癲癇發(fā)作的作用。三叉神經(jīng)的多種刺激形式均可通過(guò)丘腦激活包括顳葉皮層、海馬等感覺(jué)和運(yùn)動(dòng)皮層在內(nèi)的廣泛大腦區(qū)域[11~13],有報(bào)道高頻刺激視皮質(zhì)和海馬等處的神經(jīng)元能夠引起細(xì)胞興奮性增加,興奮性神經(jīng)遞質(zhì)傳遞增強(qiáng),使中間神經(jīng)元活性代償性增強(qiáng),抑制性信號(hào)傳導(dǎo)增強(qiáng),進(jìn)而使釋放至突觸間隙的抑制性神經(jīng)遞質(zhì)增多;后者也可反作用于主體神經(jīng)元,抑制其興奮性,從而保持大腦自身的興奮性和抑制性信號(hào)傳導(dǎo)處于一種動(dòng)態(tài)平衡狀態(tài),即大腦的自身穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)機(jī)制,而長(zhǎng)期接受興奮性刺激產(chǎn)生的大腦自身穩(wěn)態(tài)調(diào)節(jié)的結(jié)果是神經(jīng)元興奮性降低的可塑性改變[14]。本文作者Wang 等人在培養(yǎng)的海馬腦片上慢性阻斷或減少興奮性沖動(dòng)傳導(dǎo),發(fā)現(xiàn)海馬興奮性的增高易于誘發(fā)癇性放電,且起抑制作用的中間神經(jīng)元的存活和其內(nèi)的GAD65/67 顯著減少[15]。本實(shí)驗(yàn)中大鼠致SE 后予以經(jīng)皮三叉神經(jīng)電刺激處理一個(gè)月(這段時(shí)間正是慢性癲癇的形成過(guò)程),我們發(fā)現(xiàn)TNS 刺激癲癇大鼠腦內(nèi)VGLUT1 的表達(dá)較假刺激癲癇大鼠在TNS 終止后短時(shí)間內(nèi)顯著增多,而在其后的較長(zhǎng)時(shí)間則顯著減少,提示谷氨酸能神經(jīng)元興奮性突觸傳遞先短時(shí)間內(nèi)顯著增強(qiáng)后較長(zhǎng)時(shí)間顯著減弱。我們推測(cè)經(jīng)皮三叉神經(jīng)慢性電刺激對(duì)癲癇形成過(guò)程中腦興奮性易感性的形成有干預(yù)作用,長(zhǎng)期慢性皮層和海馬激活可能使皮層和海馬產(chǎn)生一系列興奮性適應(yīng)性改變,從而提高了它們的興奮性閾值,即降低了它們的興奮性易感性。本研究小組在前期研究中發(fā)現(xiàn)經(jīng)皮TNS 預(yù)處理的大鼠癲癇發(fā)作程度較對(duì)照組明顯減輕,推測(cè)這與海馬內(nèi)GAD65/67 的表達(dá)量明顯增多有關(guān)[3]。因此,我們推斷經(jīng)皮三叉神經(jīng)慢性電刺激使腦的興奮性易感性降低、內(nèi)源性抑制機(jī)制增強(qiáng),從而減少癲癇發(fā)作。此外,三叉神經(jīng)傳入纖維有部分終止于孤束核和藍(lán)斑核[1],藍(lán)斑核在迷走神經(jīng)電刺激抗癲癇的機(jī)制中起著非常重要的作用,刺激藍(lán)斑核能明顯減少驚厥發(fā)作[16],而毀損藍(lán)斑核則可促進(jìn)慢性癲癇的形成或加重癲癇的自發(fā)性反復(fù)發(fā)作[17],因此,三叉神經(jīng)電刺激的抗癲癇作用是否與藍(lán)斑核的信號(hào)傳導(dǎo)有關(guān)有待進(jìn)一步研究。
綜上所述,在匹羅卡品誘導(dǎo)的慢性癲癇大鼠模型形成過(guò)程中,予以經(jīng)皮三叉神經(jīng)慢性電刺激處理降低了腦的興奮性易感性,其機(jī)制可能與腦內(nèi)VGLUT1 的表達(dá)先增多后減少有關(guān);關(guān)于三叉神經(jīng)慢性電刺激抗癲癇的確切機(jī)制仍待進(jìn)一步研究。
[1]Fanselow EE.Central mechanisms of cranial nerve stimulation for epilepsy[J].Surg Neurol Int,2012,3(Suppl 4):247-254.
[2]DeGiorgio CM,F(xiàn)anselow EE,Schrader LM,et al.Trigeminal nerve stimulation:seminal animal and human studies for epilepsy and depression[J].Neurosurg Clin N Am,2011,22(4):449-456.
[3]張慧敏,李良勇,李家林,等.經(jīng)皮三叉神經(jīng)電刺激預(yù)處理對(duì)戊四氮致癇大鼠海馬谷氨酸脫羧酶表達(dá)的影響[J].安徽醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2011,46(8):732-736.
[4]Hasegawa D,Matsuki N,F(xiàn)ujita M,et al.Kinetics of glutamate and gamma-aminobutyric acid in cerebrospinal fluid in a canine model of complex partial status epilepticus induced by kainic acid[J].J Vet Med Sci,2004,66(12):1555-1559.
[5]Takamori S,Rhee JS,Rosenmund C,et al.Identification of a vesicular glutamate transporter that defines a glutamatergic phenotype in neurons[J].Nature,2000,407(6801):189-194.
[6]Fremeau RT,Kam K,Qureshi T,et al.Vesicular glutamate transporters 1 and 2 target to functionally distinct synaptic release sites[J].Science,2004,304(5678):1815-1819.
[7]Li LY,Li JL,Zhang HM,et al.TGFbeta1 treatment reduces hippocampal damage,spontaneous recurrent seizures,and learning memory deficits in pilocarpine-treated rats[J].J Mol Neurosci,2013,50(1):109-123.
[8]Pothos EN,Larsen KE,Krantz DE,et al.Synaptic vesicle transporter expression regulates vesicle phenotype and quantal size[J].J Neurosci,2000,20(19):7297-7306.
[9]Boulland JL,F(xiàn)erhat L,Tallak Solbu T,et al.Changes in vesicular transporters for gamma-aminobutyric acid and glutamate reveal vulnerability and reorganization of hippocampal neurons following pilocarpine-induced seizures[J].J Comp Neurol,2007,503(3):466-485.
[10]Navarro Mora G,Bramanti P,Osculati F,et al.Does pilocarpine-induced epilepsy in adult rats require status epilepticus[J].PLoS One,2009,4(6):e5759.
[11]Boyle JA,Heinke M,Gerber J,et al.Cerebral activation to intranasal chemosensory trigeminal stimulation[J].Chem Senses,2007,32(4):343-353.
[12]Hummel T,Iannilli E,F(xiàn)rasnelli J,et al.Central processing of trigeminal activation in humans[J].Ann N Y Acad Sci,2009,1170:190-195.
[13]Moisset X,Villain N,Ducreux D,et al.Functional brain imaging of trigeminal neuralgia[J].Eur J Pain,2011,15(2):124-131.
[14]Schulz DJ.Plasticity and stability in neuronal output via changes in intrinsic excitability:it’s what’s inside that count[J].J Exp Biol,2006,209(24):4821-4827.
[15]He S,Shao LR,Wang Y,et al.Synaptic and extrasynaptic plasticity in glutamatergic circuits involving dentate granule cells following chronic N-methyl-D-aspartate receptor inhibition[J].J Neurophysiol,2013,109(6):1535-1547.
[16]Jimenez-Rivera C,Voltura A,Weiss GK.Effect of locus ceruleus stimulation on the development of kindled seizures[J].Experimental Neurology,1987,95(1):13-20.
[17]Giorgi FS,F(xiàn)errucci M,Lazzeri G,et al.A damage to locus coeruleus neurons converts sporadic seizures into self-sustaining limbic status epilepticus[J].The European Journal of Neuroscience,2003,17(12):2593-2601.